Protoporphyrin IX is an intermediate molecule in the heme biosynthetic pathway. Intra- and extracellular concentrations of protoporphyrin IX in the wild type strain, Myxococcus xanthus DK1622 were measured by reverse phase HPLC. The amount of intracellular protoporphyrin IX continuously increased and reached 6.4 picomoles/mg of protein at the stationary phase. Extracellular protoporphyrin IX began to be detected from the mid-exponential phase. The culture supernatant that was collected in the stationary phase contained approximately 3.0 picomoles of proto-porphyrin IX per mg of protein. Spores formed by nutrient depletion contained about 6.5 picomole protoporphyrin IX/mg of protein. The synthesis of protoporphyrin IX and cell growth were strongly inhibited by addition of succinylacetone to a final concentration of $500\muM$. Succinylacetone, however did not appear to interfere developmental processes. Normal developmental behaviors including aggregation and spore formation was achieved even if succinylacetone was added in a medium. Photolysis among cells grown on a starvation medium supplemented with succinylacetone was also observed. These results indicate that protoporphyrin IX may be important to M. ,xanthus vegetative growth, but not critical to development processes.
The AtPGR gene is induced by pathogen infection, jasmonic acid and salicylic acid treatment and may therefore play a role in plant defense responses. Arabidopsis thaliana Plasma membrane Glucose-responsive Regulator (AtPGR) was previously isolated from Arabidopsis, which confers glucose insensitivity on plants. To study its biological functions directly, we have characterized both loss-of-function RNAi mutant and gain-of-function transgenic overexpression plants for AtPGR in Arabidopsis. The AtPGR-overexpressing plants displayed enhanced resistance to a virulent strain of the bacterial pathogen Pseudomonas syringae as measured by a significant decrease in both bacterial growth and symptom development as compared to those in wild-type and RNAi plants. The enhanced resistance in the gain-of-function transgenic plants was associated with increased induction of SA-regulated PDF1.2 and JA-regulated PR1 by the bacterial pathogen. Thus, pathogen-induced AtPGR plays a positive role in defense responses to P. syringae.
Proceedings of the Microbiological Society of Korea Conference
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2006.05a
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pp.105-107
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2006
Two kinds of nucleoside hydrolases (NHs) encoded by rih1 and rih2 were cloned from Corynebacterium ammoniagenes using deoD- and gsk-defective Escherichia coli. Sequence analysis revealed that NH 1 was a protein of 337 aa with a deduced molecular mass of 35,892 Da, whereas NH 2 consisted of 308 aa with a calculated molecular mass of 32,310 Da. Experiments with crude extracts of IPTG-induced E. coli CGSC 6885(pTNU23) and 6885(pTNI12) indicated that the Rihl enzyme could catalyse the hydrolysis of uridine and cytidine and showed pyrimidine-specific ribonucleoside hydrolase activity. Rih2 was able to hydrolyse both purine and pyrimidine ribonucleosides with the following order of activity-inosine>adenosine>uridine>guanosine>xanthosine>cytidine-and was classified in the non-specific NHs family. rih1 and rih2 deletion mutants displayed a decrease in cell growth on minimal medium supplemented with pyrimidine and purine/pyrimidine nucleosides, respectively, compared with the wild-type strain. Growth of each mutant was substantially complemented by introducing rih1 and rih2, respectively. Furthermore, disruption of both rih1 and rih2 led to the inability of the mutant to utilize purine and pyrimidine nucleosides as sole carbon source on minimal medium. These results indicated that rih1 and rih2 play major roles in the salvage pathways of nucleosides in this micro-organism.
