Background: The $p16^{INK4a}$ is a protein that expressed in Liquid-based cervical cytology specimens and has been proved link to cervical cancer. The $p16^{INK4a}$ could be detection by piezoelectric immunosensor and the immobilization of the $p16^{INK4a}$ antibody influence the sensitivity of the piezoelectric immunosensor. Materials and Methods: $5{\mu}L$ mouse polyclonal antibody against $p16^{INK4a}$ was bound onto the surface of immonosensor through two methods. (directly immobilized method; protein A method). Absorb of the $p16^{INK4a}$ antibody on the surface of immonosensor caused a shift in the resonant frequency of the immunosensor and The frequency changes recorded showed a better reproducibility. The activity of the immobilization antibody with the directly method and protein A method was tested with $p16^{INK4a}$ antigen. Results: The resonant frequency for different antibody immobilization methods were different, and the sensitivity for $p16^{INK4a}$ detection also different. Conclusions: The protein A method was found to be much more better than the directly method for the immobilization of the p16INK4A antibody on the gold electrode of the quartz crystal for cervical lesion detection. The Protein A method created more reproducible and stable immobilization antibody layers with p16INK4A antigen.
Performance of an immunosensor can usually be assessed in terms of its analytical sensitivity and specificity. Sensitivity, i.e., the detection limit of analyte, is particularly determined by the amount of analyte molecules bound to the capture antibody immobilized onto a solid surface. In order to increase the binding complexes, we have investigated an immobilization method of antibody allowing for a molecular arrangement of the protein on a selective surface of a nano-patterned solid substrate. This has not been accomplished only by a surface treatment with a chemical, but also by fragmentation of immunoglobulin. Such approach would offer a protocol of antibody immobilization for the construction of nano-immunosensor and eventually improve the sensitivity of detection.
The performance of an immuno-analytical system can be assessed in terms of its analytical sensitivity, i.e., the detection limit of an analyte, which is determined by the amount of analyte molecules bound to the capture antibody that has been immobilized onto a solid surface. To increase the number of the binding complexes, we have investigated a site-directed immobilization of an antibody that has the ability to resolve a current problem associated with a random arrangement of the insolubilized immunoglobulin. The binding molecules were chemically reduced to produce thiol groups that were limited at the hinge region, and then, the reduced products were coupled to biotin. This biotinylated antibody was bound to a streptavidin-coated surface via the streptavidin-biotin reaction. This method can control the orientation of the antibody molecules present on a solid surface and also can significantly reduce the possibility of steric hindrance in the antigen-antibody reactions. In a two-site immunoassay, the introduction of the site-directly immobilized antibody as the capture enhanced the sensitivity of analyte detection approximately 10 times compared to that of the antibody randomly coupled to biotin. Such a novel approach would offer a protocol of antibody immobilization in order for the possibility of constructing a high performance immunochip.
Protein A molecular thin film was fabricated as a platform of antibody-based biosensor. For the immobilization of the protein A thin film, a viologen multilayer was built up using the Langmuir-Blodgett (LB) technique, and then, protein A was adsorbed on the viologen LB film by an electrostatic interaction force, which was formed as a hetero-film structure. For the deposition of viologen, surface pressure area ($\pi$-A) isotherm was investigated. The fabricated protein A-viologen hetero LB film was investigated using atomic force microscopy (AFM). Using the developed molecular film, antibody immobilization and fluorescence measurement was carried out.
Conventional methods for pathogen detection and identification are labor-intensive and take several days to complete. Recently developed biosensors have shown potential for the rapid detection of foodborne pathogens. In this study, an impedimetric biosensor was developed for rapid detection of Salmonella typhimurium. To develop the biosensor, an interdigitated microelectrode (IME) was fabricated by using semiconductor fabrication process. Anti-Salmonella antibodies were immobilized based on either avidin-biotin binding or self assembled monolayer (SAM) on the surface of the IME to form an active sensing layer. To evaluate effect of antibody immobilization methods on sensitivity of the sensor, detection limit of the biosensor was analyzed with Salmonella samples innoculated in phosphate buffered saline (PBS) or food extract. The impedimetric biosensor based on SAM immobilization method produced better detection limit. The biosensor could detect 107 CFU/mL of Salmonella in pork meat extract. This method may provide a simple, rapid, and sensitive method to detect foodborne pathogens.
The heterogeneous bioluminescence immunoassay for digoxin was developed using photoprotein, native aequorin as a label and the site-directed immobilization technique based on avidin/biotin interaction. Aequorin is a bioluminescence protein, originally isolated from the jellyfish Aequoria Victoria and an attractive label in analytical applications because of sensitive detection due to virtually no background bioluminescent signal. Digoxin is a cardioactive drug, and its therapeutic level in serum is at low concentration with very narrow therapeutic index. The aequorin-digoxigenin conjugates were synthesized by the N-hydroxysuccinimide ester method and characterized in terms of bioluminescent residual activity. The resulting dose-response curve shows that the detection limit is $1.0\;{\times}\;10^{-10}\;M$ and a dynamic range is three orders of magnitude, which was obtained by $1.0\;{times}\;10^{-10}\;M$ conjugate and 0.9 μg/mL anti-digoxin antibody. Three structurally similar molecules to digoxin were examined for their cross-reactivity. None of these three compounds showed any crossreactivity with digoxin antibody employed in this study. Standard amounts of digoxin corresponding to the therapeutic range were spiked into the each serum solution. Study of the serum matrix effect indicated that correlation coefficient shows good agreement between luminescence light intensity between in buffer and in serum.
