For the eventual alcohol production from uncooked starch, an efficient saccharification process was examined by using the combined action of steeping, pectin depolymerase, ${\alpha}-amylase$ and glucoamylase. The total sugar content of rice, sweet potato and tapioka used were 4.53, 4.26, and 3.92 mmole/g sample. $70\;{\pm}\;10%$ of the total sugar was hydrolyzed when cooked starch was saccharified under the condition which is currently used in industry. The smaller starch particle was used, the more saccharification was obtained. Efficient saccharification was obtained by treatment with 5% $H_2SO_4$ (sample: working volume = 1:2) at $60^{\circ}C$ for 12 hr. Optimization was carried out for the saccharification of uncooked starch by the combined action of pectin depolymerase, ${\alpha}-amylase$, and glucoamylase. The conditions are: pectin depolymerase; pH 4.5, $45^{\circ}C$, 2 hr, ${\alpha}-amylase$; pH 6.0, $60^{\circ}C$, 1 hr, and glucoamylase; pH 3.5, $60^{\circ}C$, 1 hr. Simultaneous treatment of the combined action of macerating, liquifying and saccharifying enzymes yielded better result than stepwise treatment of 3 enzymes. Degrees of saccharification of uncooked tapioka, rice and sweet potato were 82, 90.5, and 84.5%, respectively on the basis of total sugar, under the optimized conditions.
Hypoglycemic effect of Schizandrae Fructus (SF) extract containing in Okchun-san was determined on 3T3-L1 fibroblasts and adipocytes by investigating insulin-like activity, insulin sensitizing activity and ${\alpha}-glucoamylase$ suppressing activity. SF were extracted by using 70% ethanol followed by XAD-4 column chromatography with a mixture solvent of methanol and water, and the fractional extractions were utilized for assaying hypoglycemic effect. No inhibition of ${\alpha}-glucoamylase$ activity of SF was observed. Insulin-like activity 3T3-L1 adipocytes was not shown by SF. A significant insulin sensitizing activity of SF extractions was observed in 3T3-L1 adipocytes, giving SF extractions with 1 ng/ml insulin to reach glucose uptake level increased by 50 ng/ml of insulin alone. When cells were treated with SF (Fr. 4 or 5) plus 1 ng/ml insulin, glucose uptake was increased more than seven times as compared to 1 ng/ml of insulin alone, suggesting that SF extracts increased GLUT4 content by enhancing insulin signaling. These data suggest that SF extracts (especially Fr. 4 and 5) contains an effective insulin sensitizing compounds for hypoglycemic activity in 3T3-L1 adipocytes.
A mutant strain having increased productivity of both enzymes, protease and amylase, was obtained from A. flavus KU 153, isolatd from South Korea for its high protease production by successive ultra-violet light irradiation, Two glucoamylases from the mutant strain selected were purified from wheat branculture by successive salting out, followed by dialysis and column chromatography, and their characteristics were compared with those of the wild strain. Glucoamylase production of the mutant selected was increased about 3.3 times compared with the wild strain, and 2.1 times compared with the parental strain, ${\alpha}-amylase$ activity of the mutant selected was about 2 times hugher than that of the wild strain or the parental strain. Protease and cellulase productivities of the muant selected were all alike compared with those of the highly proteolytic mutant, the parental strain. Therefore, it was considered that the back mutation on the protease production did not occurred in the formation process of the glucoamylase producing mutant. Total activities of glucoamylase I and II from the mutant selected were 2.86 and 3.65 times higher compared with those from the wild strain, respectively. Considering the optimal pH-thermal stability and Km-Vmax value of glucoamylase I and II from both strains, wild and mutant, it was deduced that the characteristics of glucoamylase I and II from the wild strain did not altered during the mutation process. Therefore, it was concluded that the selected mutant did not induce the formation of another glucoamylase isozyme, or the changes in the characteristics of the glucoamylase, but induce the productivity of the same glucoamylase I and II by the action of regulatory gene.
Extracellular amylase properties were examined with the mycelium of Tricholoma matsutake isolated from ectomycorrhizal roots of Pinus densiflora. The molecular weights of $\alpha$-amylase and glucoamylase were estimated as 34.2 kD and 11.5 kD, respectively, after eluted through Superdex 75 column. The optimum pH of the purified enzyme was found in a range of pH $5.0{\sim}6.0$, with a peak at pH 5.0. The activities of these enzymes were stable from $4^{\circ}C\;to\;30^{\circ}C$. The $\alpha$-amylase of T. matsutake readily hydrolyzed soluble starch and amylose-B, while it weakly hydrolyzed glycogen, dextrin, amylose and amylose-A. The main products of hydrolysis were confirmed to be glucose, maltose and maltotriose on the basis of the similarities in the thin layer chromatographic mobility.
A number of Saccharomycopsis fibuligera strains that can hydrolyse and utilize starch as a carbon source were isolated from nuruk, a traditional Korean starter for rice wine fermentation, and their specific growth rates on starch-containing medium were compared to choose the prominent strain. S. fibuligera strain MBY1320 showed a higher growth rate at $42^{\circ}C$ than that of strain S. fibuligera KCTC7806, indicating that S. fibuligera MBY1320 has more thermo-tolerant machinery for starch hydrolysis and utilization than KCTC7806. Although the activity of ${\alpha}$-amylase at $30^{\circ}C$ was significantly lower for S. fibuligera MBY1320 than KCTC7806 (3,812.5 U vs. 14,878.5 U), S. fibuligera MBY1320 showed a much higher glucoamylase activity at $42^{\circ}C$ than S. fibuligera KCTC7806 (5,048.9 U vs. 13,152.3 U). Thus, a new S. fibuligera strain, with a higher starch-hydrolysing activity at elevated temperatures than that of other types of strain, this study reports.