Bacterial cell surface components are the major factors responsible for pathogenesis and bioremediation. In particular, the surface of a Gram-negative bacterium cell has a variety of components compared to that of a Gram-positive cell. In our previous study, we isolated an isogenic mutant of Bradyrhizobium japonicum, which exhibited altered cell surface characteristics, including an increased hydrophobicity. Polyacrylamide gel electrophoretic analysis of the lipopolysaccharide (LPS) in the mutant demonstrated that the O-polysaccharide part was completely absent. Meanwhile, a gel permeation chromatographic analysis of the exopolysaccharide (EPS) in the mutant demonstrated that it was unaltered. Since LPSs are known to have several anion groups that interact with various cation groups and metal ions, the mutant provided an opportunity to examine the direct role of LPS in metal binding by B. japonicum. Using atomic absorption spectrophotometry, it was clearly demonstrated that LPS was involved in metal binding. The binding capacity of the LPS mutant to various metal ions $(Cd^{2+},\;Cu^{2+},\;Pb^{2+},\;and\;Zn^{2+})$ was 50-70% lower than that of the wild-type strain. Also, through an EPS analysis and desorption experiment, it was found that EPS and centrifugal force had no effect on the metal binding. Accordingly, it would appear that LPS molecules on B. japonicum effect the properties, which precipitate more distinctly metal-rich mineral phase.
Vibrio vulnificus is an opportunistic pathogen that causes septicemia in humans. To identify the genes associated with its pathogenicity, in vivo expression technology (IVET) was used to select genes specifically expressed in a host, yet not significantly in vitro. Random lacZ-fusions in the genome of V vulnificus strain MO6-24/O were constructed using an IVET vector, pSG3, which is a suicide vector containing promoterless-aph and -lacZ as reporter genes. A total of ${\sim}18,000$ resulting library clones were then intraperitoneally injected into BALB/c mice using a colony forming unit (CFU) of $1.6{\times}10^6$. Two hours after infection, kanamycin was administered at $200{mu}g$ per gram of mouse weight. After two selection cycles, 11 genes were eventually isolated, which were expressed only in the host. Among these genes, VV20781 and VV21007 exhibiting a homology to a hemagglutinin gene and tolC, respectively, were selected based on having the highest frequency. When compared to wild-type cells, mutants with lesions in these genes showed no difference in the rate of growth rate, yet a significant decrease in cytotoxicity and the capability to form a biofilm.
Lactobacilli are universally recognized as probiotics that are widely used in the adjuvant treatment of inflammatory diseases, such as vaginitis and enteritis. With the overuse of antibiotics in recent years, the lactobacilli in the human body are killed, which could disrupt the microecological balance in the human body and affect health adversely. In this work, cephalosporin-resistant Lactobacillus casei RL20 was obtained successfully from the feces of healthy volunteers, which possessed a stable genetic set. However, the shortage of lactic acid (72.0 g/l at 48 h) by fermentation did not meet the requirement for its use in medicine. To increase the production of lactic acid, the functional genes pfk and glk were introduced into the wild strain. A yield of 144.2 g/l lactic acid was obtained in the transgenic L. casei RL20-2 after fermentation for 48 h in 1 L of basic fermentation medium with an initial glucose concentration of 100 g/l and increasing antibacterial activity. These data suggested that L. casei RL20-2 that exhibited a high yield of lactic acid may be a potential probiotic to inhibit the spread of bacterial infectious diseases and may be used for vaginitis therapy.
Phosphomannomutase (ManB) is involved in the biosynthesis of GDP-mannose, which is vital for numerous processes such as synthesis of carbohydrates, production of alginates and ascorbic acid, and post-translational modification of proteins. Here, we discovered that a deletion mutant of manB (BG101) in Streptomyces coelicolor (S. coelicolor) showed higher sensitivity to bacteriostatic chloramphenicol (CM) than the wild-type strain (M145), along with decreased production of CM metabolites. Deletion of manB also decreased the mRNA expression level of drug efflux pumps (i.e., cmlR1 and cmlR2) in S. coelicolor, resulting in increased sensitivity to CM. This is the first report on changes in antibiotic sensitivity to CM by deletion of one glycolysis-related enzyme in S. coelicolor, and the results suggest different approaches for studying the antibiotic-resistant mechanism and its regulation.
