Bovine rotaviruses(A, 288, 55086 strains) isolated from fecal samples in Korea were propagated onto MA104 cells and were confirmed tentatively as G6, G8, and G10, respectively, by RFLP analysis. Full-length VP7 gene of these isolates was amplified by reverse transcriptase polymerase chain reaction(RT-PCR) using VP7 specific primers and cloned into TA vector. Nucleotide and deduced amino acid sequences of VP7 genes of the isolates were determined and compared with those of bovine rotavirus reference strains(NCDV; G6, UK; G6, Cody I-801; G8 and B223; G10). A, 288 and 55086 isolates showed high degree of nucleotide sequence homology with NCDV and UK(93% and 94%), Cody I-801(86%) and B223(97%), respectively, However, they showed 71~74% of nucleotide sequence homlogy with bovine rotavirus reference strains which belong to different serotypes. From the results of deduced amino acid sequence homology analysis, three isolates showed 94~96% of homology with the same serotype reference strains but 80~84% of homology with the different serotype reference strains. Three bovine rotavirus isolates, A, 288 and 55086 strains, were confirmed as G6, G8, and G10, respectively, by nucleotide and deduced amino acid sequence analysis.
Park, Doo-Sang;Oh, Hyun-Woo;Heo, Sun-Yeon;Jeong, Won-Jin;Shin, Dong-Ha;Bae, Kyung-Sook;Park, Ho-Yong
Journal of Microbiology
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제45권5호
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pp.409-417
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2007
Burkholderia sp. HY-10 isolated from the digestive tracts of the longicorn beetle, Prionus insularis, produced an extracellular lipase with a molecular weight of 33.5 kDa estimated by SDS-PAGE. The lipase was purified from the culture supernatant to near electrophoretic homogenity by a one-step adsorption-desorption procedure using a polypropylene matrix followed by a concentration step. The purified lipase exhibited highest activities at pH 8.5 and $60^{\circ}C$. A broad range of lipase substrates, from $C_4\;to\;C_{18}$ p-nitrophenyl esters, were hydrolyzed efficiently by the lipase. The most efficient substrate was p-nitrophenyl caproate ($C_6$). A 2485 bp DNA fragment was isolated by PCR amplification and chromosomal walking which encoded two polypeptides of 364 and 346 amino acids, identified as a lipase and a lipase foldase, respectively. The N-terminal amino acid sequence of the purified lipase and nucleotide sequence analysis predicted that the precursor lipase was proteolytically modified through the secretion step and produced a catalytically active 33.5 kDa protein. The deduced amino acid sequence for the lipase shared extensive similarity with those of the lipase family 1.2 of lipases from other bacteria. The deduced amino acid sequence contained two Cystein residues forming a disulfide bond in the molecule and three, well-conserved amino acid residues, $Ser^{131},\;His^{330},\;and\;Asp^{308}$, which composed the catalytic triad of the enzyme.
The VP2 full gene of Korean infectious bursal disease virus(IBDV) strain, SH/92, three attenuated vaccine strains, Bur706, Bursine-2 and CEV/AC strains, were amplified by reverse transcriptase-polymerase chain reaction and sequenced and compared with published VP2 gene sequences of IBDVs. The VP2 nucleotide sequence similarity between SH/92 and three vaccine stains was 95.6~96.5% whereas the nucleic acid similarity among three vaccine strains was 97.5~98.5%. The amino acid sequence similarity of VP2 of SH/92 compared with three vaccine strains was between 94.4 and 97.6% while the amino acid similarity among three vaccine strains was between 97.4 and 98.4%. The amino acid similarity between SH/92 and classical virulent strain, 52/70 and STC strain was 96.4 and 96.5%, respectively. The serine-rich heptapeptide was conserved in CEVAC and Bursine-2 as well as SH/92 but not in Bur706. The phylogenetic tree developed from amino acid sequences showed that SH/92 was categorized with vv IBDVs(HK46, OKYM, KKI, UPM94/273, SH95) in one branch while three vaccine strains were catagorized with STC strain in the other branch.
Porcine epidemic diarrhea virus (PEDV) strain Chinju99, which was previously isolated from piglets suffering from severe diarrhea was used to characterize the membrane (M) protein gene to establish the molecular information, and the results will be useful in elucidating concepts related to molecular pathogenesis and antigenic structures of PEDV isolates. The Chinju99 M gene generated by reverse transcription and polymerase chain reaction (RT-PCR) consisted of 681 bases containing 22.3% adenine, 22.3% cytosine, 23.1% guanine and 32.3% thymine nucleotides, and the GC content was 45.4%. It had some nucleotide mismatches from M gene of other PEDV strains, such as CV777, Br1/87, KPEDV-9, JMe2, JS2004-2 and LJB-03 with 97-99% nucleotide sequence homology to these strains. Also, it encoded a protein of 226 amino acids, which had some mismatches from those of CV777, Br1/87, KPEDV-9, JMe2, JS20004-2 and LJB-03, as the amino acid sequence homology showed a 97-98% to these strains. The Chinju99 had a very close relationship to the Japanese strain JMe2 for the nucleotide and amino acid sequences of the M gene. The amino acids predicted from Chinju99 M gene consisted of mostly hydrophobic residues and contained three potential sites for asparagine (N)-linked glycosylation, two serine (S)-linked phosphorylation sites by protein kinase C, and two S- or threonine (T)-linked phosphorylation sites by casein kinase II.
