Recently, it was reported that entire mammalian mtDNA genomes could be transplanted into the mitochondrial networks of yeast, where they were accurately and stably maintained without rearrangement as intact genomes. Here, it was found that engineered mtDNA genomes could be readily transferred to and steadily maintained in the mitochondria of genetically modified yeast expressing the mouse mitochondrial transcription factor A (Tfam), one of the mitochondrial nucleoid proteins. The transferred mtDNA genomes were stably retained in the Tfam-expressing yeast cells for many generations. These results indicated that the engineered mouse mtDNA genomes introduced in yeast mitochondria could be relocated into the mitochondria of other cells and that the transferred genomes could be maintained within a mitochondrial environment that is highly amenable to mimicry of the biological conditions in mammalian mitochondria.
Many of endocrine disrupting chemicals induce effects via interaction with hormone receptors and responsive elements in target cells. We investigated endocrine disrupting effects of some food additives and contaminants including BHA, BHT, ethoxyquin, propionic acid, sorbic acid, benzoic acid, CPM, aflatoxin B1, cadmium chloride, genistein, TCDD and PCBs in yeast transformants expressing human steroid hormone receptors along with steroid responsive elements. The response limit of genetically recombinant yeast to $17{\beta}$-estradiol, testosterone and progesterone was $1{\times}10^{-16},\;1{\times}10^{-12}\;and\;1{\times}10^{-13}M$, respectively. BHT induced weak transcriptional activity in estrogen sensitive yeast, while BHA and sorbic acid interacted weakly with androgen receptor/responsive element. CPM induced transcriptional activities in all types of yeasts sensitive to steroid hormones. Zearalenone and genistein induced high transcriptional activation in estrogen sensitive yeast with relative potencies almost $10^8$ folds lower than $17{\beta}$-estradiol. TCDD induced transcriptional activation weakly in estrogen- and progesterone- sensitive yeasts. This study elucidated that recombinant yeast is a sensitive and high-throughput system and can be used for the direct assessment on chemical interactions with steroid receptors and responsive elements. Also, the present study raises the requirement of evaluation on the endocrine disrupting effects of BHT, BHA, sorbic acid, CPM and TCDD for their transcription activity in yeast screening system though weak in intensity.
We assessed the regulation of cryparin, a class II hydrophobin, using three representative mitogen-activated protein kinase (MAPK) pathways in Cryphonectria parasitica. Mutation of the CpSlt2 gene, an ortholog of yeast SLT2 in the cell wall integrity (CWI) pathway, resulted in a dramatic decrease in cryparin production. Similarly, a mutant of the CpBck1 gene, a MAP kinase kinase kinase gene in the CWI pathway, showed decreased cryparin production. Additionally, mutation of the cpmk1 gene, an ortholog of yeast HOG1, showed decreased cryparin production. However, mutation of the cpmk2 gene, an ortholog of yeast Kss1/Fus3, showed increased cryparin production. The easy-wet phenotype and accumulation of the cryparin transcript in corresponding mutants were consistent with the cryparin production results. In silico analysis of the promoter region of the cryparin gene revealed the presence of binding motifs related to downstream transcription factors of CWI, HOG1, and pheromone responsive pathways including MADS-box- and Ste12-binding domains. Real-time reverse transcriptase PCR analyses indicated that both CpRlm1, an ortholog of yeast RLM1 in the CWI pathway, and cpst12, an ortholog of yeast STE12 in the mating pathway, showed significantly reduced transcription levels in the mutant strains showing lower cryparin production in C. prasitica. However, the transcription of CpMcm1, an ortholog of yeast MCM1, did not correlate with that of the mutant strains showing downregulation of cryparin. These results indicate that three representative MAPK pathways played a role in regulating cryparin production. However, regulation varied depending on the MAPK pathways: the CWI and HOG1 pathways were stimulatory, whereas the pheromone-responsive MAPK was repressive.
Transcription of mitochondrial DNA in the yeast S. cerevisiae depends on recognition of a consensus nonanucleotide promoter sequence by mitochondrial RNA polymerase specificity factor, which is a 43 kDa polypeptide encoded by the nuclear MTF1 gene. Mtf1p has only limited amino acid sequence homology to bacterial sigma factors, but functions in many ways like sigma in that it is required for promoter recognition and initiation of transcription. To analyze the corebinding region of Mtf1p, monoclonal antibodies to this protein were prepared. Recombinant Mtf1p overproduced in E. coli was purified to near homogeneity and used to raise monoclonal antibodies (mAbs). From fused cells screened for Mtf1p mAbs by immunodot blot analysis, 19 positive clones were initially isolated. Further analysis of positive clones by Western blotting resulted in 4 mAbs of Mtf1p.
