Hashem, Md. Abul;Bhandari, Dilip P.;Hossein, Mohammad Shamim;Jeong, Yeon Woo;Kim, Sue;Kim, Ji-Hye;Koo, Ok-Jae;Park, Seon Mi;Lee, Eu Gine;Park, Sun Woo;Kang, Sung Keun;Lee, Byeong Chun
Asian-Australasian Journal of Animal Sciences
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v.20
no.5
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pp.693-700
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2007
The present study was conducted to examine the effect of different levels of essential and nonessential amino acid in NCSU-23 medium on the in vitro-produced porcine embryo as it develops from the zygote to the blastocyst stage. Four experiments were performed, each with a completely randomized design involving 5 to 8 replications of treatments. In order to know the effect of nonessential amino acids in NCSU-23 medium, 0, 5, 10 and $20{\mu}/ml$ MEM were supplemented there to, (Exp. 1) and the medium was supplemented with same level of essential amino acids (Exp. 2). The combined effect of nonessential (0, 5, 10 and $20{\mu}/ml$ MEM) and essential amino acids (0, 5, 10 and $10{\mu}/ml$ MEM) in NCSU-23 medium (Exp. 3), first 72 h with non-essential amino acids (at 0, 5, 10 and $20{\mu}/ml$ MEM), and last 4 d with essential amino acids with the same level as NEAA (Exp. 4) were examined. The embryo development was monitored and the quality of blastocysts was evaluated by counting the number of total cells and determining the ratio of inner cell mass (ICM) to trophoectoderm (TE) cells. When Eagle's nonessential amino acids (MEM) added to NCSU-23 medium, it significantly increased the likelihood of development to the 2- to 4-cell stage and subsequent blastocyst development. Supplementation of different levels of essential amino acids in the NCSU-23 medium decreased cleavage rate, rate of morula and blastocyst development and the number of ICMs. In the case of the combined effect of essential and nonessential amino acids, better and significant results were found for blastocysts, hatching blastocysts and for ICM numbers which were also dose dependent. With respect to the biphasic effect of nonessential and essential amino acids, nonessential amino acids increased cleavage whereas essential amino acids increased the total cell number. Neither the nonessential nor the essential group of amino acids, on their own, affected blastocyst cell number or the differentiation of cells in the blastocyst. In conclusion, this study determined the role of nonessential and essential amino acids in the culture of the porcine embryo and showed that the embryo requires different levels of amino acids as it develops from the zygote to the blastocyst stage.
This study was designed to investigate effect of cryoprotectant kinds and cell stages on the viability of bovine embryos cryopreserved by vitrification. The oocytes were collected from ovarian follicles of Korean native cows. The follicular oocytes were cultured in TCM-199 medium containing hormone and 10%(v/v) FCS for 24~48hrs in a incubator with 5% $CO_2$, in air at 38.5$^{\circ}C$ and then matured oocytes were again cultured for 7~10 hrs with spermatozoa capacitated by preincubation. The vitrification solutions of EFS and EDS were consisted of 40%(v/v) ethylene glycol, 18%(v/v) Ficoll and 0.3M sucrose, and 20%(v/v) ethylene glycol, 16.5%(v/v) DMSO and 0.5M sucrose in TCM-199 medium supplemented with 10% FCS, respectively. The embryos were exposed to EFS or EDS at $25^{\circ}C$ and loaded into OPP straw for 30 sec. The plug end of each straws was heat-sealed and straws was slowly immersed into liquid nitrogen(L$N_2$). The results obtained were summarized as follows : 1 . The rates of cleavage and hatching of embryos frozen with vitrification, rapid and slow freezing methods were 67.5%, 27.5% and 42.5%, 20.0% and 52.5%, 25.0%, respectively And rates of cleavage and hatching of embryos frozen with vitrification method were significantly(p<0.05) higher than those in other methods, and the rates were lower than those in control group(82.5% and 37.5%). 2. The rates of cleavage and hatching of embryos were significantly(p<0.05) different between EFS(47.5% and 22.5%) and EPS(52.5% and 27.5%), and the rates were lower than those in control group(82.5% and 37.5%). 3. After vitrification freezing of bovine embryos at zygote, 2 cell, 8 cell, morulae and blastocyst stage, the rate of cleavage and hatching were 25.0% and 15.0%, 32.5% and 20.0%, 37.5% and 20.0%, 52.5%, 27.5%, 47.5% and 25.0%, respectively. And developmental rates to the expended blastocyst stage of embryos frozen at zygote stage was significantly(p<0.05) lower rather than those in 2, 8-cell and morulae stage.
Kim, E.Y.;Yi, B.K.;Nam, H.K.;Lee, K.S.;Yoon, S.H.;Park, S.P.;Chung, K.S.;Lim, J.H.