Kim, Hyo-Jeong;Park, Jeong-Nam;Kim, Hee-Ok;Shin, Dong-Jun;Chin, Jong-Eon;Blaise Lee, Hwang-Hee;Chun, Soon-Bai;Bai, Suk
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.12
no.2
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pp.340-344
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2002
A gene, npl, encoding neopullulanase from Paenibacillus sp. KCTC 8848P was cloned and expressed in Escherichia coli. It consisted of an open reading frame of 1,530 bp for a protein that consisted of 510 amino acids with a molecular weight of 58,075 Da. The deduced amino acid sequence of the neopullulanase gene had $92\%$ identity with the neopullulanase of Bacillus polymyxa. The npl gene was also expressed in Saccharomyces cerevisiae secreting Schwanniomyces occidentalis glucoamylase (GAM1) under the control of the yeast actin gene (ACT1) promoter. Secretion of the neopullulanase was directed by the yeast mating pheromone ${\alpha}$ -factor ($MF{\alpha}1$) prepro region. Enzyme assays confirmed that co-expression of npl and GAM1 enhanced starch and pullulan degradation by S. cerevisiae.
Park, Jeong-Nam;Shin, Dong-Jun;Kim, Hee-Ok;Kim, Dong-Ho;Lee, Hwang-Hee;Chun, Soon-Bai;Bai, Suk
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.9
no.5
/
pp.668-671
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1999
The gene encoding Schwanniomyces occidentalis $\alpha-amylase$(AMY) was introduced into Saccharomyces cerevisiae var. diastaticus which secreted only glucoamylase, by using a linearized yeast integrating vector to develop stable strains with a capability of secreting $\alpha-amylase$and glucoamylase simultaneously. A dominant selectable marker, the geneticin(G418) resistance gene (Gt^r$), was cloned into a vector to screen wild-type diploid transformants harboring the AMY gene. The amylolytic activities of transformants were about 3-7 times higher than those of the recipient strains. When grown in nonselective media, the transformants with the linearized integrating vector containing the AMY gene exhibited almost all of the mitotic stability after 100 generations.
${\alpha}-amylase$ activities of bean water was not significantly influenced by bean water concentrations but they were remarkably influenced by different temperatures and substrates. ${\alpha}-amylase$ activities of bean water on cooked starch were significantly higher than those on raw starch. ${\beta}-amylase$ and glucoamylase activities in 14% bean water were significantly higher than those in 7% bean water. Yukwa paste is glutinous rice flour paste. Bean water was added to Yukwa paste by 0, 7, 14% and incubated 0, 3, 6, 9, 12 hours at $60^{\circ}C$. The pH of Yukwa paste increased with bean water concentration and decreased with the incubation time. The viscosity decreased with bean water concentration and incubation time. The ruducing sugar content of Yukwa paste increased with bean water concentration and incubation time. The changes of reducing sugar content in cooked Yukwa paste were much higher than those in the raw one. ${\alpha},\;{\beta}-amylase$glucoamylase activities of Yukwa paste also increased with bean water concentration, and their activities were much higher on the cooked glutinous rice flour than those on the raw one. The SEM observation on the freeze-dried flour of Yukwa paste showed breakdown of amylopectin structure by addition of bean water in the paste.
To improve antioxidant glutathione (GSH) content and saccharification ability in sake yeasts of Saccharomyces cerevisiae, the ${\gamma}$-glutamylcysteine synthetase gene (GSH1) from S. cerevisiae, glucoamylase gene (GAM1) and ${\alpha}$-amylase gene (AMY) from Debaryomyces occidentalis were co-expressed in sake yeasts for manufacturing a refreshing alcoholic beverage abundant in GSH from rice starch. The extracellular GSH content of the recombinant sake yeasts increased 1.5-fold relative to the parental wide-type strain. The saccharification ability by glucoamylase of the new yeast strain expressing both GAM1 and AMY genes was 2-fold higher than that of the yeast strain expressing only GAM1 gene when grown in the culture medium containing 2% (w/v) rice starch. It generated 11% (v/v) ethanol from 20% (w/v) rice starch and consumed up to 90% of the starch content after 7 days of fermentation.
The purification system of glucoamylase (glucan 1,4-${\alpha}$-glucosidase, EC 3. 2. 1. 3), some characteristics of the purified enzyme and hydrolysis rate of various raw starch were investigated through several experiments. The enzyme was produced on a solid, uncooked wheat bran medium of Aspergillus oryzae NR 3-6 isolated from traditional Korean Nuruk. The enzyme was homogeneously purified 6.8-fold with an overall yield of 28.3% by the criteria of disc- and SDS-polyacrylamide gel electrophoresis. The molecular weight was estimated to be 48 kDa by SDS-PAGE. The optimum temperature and pH were 55$^{\circ}C$ and 4.0, respectively. The enzyme was stable at a pH range of 3.0∼10.0 and below 45$^{\circ}C$. Enzyme activity was inhibited about 27% by 1mM Hg2+. The hydrolysis rate of raw wheat starch was shown to be 17.5-fold faster than the hydrolysis rate of soluble starch. The purified enzyme was identified as glucoamylase because the product of soluble starch by the purified enzyme was mainly glucose by thin layer chromatography.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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