Kubinski, Konrad;Zielinski, Rafal;Hellman, Ulf;Mazur, Elzbieta;Szyszka, Ryszard
BMB Reports
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제39권3호
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pp.311-318
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2006
One of the biggest group of proteins influenced by protein kinase CK2 is formed by factors engaged in gene expression. Here we have reported recently identified yeast transcription elongation factor Elf1 as a new substrate for both monomeric and tetrameric forms of CK2. Elf1 serves as a substrate for both the recombinant CK2$\alpha$' ($K_m$ 0.38 ${\mu}M$) and holoenzyme ($K_m$$0.13\;{\mu}M$). By MALDI-MS we identified the two serine residues at positions 95 and 117 as the most probable in vitro phosphorylation sites. Co-immunoprecypitation experiments show that Elf1 interacts with catalytic ($\alpha$ and $\alpha$') as well as regulatory ($\beta$ and $\beta$') subunits of CK2. These data may help to elucidate the role of protein kinase CK2 and Elf1 in the regulation of transcription elongation.
The present study was performed to analyze the molecular mechanism which dictates the transcription regulation of the $O^6$-methylguanine-DNA methyltransferase (MGMT) gene in Saccharomyces cerevisiae. Previously we identified one possible upstream repressing sequence (URS) in MGMT promoter by promoter deletion and competition analysis. In this paper we report another regulatory element (UAS: upstream activating sequence. -213 to -136) which affects the transcription activity of MGMT promoter. Gel mobility shift assay and Southwestern blot analysis using UAS probe showed several specific proteins which were able to bind to this sequence.
Hahn, Ji-Sook;Hu, Zhanzhi;Thiele, Dennis J.;Lyer, Vishwanath R.
한국미생물학회:학술대회논문집
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한국미생물학회 2005년도 International Meeting of the Microbiological Society of Korea
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pp.105-109
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2005
Heat Shock Transcription Factor (HSF), and the promoter heat Shock Element (HSE), are among the most highly conserved transcriptional regulatory elements in nature. HSF mediates the transcriptional response of eukaryotic cells to heat, infection and inflammation, pharmacological agents, and other stresses. While HSF is essential for cell viability in yeast, oogenesis and early development in Drosophila, extended life-span in C. elegans, and extra-embryonic development and stress resistance in mammals, little is known about its full range of biological target genes. We used whole genome analyses to identify virtually all of the direct transcriptional targets of yeast HSF, representing nearly three percent of the genomic loci. The majority of the identified loci are heat-inducibly bound by yeast HSF, and the target genes encode proteins that have a broad range of biological functions including protein folding and degradation, energy generation, protein secretion, maintenance of cell integrity, small molecule transport, cell signaling, and transcription. Approximately 30% of the HSF direct target genes are also induced by the diauxic shift, in which glucose levels begin to be depleted. We demonstrate that phosphorylation of HSF by Snf1 kinase is responsible for expression of a subset of HSF targets upon glucose starvation.
Tandem affinity purification (TAP) method combined with LC-MS/MS is the most accurate and reliable way to study the interaction of proteins or proteomics in a genome-wide scale. For the first time, we used a TAP-tag as a mutagenic tool to disrupt protein interactions at the specific site. Although lots of commonly used mutational tools exist to study functions of a gene, such as deletional mutations and site-directed mutagenesis, each method has its own demerit. To test the usefulness of a TAP-tag as a mutagenic tool, we applied a TAP-tag to RNA polymerase II, which is the key enzyme of gene expression and is controlled by hundreds of transcription factors even to transcribe a gene. Our experiment is based on the hypothesis that there will be interrupted interactions between Pol II and transcription factors owing to the TAP-tag attached at the C-terminus of each subunit of Pol II, and the abnormality caused by interrupted protein interactions can be observed by measuring a cell-cycle of each yeast strain. From ten different TAP-tagged strains, Rpb7- and Rpb12-TAP-tagged strains show severe defects in growth rate and morphology. Without a heterodimer of Rpb4/Rpb7, only the ten subunits Pol II can conduct transcription normally, and there is no previously known function of Rpb7. The observed defect of the Rpb7-TAP-tagged strain shows that Rpb7 forms a complex with other proteins or compounds and the interruption of the interaction can interfere with the normal cell cycle and morphology of the cell and nucleus. This is a novel attempt to use a TAP-tag as a proteomic tool to study protein interactions.
Park, So-Young;Park, Na-Hyun;Kwon, Eun-Jeong;Yoo, Mi-Ye
Journal of Life Science
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제9권2호
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pp.52-56
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1999
The Raf, a cytoplasmic serine/thereonine protein kinase, acts as an important mediator of signals involving cell proliferation, differentiation and development. Multiple regulatory elements should participate in the expression of D-raf, Drosophila homolog of human c-raf-1. In order to search regulatory factors involved in the D-raf promoter activation, we accomplished the yeast one-hybrid screening using D-raf promoter region from bp-330 to -309 with respect to the transcription initiation site as bait. After screening, sixteen independent positive clones of ${\beta}$-galactosidase activties were identified and sequenced. Two clones having 94-98% identity with daughterless and one clone having 93% identity with escargot by Blast search among these clones were screened.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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