Clinical and Experimental Reproductive Medicine
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v.25
no.2
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pp.129-134
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1998
The objective of this study was to test whether the developmental capacity of human multi-pronuclear (PN) zygotes after ultra-rapid freezing using EM grid can be maintained. For this experiment, multi-PN zygotes which produced in human IVF program were used as an alternatives of normal 2PN zygotes, and they were separated into 3PN or $\geq4PN$ zygotes to compare their in vitro development and cryoinjury according to PN number. As freezing solution, EFS30 which consisted of 30% ethylene glycol, 18% bcoll, 0.5 M sucrose and 10% FBS added D-PBS was used. The result obtained in this experiment was summarized as follows; When the multi..PN zygotes were ultrarapidly frozen and thawed, the high mean percentages (85.5%) were survived. Also when the cleavage rates between control and freezing group were compared with PN number, there were not significantly different in each group (3PN; 81.3% & 85.4% and $\geq4PN$; 90.0% & 95.7%). When the in vitro development rates after thawing were examined, freezing 3PN group (22.0%) was not differed to control 3PN group (38.5%), although the development result of freezing $\geq4PN$ group (45%) was significantly lower than that of control $\geq4PN$ group (44.4%) (p<0.05). These results demonstrate that developmental capacity of human zygote can be obtained by ultra-rapid freezing method using EM grid and EFS30.
Chung, Hak Jae;Sa, Soo Jin;Baek, Sun Young;Cho, Eun Suek;Kim, Young Shin;Hong, Jun Ki;Cho, Kyu Ho;Kim, Ji Youn;Park, Mi Ryung;Kim, Kyung Woon
Journal of the Korea Academia-Industrial cooperation Society
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v.20
no.9
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pp.306-314
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2019
As dipeptidyl peptidase-4(DPP-4) inhibitors are used widely as a secondary treatment for type 2 diabetes because they tend to be well tolerated with minimal side effects, the human DPP-4(hDPP-4) gene was injected into a pig zygote through micro-injection, and 1-cell stage fertilized embryos were then transplanted surgically into the oviduct. Three pigs were fertilized with hDPP-4 genes and produced sixteen piglets, in which one male piglet was identified to be transgenic. Finally, transgenic pigs showing hDPP-4 gene expression in the tail were produced. Western blot and RT-PCR analysis confirmed that the hDPP-4 is expressed strongly in the membrane cells of the transgenic pig, and that the hDPP-4 gene appears in various tissues and tails. This suggests that the expression vector is normally expressed in transgenic pigs. These results are anticipated to be a model animal to check the endocrine function for insulin resistance that occurs in a hDPP-4 transgenic pig and to increase its value for use as a material in newly developed medicines.
Hyeonji Lee;Dong Wook Han;Seonho Yoo;Ohbeom Kwon;Hyeonwoo La;Chanhyeok Park;Heeji Lee;Kiye Kang;Sang Jun Uhm;Hyuk Song;Jeong Tae Do;Youngsok Choi;Kwonho Hong
Animal Bioscience
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v.37
no.6
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pp.1021-1030
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2024
Objective: R-loops are DNA:RNA triplex hybrids, and their metabolism is tightly regulated by transcriptional regulation, DNA damage response, and chromatin structure dynamics. R-loop homeostasis is dynamically regulated and closely associated with gene transcription in mouse zygotes. However, the factors responsible for regulating these dynamic changes in the R-loops of fertilized mouse eggs have not yet been investigated. This study examined the functions of candidate factors that interact with R-loops during zygotic gene activation. Methods: In this study, we used publicly available next-generation sequencing datasets, including low-input ribosome profiling analysis and polymerase II chromatin immunoprecipitation-sequencing (ChIP-seq), to identify potential regulators of R-loop dynamics in zygotes. These datasets were downloaded, reanalyzed, and compared with mass spectrometry data to identify candidate factors involved in regulating R-loop dynamics. To validate the functions of these candidate factors, we treated mouse zygotes with chemical inhibitors using in vitro fertilization. Immunofluorescence with an anti-R-loop antibody was then performed to quantify changes in R-loop metabolism. Results: We identified DEAD-box-5 (DDX5) and histone deacetylase-2 (HDAC2) as candidates that potentially regulate R-loop metabolism in oocytes, zygotes and two-cell embryos based on change of their gene translation. Our analysis revealed that the DDX5 inhibition of activity led to decreased R-loop accumulation in pronuclei, indicating its involvement in regulating R-loop dynamics. However, the inhibition of histone deacetylase-2 activity did not significantly affect R-loop levels in pronuclei. Conclusion: These findings suggest that dynamic changes in R-loops during mouse zygote development are likely regulated by RNA helicases, particularly DDX5, in conjunction with transcriptional processes. Our study provides compelling evidence for the involvement of these factors in regulating R-loop dynamics during early embryonic development.
