D-Glucose isomerase (D-xylose ketol isomerase, EC 5.3.1.5) was purified from the Alkalophilic Bacillus sp. No. 1911 by ammonium sulfate precipitation, DEAE-cellulose ion exchange chromatography followed by Sephadex G-150 gel filtration chromatography. Molecular weight of the purified enzyme was estimated to be 11, 000 by gel filtration on Sephadex G-200, and SDS-polyacrylamide gel electrophoresis showed that the enzyme consisted of four identical or similar subunits with a molecular weight of 43, 000. The enzyme was the most active at pH 7.5 and $65^{\circ}C$, and stable up to 7$0^{\circ}C$ at pH 7.5 and in the range of pH 6-9 at 6$0^{\circ}C$ by 30 min incubation in the presence of Co$^{++}$.
The enzymatic properties of purified CGTase from alkalophilic Bacillus sp. YC-335 have been examined. Apparent Vmax values of the enzyme in transferring glycosyl residues ${\alpha}-,\;{\beta}-and\;{\gamma}-cyclodextrin(CD)$ to sucrose were $16.13,\;21.8\;and\;9.8{\mu}moles/min/mg\;protein$, respectively and Km values of the corresponding CD were 1.68, 0.33 and 0.37 mM, respectively. A number of saccharides, specially starch hydrolyzates such as glucose and maltose, could activate the dextrinizing activity of the enzym. However, the dextrinizing activity was inhibited by ${\beta}-CD$. It was found from Lineweaver-Burk plot that the inhibition of CGTase by ${\beta}-CD$ was noncompetitive. High performance liquid chromatographic analysis showed that the enzyme has three kinds of activity ; transglycosylation and disproportionation as well as cyclization.
A strain of alkalophilic Bacillus sp. YC-335 has been isolated from soil. The strain was capable of producing large amount of cyclodextrin glycosyl transferase (CGTase) in the culture broth. The preferable medium composition has been determined to be as follows : 1.5% soluble starch, 5% corn steep liquor, 0.1% $K_2$HPO$_4$, 0.02%mgSO$_4$.7$H_2O$, 1% CaCO$_3$and 1% Na$_2$CO$_3$(pH 10.3). The highest enzyme production was observed after 48 hours of cultivation at 31$^{\circ}C$. The optimum pH and temperature for the activity of crude enzyme were 6.0 and 5$0^{\circ}C$, respectively. The enzyme was stable between pH 5 and 9, and upto 5$0^{\circ}C$. The enzyme converted starch into $\alpha$-, $\beta$- and ${\gamma}$-CD in the relative amounts of 1:10:1.5, respectively.
The intracellular invertase gene of alkalophilic and thermophilic Bacillus sp. TA-11 which was isolated from compost was cloned and expressed in E. coil HB101 using pUC19 as a vector. The invertase of the recombinant E. coli (pYC 17) was maximally produced when it was incubated at 37$^{\circ}C$ for 9 h in a SY medium containing 0.25% sucrose, 0.5% yeast extract, 0.1% each of $K_2HPO_4$ and $KH_2PO_4$, with an initial pH of 8.0. The final enzyme activity under the above condition was 47.7 U per ml of cell-free extract.
AH alkalophilic Bacillus SP. AIk-7, isolated from soil, produced ethylene. The characteristics of this microorganism is the ability to grow well under the alkaline condition, at pH 10.3. This strain is similar to Bacillus alkalophilus in terms of morphological, physiological and biological characteristics. In observation of relationship of cell growth and ethylene production according to incubation times, the ethylene synthesis mostly occur from the late exponential phase to the death phase of growth. The purpose of this paper is to study the effects of various substrates on the biosynthesis of ethylene in the intact cell and the cell-free system by the Bacillus sp. AIk-7. In both intact cell and cell-free extract, optimum conditions for ethylene production was achieved at pH 10.3 and 3$0^{\circ}C$. Ethylene was effectively produced from L-Met and 1-aminocyclopropane-1-carboxylic acid (ACC). In this case, ACC as the substrate on ethylene production were two fold higher than L-met at each concentration of substrates. On the other hand, the cell-free ethylene-forming system was used as a tool for the elucidation of the biochemical reaction involved in the formation of ethylene by Bacillus sp. AIk-7. Ethylene production in the cell-free system required the presence of manganese and cobalt ion to be stimulated a little. The result obtained in this work suggests that L-met and ACC may be a precursor more directly related to bacterial ethylene production than any other substrates tested.
