Proteolytic processing of the dengue virus serotype 2 polyprotein precursor is catalyzed by a host signal peptidase and a virus encoded two-component protease consisting of the nonstructural proteins, NS2B and NS3. We expressed in Escherichia coli the NS2B, NS3(pro) and NS2B-NS3 proteins from the dengue virus type 2 strain 16681 as N-terminal fusions with a hexahistidine affinity tag under the control of the inducible trc promoter. All fusion proteins were purified to >90% purity by detergent extraction of inclusion bodies and a single step metal chelate chromatography. Proteins were refolded on-column and recovered with yields of 0.5, 6.0 and 1.0 mg/l of E. coli culture that was grown to $OD_{600}=1.0$ for NS2B, NS3(pro) and NS2B-NS3, respectively. Purified proteins gave strong signals in Western blots using $Ni^{2+}-nitrilotriacetic$ acid as a probe for the presence of the polyHis tag. During the purification process, $(His)_{6}NS2B-NS3$ was apparently not autoproteolytically cleaved at the NS2B/NS3 site.
A stable preservation method of extracellular non-occluded virion of Autographa californica nuclear polyhedrosis virus (AcNPV) was studied. AcNPVL-1 strain infected to Spodoptera frugiperda cell line and then the culture media were centrifuged. After centrifugation the supernatant containing extracellular nonoccluded virions of the AcNPV was harvested and incubated at $4^{\circ}C$ . Even after the extracellular nonoccluded virions were incubated at $4^{\circ}C$ for about 11 years, the infectivity and multiplication property of the nonoccluded virions in the S. frugiperda cell line were normal. However the titers of the nonoccluded virions in TC-100 medium measured about 11 years ago decreased from $8.9 \times 10^7\; to \;3.8 \times 10^5$ pfu per ml. The AcNPV genome DNA fragment patterns from digestion with Hind11 and EcoRI restriction endonucleases did not change. The AcNPV nonoccluded virions were stable at $4^{\circ}C$ in the cultured medium of more than 10 years and the preservation of AcNPV nonoccluded virions at $4^{\circ}C$ is easy and useful for handling.
A reverse transcription polymerase chain reaction (RT-PCR) protocol was developed using two specific 22-mer primers located in coat protein gene of SPFMV. A 411 bp PCR-product was detected in virus infected plants as well as tissue culture raised sweet potato but not in healthy plants. For optimization of RT-PCR protocol, the optimum crude nucleic acid concentration, annealing temperature, primer concentration and numbers of PCR-cycle for maximum sensitivity and specificity were determined. The optimum condition for RT-PCR was as follows: RT-PCR reaction mixture was one-step mixture, containing 50 pmol of primer, 30 units of reverse transcriptase, 5 units of RNasin, and the crude nucleic acid extracts (200 ng). In RT-PCR, cDNA was synthesized at $42^{\circ}C$ for 45 min before a quick incubation on ice after pre-denaturation at $95^{\circ}C$ for 5 min. The PCR reaction was carried out for 40 cycles at $96^{\circ}C$ for 30 see, $63^{\circ}C$ for 30 sec, $72^{\circ}C$ for 1 min, and finally at $72^{\circ}C$ for 10 min. The viral origin of the amplified product was confirmed by sequencing, with the sequence obtained having $95-98\%$ homology with published sequence data for SPFMV. The benefits of this RT-PCR based detection of SPFMV would be simple, rapid and specific.