Agrobacterium-mediated transformation was conducted in order to generate DNA insertional mutants of Flammulina velutipes. Agrobacterium tumefaciens AGL-1 harboring pBGgHg was transformed into gill tissues of Flammulina velutipes strain KACC42777. The transformants resistant on hygromycine ($30\;{\mu}g/ml$) were confirmed by PCR. The targeted insertional sites were amplified by inverse PCR and sequenced. To find the phenotype variation of all generated transformants, bottle cultivation which followed by the standard cultivation protocol were conducted. Color variation was observed on the cultivated fruiting bodies. Furthermore, the transformant pool will be used as a good genetic resources for studying gene function.
We have analyzed the MRE3/REC114 gene of Saccharomyces cerevisiae, previously detected in isolation of mutants defective in meiotic recombination. We cloned the MRE3/REC114 gene by complementation of the meiotic recombination defect and it has been mapped to chormosome XIII. The DNA sequence analysis revealed that the MRE3 gene is identical to the REC114 gene. The upstream region of the MRE3/REC114 gene contains a T_4C site, a URS (upstream repression sequence) and a TR (T-rich) box-like sequence, which reside upstream of many meiotic genes. Coincidentally, northern blot analysis indicated that the three sizes of MRE3/REC114 transcripts, 3.4, 1.4 and 1.2 kb, are induced in meiosis. A less abundant transcript of 1.4 kb is detected in both mitotic and meiotic cells, suggesting that it is needed in mitosis as well as meiosis. To examine the role of the MRE3/REC114 gene, we constructed mre3 disruption mutants. Strains carrying an insertion or null deletion of the MRE3/REC114 gene showed slow growth in nutrient medium and the doubling time of these cells increased approximately by 2-fond compared to the wild-type strain. Moreover, the deletion mutant (${\delta}$mre3) displayed no meiotically induced recombination and no viable spores. The mre3/rec114 spore lethality can be suppressed by spo13, a mutation that causes cells to bypass reductional division. The double-stranded breaks (DSBs) which are involved in initiation of meiotic recombination were not detected in the analysis of meiotic chromosomal DNA from the mre3/rec114 disruptant. From these results we suggest that the MRE3/REC114 gene product is essential in normal growth and in early meiotic stages involved in meiotic recombination.
Objectives: This study was designed to evaluate the synergistic antibacterial effect of xylitol and ursolic acid (UA) against oral biofilms in vitro. Materials and Methods: S. mutans UA 159 (wild type), S. mutans KCOM 1207, KCOM 1128 and S. sobrinus ATCC 33478 were used. The susceptibility of S. mutans to UA and xylitol was evaluated using a broth microdilution method. Based on the results, combined susceptibility was evaluated using optimal inhibitory combinations (OIC), optimal bactericidal combinations (OBC), and fractional inhibitory concentrations (FIC). The anti-biofilm activity of xylitol and UA on Streptococcus spp. was evaluated by growing cells in 24-well polystyrene microtiter plates for the biofilm assay. Significant mean differences among experimental groups were determined by Fisher's Least Significant Difference (p < 0.05). Results: The synergistic interactions between xylitol and UA were observed against all tested strains, showing the FICs < 1. The combined treatment of xylitol and UA inhibited the biofilm formation significantly and also prevented pH decline to critical value of 5.5 effectively. The biofilm disassembly was substantially influenced by different age of biofilm when exposed to the combined treatment of xylitol and UA. Comparing to the single strain, relatively higher concentration of xylitol and UA was needed for inhibiting and disassembling biofilm formed by a mixed culture of S. mutans 159 and S. sobrinus 33478. Conclusions: This study demonstrated that xylitol and UA, synergistic inhibitors, can be a potential agent for enhancing the antimicrobial and anti-biofilm efficacy against S. mutans and S. sobrinus in the oral environment.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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