For the purpose of combining the purification processes for several biologically active proteins form human urine, an efficient integrated fractionation procedure has been investigated. The procedure was started by concentration with ultrafiltration and pH precipitation followed by a selectable combination of chromatography on gel filtration, adsorption, ion exchanger, affinity, and reverse phase column. By this process, the purified urokinase, epidermal growth factor and albumin migrated as a single band on SDS-polyacrylamide gel electrophoresis and were fully active. The recoveries of these purified proteins were 48%, 17%, and 46%, respectively.
Expression of the active urease of the enterobacterium, Klebsiella aerogens, requires the presence of the accessory genes (ureD, ureE, ureF, and ureG) in addition to the three structural genes (ureA, ureB, and ureC). These accessory genes are involved in functional assembly of the nickel-metallocenter for the enzyme. Characterization of ureF gene has been hindered, however, since the UreF protein is produced in only minute amount compared to other urease gene products. In order to overexpress the ureF gene, a recombinant pMAL-UreF plasmid was constructed from which the UreF was produced as a fusion with maltose-binding protein. The MBP-UreF fusion protein was purified by using an amylose-affinity column chromatography followed by an anion exchange column chromatography. Polyclonal antibodies raised against the fusion protein were purified and shown to specifically recognize both MBP and UreF peptides. The UreF protein was shown to be unstable when separated from MBP by digestion with factor Xa.
A specific and sensitive sandwich enzyme-immunoassay (EIA) using Avidin-Biotin complex was developed for the measurement of GTH II levels in pituitary content and pituitary cell culture medium of the rainbow trout-(Oncorhpchus mykiss). Biotin-salmon GTH II rabbit IgG (sefondary antibody) wai purified by a protein A sepharose affinity chromatography column and that was biotinylated by using Biotin-N-hydroxysuccinimide ofter (BNHS). Non-biotin salmon GTH II rabbit IgG (first antibody) was obtained only through a protein A sepharose affinity chromatography column. The assay was performed by the so-called 'sandwich' method using a microtiter plate, A dose-response curve was obtained between $0.12 to 125 ng/ml$ of salmon GTH II. The displacement curves for pituitary extraction and pituitary cell culture medium of testosterone-treated rainbow trout were Parallel to the standard curie. The intra-assay and inter-assay coefficients of variation (CV) were $8.2{\%} (N=5) and 12.5{\%} (N=6)$, respectively, This assay system was used to measure the amount of GTH II that accumulated in the culture medium of dispersed pituitary cells in testosterone-treated immature rainbow trout, The accumulation was increased with the amount or salmon gonadotropin-releasing hormone. GTH II values determined by the present method were well correlated with those determined by radioimmunoassay. As a result, this assay system was found to be suitable for the measurement of GTH II for pituitary extraction and pituitary culture medium in many salmonid fishes.
The effects of CRP purified from human ascites fluid on phagocytic activity of the human macrophage were investigated. CRP was purified using affinity chromatography including absorption on p-diazonium phosphocholine or C-polysaccharide coupled sepharose 4B and gel filtration on hydroxylapatite column chromatography. Macrophage was separated ficoll hypaque gradient density and absorption method, and then was confirmed phagocytic uptake test using latex method. CRP was able either to inhibit or to enhance phagocytic activity of human macrophage against bacteria in vitro. The effects of CRP on phagocytic activity of human macrophage were in time and dose-dependent manners. The additional sequence of reaction mixture against bacteria in vitro shows a threshold stimulus on the activation of phagocytic response upon the CRP.
Chitobiase from Aeromonas salmonicida YA7-625 was purified from culture broth through ammonium sulfate precipitation, chitin affinity adsorption, hydroxylapatite column chromatography and gel filtration, with 47.2% yield and 31.5 fold purity. The molecular weight of purified chitobiase was 15,000 daltons, and the chitobiase showes maximum activity at the condition of at $40^{\circ}C$ and pH 6.0. The effects of various metal ions and inhibitors show thatcystein, glutamic acid, serine, tryptophan, and tyrosine residues seem to be concerned in chitobiase activity.
A kypsin inhibitor was isolated and purified from Mung bean (Vigna radiata L. wilczek) which has been used as a galenic and traditional food. In addition, we evaluated the pharmacological effect of the mung bean trypsin inhibitor (MBTI) using septic shock induced guinea pig model. Purification was carried out by Sephadex G-50 gel filtration, DEAE-cellulose ion exchange chromatography, and trypsin affinity column. The molecular weight of MBTI was estimated to be about 8,000 Da by 20% SDS-PACE under reducing condition. The chemically determined partial amino acid sequences of the purified MBTI perfectly coincide with those of previously reported MBTI which is BBI type trypsin inhibito. (Bowman-birk inhibitor type). These results suggest that the purified MBTI is authentic. Hypotension shock was prevented by the pretreatment of the MBTI (10 mg/kg of the body weight) on the septic shock guinea pig model caused by psedomonal elastase.
