The long terminal repeat (LTR) of retroviral DNA genome plays an important role in the integration process by providing substrate recognition site for viral integrase (IN). The dinucleotide CA near the 3'-end of the LTR termini is completely conserved among retoviruses. In order to study specificity of interaction between prototype foamy virus (PFV) IN and its U5 LTR DNA, the effect of mutagenesis of the CA sequence was investigated by studying reactivity of PFV IN to the mutant LTR substrates. Replacement of only the C or the A allowed 60 to 100% of the reactivity of the wild type LTR substrate. In addition, replacement of the C and the A showed 50 to 80% of the reactivity of the wild type LTR substrate, indicating that PFV IN has less specificity on the conserved CA sequence when it is compared to the other retroviral INs. Therefore it is suggested that PFV IN is less dependent on the conserved sequence of LTR termini for its enzymatic reaction.
Park, Ki-Won;Kim, Tong-Soo;Na, Byoung-Kuk;Song, Chul-Yong
BMB Reports
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v.31
no.3
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pp.303-306
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1998
Serine proteinase cDNA fragment from protozoan parasite Acanthamoeba culbertsoni was amplified by the reverse transcription-polymerase chain reaction (RTPCR) using degenerate oligonucleotide primers derived from conserved serine proteinase sequences. The amplified DNA fragment was subcloned and sequenced. The sequence analysis and alignment showed significant sequence similarity to other eukaryotic serine proteinases and conservation of the His, Asp, and Ser residues that form the catalytic triad. The cDNA fragment was cloned into the pGEMEX-1 expression vector and expressed in Escherichia coli. A resulting fusion protein of 56 kDa had proteolytic activity. The fusion protein reacted with sera of mice immunized with purified serine proteinase of A. culbertsoni in Western blot. Immune recognition of the fusion protein by mouse antisera suggested that the fusion protein may be valuable as a diagnostic reagent.
Hog cholera virus(HCV) was purified from virus infected Bovine kidney cells. From this virus, total protein was analyzed by SDS-PAGE gel electrophoresis and about 55 kDa band of E2 envelope protein was detected. The viral RNA was purified and E2 cDNA was amplified by RT-PCR. E2 cDNA fragment was cloned to PCRII-TOPO cloning vector and named pE2. The analysis of nucleotide sequence showed that this E2 cDNA fragment inserted into pE2 was 1191 nucleotides long and coded 397 amino acids.
Proceedings of the Korean Society of Plant Pathology Conference
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2003.10a
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pp.148.1-148
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2003
Natural virus infection of cultivated Daphe odora plants showing chlorosis and stunting was observed and their causal agent was investigated. An isolate of isometic virus was purified from infected leaf tissues, and it could infect systemic severe mosaic on Chenopodium quinoa and C. amaranticolor. cDNA library was generated from partially purified viral RNAs and oligo dT primer-pSPORTl system, and recombinant clones were selected and their inserts were sequenced randomly. Nucleotide sequences of the virus were analyzed by BLAST, and it was closely related to members of subgroup B in the genus Nepovirus. The sequence analysis suggest that the virus was identified as an isolate of Cycas necrotic stunt virus (CNSV) because it was 89.7 % and 94.7 % identical to known CNSV for the CP and 3' noncoding region, respecitively. RT-PCR was performed to screen disease incidence of CNSV in Daphe plants, and five out of 10 plants (50 %) were infected by CNSV This is the first sequence information of CNSV from Daphe plants.
The coding sequence of hepatitis B viral core antigen (HBcAg) (subtype adr) contains two in-phase initiation codons, one for precore and the other for core antigen gene. To study the expression of core antigen and the role of precore region, the coding sequence of HBcAg with or without precore (pre-C) region were subcloned into yeast expression vector containing phosphoglycerate kinase (PGK) promoter. To study the role of upstream region in the expression of the core antigen, a series of 5' deletion mutants were also subcloned into the vector. After transformation into various host strains, the expression of HBcAg were analysed by radio-immunoassat. Under optimal condition of core antigen gene expression in yeast, the highest amount of antigen was detected in the cell line SHY4 containing pGKHBc plasmid composed of the yeast PGK gene promoter, terminator and C-gene. Regardless of the presence of precore region, core antigen was not detected in the medium but in cell extract. These results suggest that precore region cannot affect the secretion of core antigen in Saccharomyces cerevisiae.
