콩 불마름병균 Xanthomonas campestris pv. glycines 8ra는 X. c. pv. vesicatoria에 길항력이 있는 bacteriocin인 glycinecin을 생성 분비한다. Bacteriocin 생성 분비 능력이 있는 콩 불마름병균을 효과적인 생물학적 방제원으로 활용하기 위해서는 좀더 체계적인 연구가 필요하여, bacteriocin 생성에 관계되는 유전자의 분리를 시도하였다. 약 2,000개의 Xanthomonas campestris pv. glycines 8ra cosmid library에서 bacteriocin의 생성 분비 능력을 조사하여 다섯 개의 clone을, pG011, pG0113, pG33과 pG35, 선발하였다. 그중 한 clone pG08을 임의로 선택하여 plasmid DNA를 분리하였다. Plasmid pG08에서 약 6.0 kb의 DNA를 떼어내어 다른 plasmid vector에 넣은 subclone pBL5는 bacteriocin의 생성 분비 능력이 있었다. Plasmid pG08을 제한효소 처리후 다시 접함시켜 만든 몇 개의 subclone과 pBL5의 제한효소 지도를 비교 분석한 결과 약 3.0 kb의 BamHI-HindIII 부분의 DNA가 bacteriocin의 생성에 관계함을 알았다.
Xanthomonas campestris pv. glycines 8ra causes bacterial pustule disease on susceptible soybean leaves and produces a bacteriocin, named glycinecin, against related bacteria such as Xanthomonas campestris pv. vesicatoria. The antimicrobial activity of the glycinecin was effective to most tested Xanthomonas species. X. c. pv. glycines 8ra was able to produce the glycinecin in liquid media as well as solid media. Maximal productivity of glycinecin was obtained at 3$0^{\circ}C$ in the early stationary phase of growth of the X. c. pv. glycines 8ra. The production of glycinecin was not dependent on the initial inoculum level but on cell density. Glycinecin was very sensitive to proteolytic enzymes such as trypsin and proteinase K but resistant to DNase and RNase. The culture supernatant of X. c. pv. glycines 8ra retained some of its antimicrobial activity after 15 min at 6$0^{\circ}C$. It is stable at wide range of pH. The glycinecin showed the bactericidal activity after the adsorption of the glycinecin to the sensitive bacterial cell.
Bacterial population densities on soybean pods from Chungnam province ranges 105~106 CFU/$\textrm{cm}^2$, whereas those of bacteria causing sprout rot ranged 0~103 CFU/$\textrm{cm}^2$. Erwinia chrysanthemi, Xanthomonas campestris pv. glycines, Staphylococcus sp., and Micrococcus sp. were identified as pathogenic bacteria causing soybean sprout rot. The population density of X. campestris pv. glycines was higher than those of other bacteria.
Bacterial population density on soybean leaves was $10^2~10^5CFU/cm^2$. Bacterial population density was increased by progress of plant growth stage. Population density of soybean sprout rotting bacteria on soybean leaves was $0~10^3CFU/cm^2$. Population density of soybean sprouts rotting bacteria was related to cultivating area, but not related to plant growth stage. Cultivar and population density of soybean sprout rotting bacteria were less corelated, and varied by plant growth stages and plant parts. Erwina cypripedii, E. carotovora subsp. carotovora, Xanthomonas campestris pv. glycines, Staphylococcus sp., and Micrococcus sp. were identified as pathogenic bacteria causing soybean sprout rot. In generally population density of E. cypripedii, E. carotovora subsp. carotovora, Micrococcus sp., and X. campestris pv. glycines were high.
Xanthomonas campestris pv. glycines causes bacterial pustule disease on susceptible soybean leaves and produces a bacteriocin, named glycinecinA, against most xanthomonads including Xanthomonas campestris pv. vesicatoria. One of the 5 isolated DNA regions responsible for bacteriocin production, a 1.7 kb DNA region for the glycinecinA gene, was used as a probe to detect the presence of the homolog DNA in other bacterial strains. Among 55 bacterial strains tested, only X. campestris pv. glycines showed the positive signal with glycinecinA DNA. Two oligomers, heu2 and heu4, derived from a glycinecinA DNA were used to carry out the polymerase chain reaction (PCR) analysis with chromosomal DNA from 55 different bacterial strains including 24 different strains of X. campestris pv. glycines, 9 different pathovars of xanthomonads, and other 22 bacterial strains of different genus and species. By separation of the PCR products on agarose gel, a 0.86 kb DNA fragment was specifically detected when X. campestris pv. glycines was present in the amplification assay. The 0.86 kb fragment was not amplified when DNA from other bacteria was used for the assay. Southern analysis with glycinecinA DNA showed that the PCR signal was obtained with X. campestris pv. glycines isolates from various geographic regions and soybean cultivars. Therefore, the 1.7 kb DNA region for the glycinecinA gene can be used for the pathovar-specific probe for the DNA hybridization and the primers heu2 and heu4 can be used for the pathovar-specific primers for the PCR analysis to detect X. campestris pv. glycines.