Imaging ellipsometry (IE) for detection of binding of Escherichia coli O157:H7 (E. coli O157:H7) to an immunosensor is reported. A protein G layer, chemically bound to a self-assembled layer of 11-mercaptoundecanoic acid (11-MUA), was adopted for immobilization of monoclonal antibody against E. coli O157:H7 (Mab). The immobilization of antibody was investigated using surface plasmon resonance. To fabricate antibody spots on a gold surface, protein G solution was spotted onto the gold surface modified with an 11-MUA layer, followed by immobilizing Mab on the protein G spot. Ellipsometric images of the protein G spot, the Mab spot, and Mab spots with binding of E. coli O157:H7 in various concentrations were acquired using the IE system. The change of mean optical intensity of the Mab spots in the ellipsometric images indicated that the lowest detection limit was $10^3$CFU/ml for E. coli O157:H7. Thus, IE can be applied to an immunosensor for detection of E. coli O157:H7 as a detection method with the advantages of allowing label-free detection, high sensitivity, and operational simplicity.
We developed a microfluidic immunoassay platform for the detection of various analytes such as bacterial pathogen by packing antibody-immobilized glass beads in spatially-isolated microchambers on a microfluidic device. Primary amines of antibody were covalently conjugated to carboxyl-terminated glass beads previously treated with aminosilane followed by glutaraldehyde. Through this covalent binding, up to 905 $\mu$g immunoglobulin G (IgG) per gram of glass beads was immobilized. For application, glass beads attaching antibody specific to Escherichia coli O157:H7, a foodborne pathogen, were packed into a microfluidic device and used for the detection of the serotype. This prototype immunoassay device can be used for the simultaneous detection of multiple analytes by sequentially packing different-sized glass beads attaching different antibody in discrete microchambers on a single microfluidic device.
Salmonella spp.의 신속한 검출을 위하여 발진모듈, 수정결정 진동측정기, 박막형태의 수정결정으로 이루어진 압전류적(piezoelectric, PZ) 항체센서 시스템을 구성하였다. 수정결정의 금전극 표면에 Salmonella 구조 항원(common structural antigen)에 대한 항체를 protein A를 사용하여 고정화하고, 항체가 고정화된 수정결정과 미생물간의 결합반응에 의한 질량증가로 나타나는 진동수의 감소량을 측정하였다. PZ 항체센서는 $35^{\circ}C$, pH 7.2의 0.1M 인산 완충용액에서 Salmonella균에 대하여 가장 높은 감응도를 나타내었다. PZ 항체센서의 반응은 Salmonella균에 대하여 매우 선택적이었고 polystyrene bead 첨가시 센서의 감응도가 크게 증가하였다. Salmonella균의 농도가 $10^5{\sim}10^6\;CFU/mL$의 범위 내에 있을 때 쌍대수좌표에서 직선구간의 검량선을 얻을 수 있었고, Salmonella 검출에 소요되는 시간은 50분이내 이었다.
심혈관용 소재로서 혈관내피전구세포의 포획을 통해 in vivo 내피세포화가 가능한 표면을 가진 폴리우레탄 표면을 개발하였다. 혈관내피전구세포의 점착을 유도하는 CD34 단일클론항체(monoclonal antibody, mAb)를 표면에 도입하기 위해, poly (poly (ethylene glycol) acrylate-co-butyl methacrylate), poly (PEGA-co-BMA) 공중합체가 합성되었고, 이를 폴리우레탄 표면에 코팅하여 CD34 단일클론항체를 화학적으로 고정화하였다. 중합된 공중합체의 $^1H$-NMR 분석은 원하는 조성을 가진 poly(PEGA-co-BMA)의 합성이 가능함을 확인해 주었다. 이전 연구에서 개발된 PEG가 그래프트된 폴리우레탄과의 비교를 통해, 본 연구에서 제조된 poly(PEGA-co-BMA)가 코팅된 폴리우레탄 표면이 CD34 mAb의 고정화에 더 효과적인 것으로 나타났으며, 이는 CD34 mAb의 표면밀도와 활성도가 32배 이상 증가된 결과를 통해 증명되었다. 개질된 폴리우레탄 표면의 물리화학적 특성은 XPS와 물 접촉각, AFM에 의해 분석되었으며, 각각의 개질된 표면에 따른 표면의 특이적 성질을 잘 보여주었다. 본 연구에서 얻어진 결과들은 poly(PEGA-co-BMA)의 코팅을 통해 제조된 표면이 CD34 mAb의 고정화에 효과적임을 설명하였으며, 실제로 심혈관용 소재의 개발에 적용 가능성이 크다는 것을 증명해 주었다.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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