Production of cyclodextrin (CD) by cyclodextrin glycosyltransferase (CGTase) isolated from alkalophilic Bacillus sp. was carried out to determine optimal reaction conditions. The maximum initial rate of CD production from amylose was obtained at dextrose equivalent 10.5. The CD production yield showed inverse proportionality to DE values over the range from 0.5 to 37.7. Even though the deactivation constant of CGTase at $60^{\circ}C$ was higher than those at lower temperatures, the production rate and yield at $60^{\circ}C$ were still higher. These results suggest thermal stabilization of CGTase by binding with starch.
Alkalophilic bacteria isolated from compost were selected, identified and tested for production of alkaline protease. The bacterium was tentatively assigned to Bacillus sp. based on the morphological, cultural and biochemical characteristics. The optimum pH of growth was 10 Galactose and Sodium glutamate enhanced the production of alkaline protease. The protease was most active at pH 11.0 and $60^{\circ}C$ and stable in the range of pH 5-11 and temp. $30^{\circ}-55^{\circ}C$. The protease was stabilized by the presence of calcium salts.
The production and the characteristics of protease produced by Bacillus sp. SH-8 and Bacillus sp. SH-8M were investigated under the different pH conditions. Bacillus sp. SH-8 and Bacillus sp. SH-8M showed the maximum activity of protease at 60 hours(70 units/ml) AND 96 houre(50 units/ml) cultivation, respectively, under the alkaline condition(pH 10.2). However, Bacillus sp. SH-8M exhibited the maximum activities in 8 days cultivation at pH 6.9 and in 6 days cultivation at pH 7.7 Bacillus sp. SH-8M showed the protease activity at the pH change from alkaline to neutral condition, whereas Bacillus sp. SH-8 did not. In addition. all the enzymatic characteristics of protease produced by Bacillus sp. SH-8 and Bacillus sp. SH-8M were similar with the regardless of different pH conditions.
Twenty-four bacterial strains among alkalophillic bacteria isolated from soil samples were examined for the presence of type II restriction endonuclease in aerobic culture. One strain was found to contain specific enzyme to cleave lambda DNA. The characteristics of this microorganism is the ability to grow well in alkalophilic and high temperature condition, that is at pH 10.3 and $50^{\circ}C$. This strain was tentatively identified to Bacillus alkaloPhilus subsp. halodurans when morphological, physiological and biochemical characteristics were examined. The enzyme was purified from crude extract by streptomycin sulfate, ammonium sulfate precipitation, which was followed by DEAE-cellulose and phosphocellulose ion exchange column chromatography, and the subunit molecular weight was about, 32,000 daltons by polyacrylamide gel electrophoresis containing 0.1% SDS.
To elucidate a method of preventing dental caries, strains producing lytic enzymes were isolated and their characteristics were investigated. Among 5,00 alkalophilic strains isolated from soil, 22 strains showed lytic activity against Streptococcus mutans. Strain No. 4830, with the highest lytic activity, was selected for further study. Strain 4830 showed 94% sequence homology with the 16S rDNA sequence of Bacillus alcalophilus, but it was concluded to be different from Bacillus alcalophilus because of its biochemical characteristics. The strain was named Bacillus sp. 4830. The lytic enzyme from Bacillus sp. 4830 was purified by ethanol precipitation and CM-agarose column chromatography. The molecular weight of the lytic enzyme was determined to be 28 kDa by SDS-PAGE. The lytic enzyme was stable between pH 5.0 and pH 11 and up to $40^{\circ}C$. The optimal pH and temperature for the lytic activity was 9.0 and $50^{\circ}C$, respectively.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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