The Sweet potato chlorotic fleck virus (SPCFV), of the genus Carlavirus (family Betaflexiviridae), was first detected as one of several viruses infecting sweet potatoes (Ipomea batatas L.) in Korea. Out of 154 sweet potato samples collected in 2012 that were showing virus-like symptoms, 47 (31%) were infected with SPCFV, along with other viruses. The complete genome sequences of four SPCFV isolates were determined and analyzed using previously reported genome sequences. The complete genomes were found to contain 9,104-9,108 nucleotides, excluding the poly-A tail, containing six putative open reading frames (ORFs). Further, the SPCFV Korean isolates were divided into two groups (Group I and Group II) by phylogenetic analysis based on the complete nucleotide sequences; Group I and Group II had low nucleotide sequence identities of about 73%. For the first time, we determined the complete genome sequence for the Group II SPCFV isolates. The amino acid sequence identity in coat proteins (CP) between the two groups was over 90%, whereas the amino acid sequence identity in other proteins was less than 80%. In addition, SPCFV Korean isolates had a low amino acid sequence identity (61% CPs and 47% in the nucleotide-binding protein [NaBp] region) to that of Melon yellowing-associated virus (MYaV), a typical Carlavirus.
The mutant enzymes of N-carbamyl-D-amino aicd amidohydrolase (N-carbamylase) from Agrobacterium radiobacter NRRL B11291, showing a negligible activity, were selected from the library generated by random mutagenesis. From the sequence analysis, these mutants were found to contain the amino acids substitutions at Cys172, Glu47, and Glu146. Previously, Cys172 was reported to be necessary for the enzyme catalysis. The chemical modification of the N-carbamylase by carboxyl group specific chemical reagent, 1-ethyl-3-(3-dimethylaminopropyl) carbodiimide(EDC), resulted in a loss of activity. The replacement of glutamic acids with glutamines by site-directed mutagenesis led to aggregation of the enzymes. Mutant enzymes fused with maltose binding protein (MBP) were expressed in soluble form, but were inactive. These results indicate that two glutamic acid residues play an important role in structure and function of the N-carbamylase. Multiple sequence alignment of the related enzymes revealed that Glu47 and Glu146 are rigidly conserved, which suggests that tese residues are crucial for the structure and function of the functionally related C-N hydrolases.
Several clones obtained from Serratia marcescens stimulated E. coli TP2139 (${\Delta}lac, \;{\Delta} crp$) cells to use maltose as a carbon source. The crp gene clone, pCKB12, was confirmed to stimulate the $\beta$-galactosidase activity, by Southern hybridization [31]. The nucleotide sequence of the crp region consisting of 1,979 bp was determined. The sequencing of the fragment led to the identification of two open reading frames: One of these, the crp gene, encoded 210 amino acid and the other encoded a truncated protein. The S. marcescens and E. coli crp genes showed a higher degree of divergence in their nucleotide sequence with 120 changes, however, the corresponding amino acid sequences showed only two amino acid differences. Yet, an analysis of the amino acid divergence revealed that the catabolite gene activator protein, the crp gene product, was the most conserved protein observed so far. Using a crp-lac protein fusion, it was demonstrated that S. marcescens CRP could repress its own expression, probably via a mechanism similar to that previously described for the E. coli crp gene.
Bovine PAS-4 is an integral membrane glycoprotein expressed in mammary epithelial cells. Complementary DNA (cDNA) cloning of PAS-4 was performed by reverse-transcriptase polymerase chain reaction (RT-PCR) with oligonucleotide probes based on it's amino terminal and internal tryptic-peptides. The cloned PAS-4 cDNA was 1,852 nucleotides (nt) long and its open reading frame (ORF) was encoded 1,413 base long. The deduced amino acid sequence indicated that PAS-4 consisted of 471 amino acid residues with molecular weight of 52,796, bearing 8 potential N-glycosylation sites and 9 cysteine residues. Partial bovine CD36 cDNA from liver also was sequenced and the homology of both nucleotide sequence was 94%. Most of the identical amino acid residues were in the luminal/extracellular domains. Contrary to PAS-4, bovine liver CD36 displays 6 potential N-glycosylation sites, which were located, except for those at positions 101 and 171, at same positions as PAS-4 cDNA. Cysteine residues of PAS-4 and CD36 were same at position and in numbers. Northern blot analysis showed that PAS-4 was widely expressed, although its mRNA steady-state levels vary considerably among the analyzed cell types. PAS-4 possessed hydrophobic amino acid segments near the amino- and carboxyl-termini. Two short cytoplasmic tails of the amino- and carboxyl-terminal ends constituted of a 5-7 and 8-11 amino acid residues, respectively.
Chandrasekar R.;Dhanalakshmi R.;Krishnan M.;Kim H. J.;Jeong H. C.;Seo S. J.
International Journal of Industrial Entomology and Biomaterials
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제10권1호
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pp.25-33
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2005
Recently a cDNA clone of apoLp-III from Hyphantria cunea was isolated and subjected to computational analysis to compare with other available sequences. Multiple sequence alignments were carried out using the amino acid sequences of apoLp-III from six insects. It was found that the H. cunea apoLp-III has relatively high sequence identities to Spodoptera litura ($69.5\%$), Manduca sexta ($66.8\%$), Galleria mellonella ($65.1\%$), Bombyx mori N4 ($54.3\%$) but less identity to Locusta migratoria ($18.3\%$). The amino acid composition was compared with other insects using EXPASY tools; it shows that alanine (Ala), glutamine (Gln), leucine (Leu) and lysine (Lys) are the major amino acid components of apoLp-III in H. cunea as well as other lepidopterans. Homology modeling performed using PSI-BLAST (PDB template M. sexta) reveals that the apoLp-III molecules consist of five, long amphipathic alpha helical bundles with short loops connecting the helices and shows homology with other insects. Phylogenetic analysis shows that the orthopteran apoLp-III represented by locust was most distantly related to the lepidopteran insects.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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