Nonpathogenic mutants of Xanthomonas campestris pv. glycines were generated with Omegon-Kim to isolate genes essential for pathogenicity and inducing hypersensitive response (HR). Three nonpathogenic multants and two mutants showing slow symptom development were isolated among 1,000 colonies tested. From two nonpathogenic mutants, 8-13 and 26-13, genes homologous to hrcC and hrpF of X. campestris pv. vesicatoria were identified. The nonpathogenic mutant 8-13 had a mutation in a gene homologous to hrpF of X. campestris pv. vesicatoria and failed to cause HR on pepper plants but still induced HR on tomato leaves. The nonpathogenic mutant 26-13 had an insertional mutation in a gene homologous to hrcC of X. campestris pv. vesicatoria and lost the ability to induce HR on pepper leaves but still caused HR on tomato plants. Unlike other phytopathogenic bacteria, the parent strain and these two mutants of X. campestris pv. glycines did not cause HR on tobacco plants. a cosmid clone, pBL1, that complemented the phenotypes of 8-13 was isolated. From the analysis of restriction enzyme mapping and deletion analyses of pBL1, a 9.0-kb Eco RI fragment restored the phenotypes of 8-13. pBL1 failed to complement the phenotypes of 26-13, indicating that the hrcC gene resides outside of the insert DNA of pBL1. One nonpathogenic mutant, 13-33, had a mutation in a gene homologous to a miaA gene encoding tRNA delta (2)-isopentenylpyrophosphate transferase of Escherichia coli. This indicated that tRNA modifications in X. campestris pv. glycines may be required for expression of genes necessary for pathogenicity. The mutant 13-33 multiplied as well as the parent strain did in the culture medium and in planta, indicating that loss of pathogenicity is not due to the inability of multiplication in vivo.
Plant-pathogenic bacteria including Xanthomonas spp. carry genetic diversity in composition of avirulence genes for interaction with their host plants. Previously, we reported genetic diversity of avirulence genes in X. axonopodis pv. glycines. In this study, we determined genetic diversity of five avirulence genes, avrBs1, avrBs2, avrBs3, avrBs4, and avrRxv, in three other Xanthomonas species isolated in Korea by genomic southern hybridization. Although Korean races of X. campestris pv. vesicatoria that were isolated from year 1995 to 2002 had the same avirulence gene patterns as those that already reported, there was race shift from race 3 to race 1 by acquisition of avrBs3 genes. X. campestris pv. campestris isolated from Chinese cabbage, but not from cabbage or radish, carried two avrBs3 genes, and one of them affected HR-eliciting ability of this bacterium in broccoli. X. oryzae pv. oryzae carried eight to thirteen avrBs3 gene homologs, and this bacterium showed dynamic changes of resistance patterns in rice probably by losing or obtaining avrBs3 genes. These results indicate that avrBs3 gene is more diverse in Xanthomonas spp. than other four avirulence genes and also host ranges of these bacteria can be easily changed by loss or acquisition of avrBs3 genes.
Proceedings of the Korean Society of Plant Pathology Conference
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2003.10a
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pp.71.1-71
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2003
Most major plant pathogenic bacteria in Korea belong to Xanthomonas spp.. Xanthomonas oryzae pv. oryzae is a major pathogen in rice, X. campestris pv. vesicatoria in pepper, X. axonopodis pv. giycines in soybean, X. campestris pv. campestris in cabbage, and X. axonoposid pv. citri in tangerin. Host specificity of the bacterial pathogen depends on the avirulence gene in the pathogen and the corresponding resistance gene in host plants. Many avirulence genes in bacteiral pathogen located on the native plasmids. However, the presence of the native plasmids in Xanthomonas spp. was not investigated well. In order to study the host specificity, we isolated native plasmids from Xanthomonas spp. and compared those plasmids each other, The presence of the native plasmids and the characteristics of the plasmids depended on the bacterial strains. In the X. axonopodis pv. glycines, most strains carried native plasmids but some strains did not. Some strains carry about 60 kb native plasmids including 3 different aviurlence genes. We will discuss the characteristics of the native plasmids isolated from the Xanthomonas spp.
A new primer set was developed for the detection and identification of Xanthomonas oryzae pv. oryzae, the bacterial leaf blight (BLB) pathogen in rice plant. The nucleotide sequence of hpaA gene was determined from X. o. pv. oryzae str. KACC10331, and the sequence information was used to design primers for the application of the polymerase chain reaction (PCR). The nucleotide sequence of hpaA from X. o. pv. oryzae str. KACC 10331 was aligned with those of X. campestris pv. vesicatoria, X. campestris pv. campestris, X. axonopodis pv. citri, and X. axonopodis pv. glycines. Based on these results, a primer set(XOF and XOR) was designed for the specific detection of hpaA in X. o. pv. oryzae. The length of PCR products amplified using the primer set was 534-bp. The PCR product was detected from only X. o. pv. oryzae among other Xanthomonas strains and reference bacteria. This product was used to confirm the conservation of hpaA among Xanthomonas strains by Southern-blotting. Furthermore, PCR amplification with XOF and XOR was used to detect the pathogen in an artificially infected leaf. The sensitivity of PCR detection in the pure culture suspension was also determined. This PCR-based detection methods will be a useful method for the detection and identification of X. o. pv. oryzae as well as disease forecasting.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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