The aim of the present study was to determine the effect of paternal sex chromosome on early development of buffalo embryos fertilized and cultured in vitro. Embryos were produced in vitro from abattoir derived buffalo oocytes. The cleaved embryos were cocultured with buffalo oviductal epithelial cells and evaluated on day 7 under the phase contrast microscope to classify development. The embryos which reached the morula/blastocyst stage were fast developing, the embryos which were at 16-32 cell stage were medium developing and the embryos below 16 cell stage were slow developing. The embryos which showed some fragmentation in the blastomeres or degenerated blastomeres, were degenerating. Sex of emberyos (n=159) was determined using PCR for amplification of a male specific BRY. 1 (301 bp) and a buffalo specific satellite DNA (216 bp) fragments. The results thus obtained show that 1) X and Y chromosome bearing sperms fertilize oocytes to give almost equal numbers of cleaved XX and XY embryos, 2) male embryos develop faster than female embryos to reach advanced stage and 3) degeneration of buffalo embryos is not linked with the paternal sex chromosome. We suggest that faster development of males is due to differential processing of X and Y chromosome within the zygote for its activation and / or differential expression of genes on paternal sex chromosome sex chromosome during development of buffalo embryos fertilized and cultured in vitro which may be attributed to a combination of genetic and environmental factors.
Kim, Jong-Mu;Ko, Yeoung-Gyu;Seong, Hwan-Hoo;Chung, Hak-Jae;Chang, Won-Kyong;Kim, Nam-Hyung
Reproductive and Developmental Biology
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v.31
no.1
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pp.21-28
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2007
During early embryo development, Oct-4 is an important transcription factor for the early differentiation the present study was first examined methylation status in distal enhancer and promoter region of Oct-4 during mouse pre-implantation embryo development. In oocyte and sperm, high methylation was observed in both distal and proximal of promoter in Oct-4. Following fertilization relatively high methylation level remained until 8-cell stage embryos, but decreased at the morula and blastocyst stage. Specific gene knock down of Oct-4 by siRNA injection into zygote induced higher methylation rates of both distal and proximal region of promoter of Oct-4. These results suggest a functional link between the DNA methylation status of distal and promoter resign in the Oct-4 gene and the gene sequence-specific transcriptional silencing by exogenous siRNA injection during mouse preimplantation embryos.
Nam Yoon Kwon;Kim Moo-Sang;Lee Hyung-Ho;Kim Dong Soo
Journal of Aquaculture
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v.9
no.3
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pp.293-300
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1996
Validities of several gene transfer methods including microinjection, electroporation and lipo-fection with luciferase gene (pRSVL), and effectiveness of mud loach expression vector which contains ARS from mud loach on production of transgenic mud loach were evaluated. Microiniection revealed the $0\~8\%$ of transgene incidence in 2-week-old fish with significant mosaicism. Electroporation and lipofection of mud loach sperm also successfully introduced the transgene into sperm cells, and transferred the foreign DNA into zygote. Gene transfer by electroporation and lipofection showed a range of $0\~28\%$ and $0\~48.1\%$ of transgene incidence, respectively in newly hatched larvae, altough most DNA introduced were gradually degraded with the development of fish. Microinjections of mud loach expression vector caused a significantly reduced survival rate of mud loach embryos with severe teratogenic effects, and ARS/Luc transgene could not be detected in normally developed fish after microinjection.
Transgenic animals are produced primarily by microinjecting exogenous DNA into the male pronuclei of a zygote. Microinjection method for gene transmitting is successful in mice but not efficient in farm animals, limiting it's general utility such as a large scale facility and labour. Based on our finding that sperm cells bind with exogenous DNA, sperm was used as a vector for producing transgenic animals to introduced green fluorescence protein(GFP) gene. (omitted)
In vitro culture of murine embryos is an important step for in vitro production systems including in vitro fertilization and generations of genetically engineered mice. M16 is widely used commercialized culture media for the murine embryos. Compared to other media such as potassium simplex optimization medium, commercial M16 (Sigma) media lacks of amino acid, glutamine and antibiotics. In the present study, we optimized M16 based embryo culture system using commercialized antibiotics-glutamine or amino acids supplements. In vivo derived murine zygote were M16 media were supplemented with commercial Penicillin-Streptomycin-Glutamine solution (PSG; Gibco) or MEM Non-Essential Amino Acids solution (NEAA; Gibco) as experimental design. Addition of PSG did not improved cleavage and blastocyst rates. On the other hand, cleavage rate is not different between control and NEAA treated group, however, blastocyst formation is significantly (P<0.05) improved in NEAA treated group. Developmental competence between PSG and NEAA treated groups were also compared. Between two groups, cleavage rate was similar. However, blastocyst formation rate is significantly improved in NEAA treated group. Taken together, beneficial effect of NEAA on murine embryos development was confirmed. Effect of antibiotics and glutamine addition to M16 media is still not clear in the study.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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