전복 내장중에 지질단백질과 결합한 카로티노이드 색소를 추출하고, 확인하여 본 결과, 주성분은 lutein의 지방산 에스테르와 lutein임이 밝혀졌다. 에스테르를 이루고 있는 성분 지방산은 주로 lauric acid (68%)와 myristic acid (17%)였으며, 이것은 전복내의 triglyceride나 cholesterol ester의 성분 지방산과는 판이한 양상을 보여 주고 있다. 전복의 선택적 대사에 의한 간단한 카로티노이드의 양상은 전복내장의 카로티노이드를 아세톤으로 추출했을 때의 전 추출물이 보여주는, 아마도 먹이에서 유래된 다양한 카로티노이드 분포와는 대조적으로 lutein만 선택적으로 대사됨을 보여주고 있다.
It was previously reported that cytochrome P$_{450}$ content in liver was increased when Capsicum acetone extract was given chronically to rats. The present study is aimed to investigate the effect of capsaicin, a principal component of red pepper, on the drug metabolizing enzymes in rat liver. Capsaicin (5mg/kg) was given intraperitoneally once a day for seven days and zoxazolamine paralysis time and hexobarbital sleeping time were determined 24 hrs after the last dose of capsaicin. Plasma hexobarbital concentration was also determined five and 15 min after hexobarbital administration to rats. Zoxazolamine paralysis time and hexobarbital sleeping time were shortened by 31.6% and 37.1%, respectively, compared with control group. Plasma hexobarbital concentration was lowered by 26.2% after five min and by 35.2% after 15 min, respectively, compared with control group. However, administration of single dose of capsaicin did not affect the zoxazolamine paralysis time and hexobarbital sleeping time. Microsomal cytochrome P$_{450}$ content and NADPH-cytochrome C reductase activity were increased by 14.6% and 11.6%, respectively in the rats pretreated with capsaicin for seven days, while cytochrome b$_{5}$ content was not changed. These results suggest that treatment with capsaicin for seven days may induce the drug metabolizing enzyme in rat liver.
Methyl mercaptan oxidase was successfully induced in Thiobacillus thioparus TK-m using methyl mercaptan gas, and was purified for the detection of mercaptans. The purification procedure Involved a DEAE (diethylaminoethyl) -Sephacel, or Superose 12, column chromatography with recovery yields of 47.5 and 48.5%, and specific activities of 374 and 1240.8 units/mg-protein, respectively, The molecular weight of the purified methyl mercaptan oxidase was 66.1kDa, as determined by SDS-PAGE. The extract, from gel filtration chromatography oxidizes methyl mercaptan, producing formaldehyde, which can be easily detected by the purpald-coloring method. The optimized temperature for activity was found to be at 55$\^{C}$. This enzyme was inhibited by both NH$_4$Cl and (NH$_4$)$_2$SO$_4$, but was unaffected by either KCl or NaCl at less than 200 mM. With K$_2$SO$_4$, the activity decreased at 20 mM, but recovered at 150 mM. In the presence of methanol, full activity was maintained, but decreased in the presence of glycerin, ethanol and acetone 43, 78 and 75%, respectively.
Park, Pyo-Jam;Lee, Sang-Hoon;Byun, Hee-Guk;Kim, Soo-Hyun;Kim, Se-Kwon
BMB Reports
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제35권6호
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pp.576-582
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2002
Collagenase from the internal organs of a mackerel was purified using acetone precipitation, ion-exchange chromatography on a DEAE-Sephadex A-50, gel filtration chromatography on a Sephadex G-100, ion-exchange chromatography on DEAE-Sephacel, and gel filtration chromatography on a Sephadex G-75 column. The molecular mass of the purified enzyme was estimated to be 14.8 kDa by gel filtration and SDS-PAGE. The purification and yield were 39.5-fold and 0.1% when compared to those in the starting-crude extract. The optimum pH and temperature for the enzyme activity were around pH 7.5 and $55^{\circ}C$, respectively. The $K_m$ and $V_{max}$ of the enzyme for collagen Type I were approximately 1.1 mM and 2,343 U, respectively. The purified enzyme was strongly inhibited by $Hg^{2+}$, $Zn^{2+}$, PMSF, TLCK, and the soybean-trypsin inhibitor.
A high-performance liquid chromatographic (HPLC) method was developed to determine buprofezin residues in hulled rice and fruits. The buprofezin residue was extracted with acetone and the extract was stepwise purified by liquid-liquid partition and Florisil column chromatography. For rice samples, acetonitrile/n-hexane partition was additionally employed to remove nonpolar lipids. Reversed phase HPLC using an octadecylsilyl column was successfully applied to separate buprofezin from sample co-extractives, as detected by ultraviolet absorption at 250 nm. Recovery experiment at the limit of quantitation validated that the proposed method could evidently determine the buprofezin residue at the level of 0.02 mg/kg. Mean recoveries from hulled rice, apple, pear, and persimmon samples fortified at three tenfold levels were in the range of 80.8~85.2%, 89.1~98.4%, 88.8~95.7% and 90.8~96.2%, respectively. Relative standard deviations of the analytical method were all less than 5%, irrespective of sample types. A selected-ion monitoring LC/mass spectrometry with positive electrospray ionization was also provided to sensitively confirm the suspected residue.