Pectate lyase produced by recombinant strain containing pectate lyase gene from alkalitolerant Bacillus sp. YA-14 was succesively purified with 257.6 purification folds and a 10.2% yields by the affinity method, eM-cellulose column chromatography followed by gel filtration on Sephadex G-I00 column. The optimal pH and temperature for pectate lyase activity were 10.0 and $60^{\circ}C$, respectively. The enzyme was stable between pH 4.0 and 10.0, and up to $50^{\circ}C$. The molecular weight of this enzyme was estimated to be 43,000 daltons by SDS-PAGE. Amino acid analysis showed that the enzyme contained more polar and basic amino acids, especially serine, glycine and tyrosine, than that of various pectate lyase from other strains. The N-terminal amino acid sequence was Ala-Asp-Leu-Gly-His-Gln-Thr.
Streptomyces polychromogenes IFO 13072 was used as a strain producing cholesterol oxidase(EC 1.1.3.6). The conditions of cholesterol oxidase production were investigated. The optimum composition of medium for production of the enzyme was 1% dextrin, 0.5% casamino acid, 0.1% $KH_2$PO$_4$, 0.5% $NaNO_3$ and 0.05% $MgSO_4$(pH 7.3). The enzyme was purified specifically by cholesterol affinity column chromatography with a yield of 23.2%. The purified enzyme showed a single polypeptide on SDS-PAGE and the molecular weight was estimated about 52,000 daltons. The optimum pH and temperature of the cholesterol oxidase were pH 7.0 and $37^{\circ}C$, respectively. The enzyme was stable in the range of pH 6.0~7.0 and $25^{\circ}C$. The cholesterol oxidase activity was strongly inhibited by metal ions such as $Hg^{2+}$ and $Fe^{2+}$ and inhibitors such as dithiothreitol, mercaptoethanol and isonicotinic acid. The Michaelis constant(Km) for the cholesterol was found to be 25 mM by Lineweaver-Burk plot analysis.
When casein was hydrolyzed by trypsin, alcalase, neutrase, protamax, and S. aureus type V8, peptides $(100\;{\mu}g/mL)$ which were produced by trypsin and alcalase solubilized $6.42\;and\;2.37\;{\mu}g/mL)$ of added irons at pH 6, respectively, while peptides which were produced by other proteases solubilized less than $1\;{\mu}g/mL$. Peptides produced by trypsin and alcalase were fractionated to 10 fractions on a reverse phase column and each fraction was tested for its iron solubilizing ability at pH 6. Among peptides produced by trypsin, fraction 5 showed the highest iron solubilizing ability $(2.33\;{\mu}g/mL)$. In the case of alcalase, fraction 7 showed the highest iron solubilizing ability $(1.56\;{\mu}g/mL)$. To isolate iron binding peptides from peptides produced by trypsin and alcalase, immobilized iron affinity chromatography which irons were chelated to imino diacetic acids in chelating sepharose fast flow were utilized. Our results showed that immobilized iron affinity chromatography was an effective method to isolate iron binding peptides produced by either trypsin or alcalase from milk casein.
The effect of Sodium Butyrate (NaBu) on the N-linked oligosaccharide structure of Erythropoietin (EPO) was investigated. Recombinant human EPO was produced by CHO cells grown in an $MEM{\alpha}$ medium with or without 5 mM NaBu, and purified from the culture supernatants using a heparin-sepharose affinity column and immunoaffinity column. The N-linked oligosaccharides were released enzymatically and isolated by paper chromatography. The isolated oligosaccharides were then labeled with a fluorescent dye, 2-aminobenzamide, and analyzed with MonoQ anion exchange chromatography and GlycosepN amide chromatography for the assignment of a GU (glucose unit) vague. A glycan analysis by HPLC showed that the most significant characteristic effect of NaBu was a reduction in the proportion of glycans with Sri-and tetrasialylated oligodaccharides from $21.30\%$ (tri-) and $14.86\%$ (tetra-) in the control cultures (without NaBu) to $8.72\%$ (tri-) and $1.25\%$ (tetra-) in the NaBu-treated cultures, respectively. It was also found that the proportion of asialo-glycan increased from $12.54\%\;to\;23.6\%$ when treated with NaBu.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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