Various extracts from 30 medicinal plants were evaluated for their antiviral activity against influenza virus A/Puerto Rico/8/34 (H1N1) and cytotoxicity in MDCK cell culture. The plant material (30 g) was extracted with methanol (300 mL) at room temperature for 24 h, after which the methanolic extracts were filtered, evaporated, and subsequently lyophilized. Evaluation of the potential antiviral activity was conducted by a viral replication inhibition test. Among these medicinal plants, Tussilago farfara, Brassica juncea, Prunus armeniaca, Astragalus membranaceus, Patrinia villosa, and Citrus unshiu showed marked antiviral activity against influenza virus A/H1N1 at concentrations ranging from 0.15625 mg/mL to 1.25 mg/mL, 0.3125 mg/mL to 10 mg/mL, 5 mg/mL to 10 mg/mL, 0.625 mg/mL to 10 mg/mL, 0.625 mg/mL to 10 mg/mL, and 0.3125 mg/mL to 5 mg/mL, respectively. The extracts of Tussilago farfara showed cytotoxicity at concentrations greater than 2.5 mg/mL, whereas the other five main extracts showed no cytotoxicity at concentrations of 10 mg/mL. Taken together, the present results indicated that methanolic extracts of the six main plants might be useful for the treatment of influenza virus H1N1.
Canine adenovirus type 2 (CAV-2) infection results in significant respiratory illness in dogs. Isolating and culturing CAV-2 allows for investigations into its pathogenesis and the development of vaccines and diagnostic assays. In this study, we successfully isolated a virus from a naturally infected dog in Gyeonggi-do, Korea. The virus was propagated in Madin-Darby canine kidney (MDCK) and Vero cells and showed a specific cytopathic morphology that appeared similar to a bunch of grapes. The virus was first confirmed as CAV-2 based on these cytopathic effects, an immunofluorescence assay, hemagglutination assay, and electron microscopy. The viral titer of the isolate designated APQA1601 reached $10^{6.5}$ 50% tissue culture infections dose per mL in MDCK cells and exhibited no hemagglutination units with erythrocytes from guinea pig. The virus was also confirmed by polymerase chain reaction and next-generation sequencing. The APQA1601 strain had the highest similarity (~99.9%) with the Toronto A26/61 strain, which was isolated in Canada in 1976 when the nucleotide sequences of the full genome of the APQA1601 strain were compared with those of other CAV strains. Isolating CAV-2 will help elucidate the biological properties of CAV-2 circulating in Korean dogs.
Sa, Young-Hee;Kim, Hyun Joo;Lee, Bae Hwan;Hong, Seong-Karp
Proceedings of the Korean Institute of Information and Commucation Sciences Conference
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2019.05a
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pp.528-532
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2019
The dorsal root ganglion (DRG) was isolated from mouse embryos and Schwann cells and neuronal cells were cultured in vitro. The neurons and Schwann cells were cultured separately and the two kinds of cells were cultured together for three weeks. Generation of myelination was confirmed by transmission electron microscope and confocal microscope using a myelinaion protein, myelin protein zero (MPZ) antibody. The sindbis virus was infected for three days in the myelinated culture cells and then demyelination was carried out. The process of demyelination was also confirmed by transmission electron microscopy and confocal microscopy using myelin protein zero (MPZ) antibody. The study was supported by a Basic Research Program through the National Research Foundation (NRF) funded by the Ministry of Science and Technology, ICT and Future Plans (NRF-2016R1A2B4016552 and 2017R1A2B3005753).
Porcine transmissible gastroenteritis (TGE) has been a significant cause of economic losses in pig farming industry since 1950s. Although transmissible gastroenteritis virus (TGEV) has declined in recent years, it should not be excluded because of its characteristics; the frequency of gene mutation, the mortality in piglets, and the possibility for sudden incidence. Therefore, the herd-level monitoring of the virus is important to prevent further circulation of TGE. The aim of this study is to develop a large-scale sandwich enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA) with high specificity to rapidly detect TGEV in feces by using monoclonal antibodies (Mabs). The TGEV specific Mabs were produced in hybridoma cells. Among the Mabs belonged to the IgG class developed by this study, the final selected 8H6, 1B7, 4G3, and 1F8 were identified to have the neutralization ability against TGEV. The sandwich ELISA was established using 8H6 as a reporter antibody and 1B7 and the reported 5C8 as a capture antibody. The developed sandwich ELISA was able to distinguish TGEV from other pathogenic diarrheal agents (porcine rotavirus, porcine reovirus, porcine epidemic diarrhea virus (PEDV), E. coli, and C. perfringens) in tissue culture as well as fecal samples. And the detection rate of TGEV in feces was 80% compared with RT-PCR. The results suggested that the developed sandwich ELISA may be useful in the herd-level monitoring for effective preventive measures due to the early diagnosis of TGEV using a large amount of samples.