피부미백효과 및 항산화물질로 알려진 glabridin은 감초뿌리 (Glycyrrhiza glabra)에 포함되어 있는 성분으로서 추출 및 HPLC에 의한 분리에 관한 연구 결과는 다음과 같다. 용매에 따른 추출정도를 알기위하여 메탄올, 에탄올, 에틸아세테이트 및 아세톤 등 4가지 용매로 1시간동안 초음파 추출하여 HPLC에서 비교 분석하였다. 그 결과 에틸아세테이트의 추출용매가 1260.0 mg/kg으로 가장 함량이 높았으며, 에탄올, 메탄올, 아세톤 순으로 나타났다. HPLC의 역상 컬럼에서 이동상의 조성을 아세토나이트릴/물 (50/50, vol. %)으로 사용했을 때 체류시간은 20.3분이였으며, 에틸아세테이트로 추출한 시험용액을 LC/MS로 확인하였다.
Pullulanase was produced from the Klebisella pneumonias NFB_320 with the conmposition of 0.1% pullualn 1.5% yeast extract, 0.2% $K_2$HPO$_4$ and 0.02% MgSO$_4$.7$H_2O$(pH5.5). The optimum temperature for activity of the pulluanase was 3$0^{\circ}C$ and the highest yield of the enzyme was obtained after cell growth at 3$0^{\circ}C$ for 18hr, and maintained until 24hr cultivation. The pullulanase was successively purified 52.6 folds with 7.8% yield by acetone precipitation. DEAE-cellulose column chromatography and gel fitrations. The purified enzyme hydrolyzed pullulan into maltotriose exclusively. Chemical and physical properties of purified pullulanase from Klebisella pneumonias NFB-320 were examined. The optimum pH and temperature for enzyme activity were 5.0 and 6$0^{\circ}C$, respectively. The enzyme was stable between pH4 and 7, and up 5$0^{\circ}C$. The effect of mo-dification on the rate of enzyme reaction was studies with various chemicals and metal ions. The enzyme has been found to be inactivated by I$_2$ and N-bromosussinimide(NBS), which probably indicated the involve- ment of tryptophan residues in the active center of the enzyme.
In this study, we tested possibility of replacing nitrite salts, which were always added during the meat product processing, with the metabolites produced by antimicrobial and red pigment producing Monascus strains. We have already shown that Monascus No. 116 strain has the highest antimicrobial activity among the strains isolated from Ang-Khak. Monascus isolate No. 229 was chosen due to its outstanding red pigment producing ability. The red pigment production by No. 229 was highest in the medium containing 8% sucrose, 2% yeast extract, 0.1% K2HPO4, 0.5% MgSO4. Optimum pH and temperature for the red pigment production were pH 6.2 and 3$0^{\circ}C$, was found in spot or Rf value 0.54 on TLC plate using ethyl acetate-acetone-water (4:4:1, v/v/v) as development solvent system. Isolate No. 116 and No. 229 were cultured in a optimal condition for the antimicrobial activity and red pigmentation. The culture concentrates were applied in situ to the production of instantly processed ham. Mixed application of 89 ppm Na-nitrite and 300 ppm of culture broth concentrate of Monascus isolate No. 116 and 500 ppm of red color produced by Monascus isolate No. 229 showed similar results with the single application of 94 ppm Na-nitrite. These results confirmed that the antimicrobial activity and red pigment of Monascus strains might be valuable to replace Na-nitrite salt in meat processing.
Gleditsia japonica var. koraiensis NAKAI(Leguminosae) is commonly distributed in Korea and has been used as a folk medicine in the treatment of bronchitis, neoplasm and blennorrhgia in the Orient. The aqueous acetone extract of the leaves of G. japonica was subjected to a combination of Sephadex LH-20, Cosmosil $75C_{18}-OPN$, TSK-gel Toyopearl HW 40F, Avicel cellulose, and MCI-gel CHP 20P chromatographies with various solvent systems. Twelve compounds were isolated and confirmed to be vitexin(1), isovitexin(2), orientin(3), isoorientin(4), 4-caffeoyl quinic acid(5), 5-caffeoyl quinic acid(6), 3, 5-dicaffeoyl quinic acid(7), 4, 5-dicaffeoyl quinic acid(8), caffeic acid(9), quercetin(10), isoquercitrin(11) and luteolin-7-O-glucoside(12), on the basis of chemical and spectroscopic evidences.
Identification of a soil microorganism strain X-8, producer of ${\beta}$-lactamase inhibitor, based on its morphological, physiological, biochemical and chemotaxonomical characteristics was performed. The strain X-8 was identified as Pseudomonas sp. The beta-lactamase inhibitor produced by this strain was highly achieved in fermentation medium contained glucose 0.5%, urea 0.25%, $K_2HPO_4{\cdot}3H_2O\;0.5%,\;MgSO_4{\cdot}7H_2O\;0.5%,\;FeSO_4{\cdot}7H_2O\;0.01%,\;CuSO_4,\;ZnSO_4,\;MnSO_4\;0.02%$. The beta-lactamase inhibitor was not extracted by organic solvent such as n-butanol and ethyl acetate but remained in aqueous layer. The n-butanol extract showed antimicrobial activity against M. smegmatis. The ${\beta}$-lactamase inhibitor was stable at pH 7.0~8.0 and 4$^{\circ}C$ for 24h. The ${\beta}$-lactamase inhibitor was bound on ion exchanger Diaion WA-30 and HP-20 and eluted with 2N-$NH_4OH$ and acetone, respectively.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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