Many studies have been performed on the bovine leukemia virus (BLV) since bovine leukosis had been reported in 1968 in Korea. However, there was no report on the ultrastructural examination of BLV. An attempt to detect C-type viral particles in the cultured peripheral blood lymphocytes of Holstein-Friesian dairy cattle, was made to determine whether in vitro viral expression might be used as a reliable method to identify the cow which is likely to transmit BLV. In transmission electron microscopic (TEM) examination, the virus particles were found predominantly outside of the lymphocytes even though a few particles were also observed within the membrane bound cytoplasmic vacuoles. All of them were C-type particles consisting of a central, electron-dense core separated by a clear area from a limiting envelope with a unit membrane structure. Virus particles were easily detected in the lymphocyte which was cultured with medium supplemented with either T-lymphocyte mitogen (conconavalin A) or B-lymphocyte mitogen (lipopolysaccharide). Identical viral particles, although fewer, were also consistently present in the lymphocytes cultured with medium which was containing foetal bovine serum (FBS) only and which was containing neither FBS or mitogen. By contrast, no virus particle was detected in extensive examination of lymphocytes before culture. In conclusion, the BLV cultivation and detection methods established in this study could be used as a tool to identify and eliminate the cattle which can transmit the BLV.
Sa, Young-Hee;Kim, Hyun Joo;Kweon, Tae Dong;Kim, Ji-Young;Lee, Bae Hwan;Hong, Seong-Karp
Proceedings of the Korean Institute of Information and Commucation Sciences Conference
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2018.05a
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pp.584-587
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2018
Many viruses including mouse hepatitis virus, corona, measles, and sidbis viruses are known as causative virus of inducing demyelination which means destruction of myelination in nervous system of mice. The purpose of this study is to investigate processing of myelination by co-culture of Schwann cells and neuronal cells and demyelination induced by infection of sindbis virusin rat. Schwann cells and neuronal cells from dorsal root ganglion (DRG) in embryos (E16) of rat were cultured in vitro respectively. The purified neuronal cells with anti-mitotic agents and purified Schwann cells were co-cultured. After that, infection of sindbis virus into this myelinated co-culture system was performed. Myelination and demyelination process were observed using antibody of myelin basic protein meaning presence of myelination.We identified myelination and demyelination processing using antibody of peripheral myelin protein 22 (PMP 22) meaning presence of myelinated neuron. This study was supported by the Basic Research Program through the National Research Foundation (NRF) funded by the Ministry of Science, ICT & Future Planning (NRF-2015R1C1A1A01053484 and 2017R1A2B3005753).
Japanese encephalitis virus (JEV) persistence was established and maintained in Vero cell culture for over 1 year. Eleven clones of plaque morphology mutant JEV, with large and small plaque sizes, were obtained from the cell culture supernatant. Genomic RNA replication efficiency of the mutants in naive Vero cell appeared to correspond to their different plaque sizes. No significant changes in envelop protein ORF or in non-coding regions at both ends of the RNA genome suggested that there could be an unidentified factor(s) playing role in JEV attenuation. Unlike to the replication of wild-type JEV, the mutants did not induce severe degree of cytopathic effect in Vero cells upon infection. While obvious decrease of Bcl-2 and its mRNA expression and sharp increase of p53 in naive Vero cells infected with either wild-type JEV or the large plaque-forming mutant, those changes were not observed with the small plaque-forming one. Together with these observation, internucleosomal DNA fragmentation and chromosomal DNA profile in the Vero cells infected with the mutants suggest that an overall changes in cytopathic effect in the plaque morphology mutants-infected cells should be primarily due to the reduced genomic RNA replication and the compromised degree of p53-independent apoptosis by the virus infection at least in part.
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