The aim of this study was to investigate viral etiology in dilated cardiomyopathy (DCM) by polymerase chain reaction (PCR) or nested reverse transcription PCR (RT-PCR), and characterize the enteroviral RNA presented in the clinical specimens. Twenty-eight paraffin-embedded heart tissue samples were assayed to detect cytomegalovirus, herpes simplex virus type 1, type 2, parvovirus, adenovirus, and enterovirus (EV) with each specific primer. Of these 28 patients (mean age: 27, M: 24, F: 4), 26 were histologically diagnosed as DCM and 2 as myocardial infarction (MI). Nested RT-PCR detected enteroviral RNA in 7 (26.9%) of 26 patients with DCM, and none of patients with MI. And none of DNA viruses tested were detected from the samples. Amplified products were also genotyped by single-strand conformation polymorphism (SSCP). Three subtypes can be differentiated from 7 clinical specimens. Furthermore, direct sequence analysis was performed to determine whether genetic variation of EV is present in the explanted heart tissues from patients with DCM. Although most of the sequences among the wild isolates have the greatest similarity to those of coxsackievirus B3, there are specific regions of variable sequences (no 490 - no 510). The data suggest that enterovirus may be a major viral pathogen for the DCM in Korea and nucleotide sequence data indicate that coxsackievirus B3 may be a leading etiologic agent of DCM.
The Herpes simplex virus type 1 (HSV-1) strain F glycoprotein H (gH) gene in the pHLB-4 plasmid was recombinated into a baculovirus expression vector (lacZ-HcNPV) to construct a recombinant virus GH-HcNPV expressing gH. The sequences of gH and its expression were analyzed. The gH gene was located in the 6.41 kb BglII fragment. The open reading frame (ORF) of the gH gene was 2,517 bp and codes 838 amino acid residues. Insect cells infected with this recombinant virus synthesized a high level of the matured and gX-gH fusion protein with approximately 112 kDa. The fusion gH protein was localized on the membrane of the insect cells as seen by using immunofluorescence assay and accumulated in the cultured media by the SDS-PAGE and immunoprecipitation assays. The amino acid sequence presents additional characteristics compatible with the structure of a viral glycoprotein: signal peptide, putative glycosylation sites and a long C-terminal transmembrane sequence. Antibodies raised in mice to this recombinant protein recognized viral gH and neutralized the infectivity of HSV-1 in vitro. These results demonstrate that it is possible to produce a mature protein by gene transfer in eukaryotic cells, and indicate the utility of the HcNPV-insect cell system for producing and characterizing eukaryotic proteins. Furthermore, the neutralizing antibodies would appear to protect mice against HSV; accordingly, this particular recombinant protein may be useful in the development of a subunit vaccine.
cDNAs complementary to the 3'-terminal regions of two potyvirus genomes were cloned and sequenced. The clone G7 contains one open reading frame (ORF) of 1,338 nucleotides and a 3' untranslated region (3'-UTR) of 403 nucleotides at the 3'-end excluding the 3'end poly(A) tail. The putative viral coat protein (CP) shows 55%-92% amino acid sequence homology to those of Allium potyviruses. The genome size of the virus was analyzed to be about 9.0 kb by Northern blot analysis. Five cDNA clones were screened out using GPV2 oligonucleotide as a probe. One of these clones, DEA72, which has a longest cDNA insert, contains one ORF of 1,459 nucleotides and a 3'-UTR of 590 nucleotides at the 3'-end excluding the 3'-end poly(A) tail. The putative viral CP shows 57%-88% amino acid sequence homologies to those of Allium potyviruses. The genome size of the virus was analyzed to be about 9.6 kb by Northern blot analysis. The results of immunoblot and Northern blot analyses suggest that almost all of the tested garlic plants showing mosaic or streak symptoms are infected with DEA72-potyvirus in variable degrees but rarely infected with G7-potyvirus in variable degrees but rarely infected with DEA72-potyvirus in variable degrees but rarely infected with G7-potyvirus. Immunoelectron microscopy using anti-DEA72 CP antibody shows that this potyvirus is about 750 nm long and flexuous rod shaped.
Akabane disease is caused by an arthropod-borne viral pathogen and leads to congenital abnormalities of the central nervous system in infected ruminants. One isolate, KV0505, showed cytopathic effect in Vero cells. The KV0505 isolate was obtained from plasma, which was collected from a cattle raised on Jeju Island in May 2005. Jeju Island is located near the southern part of the Korean peninsula. The isolate was confirmed as Akabane virus (AKAV) by immunofluorescence assay using AKAV specific monoclonal antibodies and reverse transcription polymerase chain reaction (RTPCR). Suckling mice inoculated with the isolate showed signs of paralysis and died within 10 days postinoculation. Comparisons of the KV0505 N gene sequence with 39 other known AKAV strains revealed nucleotide homologies ranging from 83.6% (MP496 strain) to 99.7% (M171 strain). When compared with the K-9 strain, which was isolated from a cow in Korea in 1994, the nucleotide sequence homology with the N gene was 99.7%. Thus, genes of the KV0505 isolate were closely related to those of the M171 strain, which were clustered into the Ic group of AKAV.
The Glycoprotein D (gD) gene of the HSV-1 strain F was cloned, sequenced, recombinated into the HcNPV (Hyphantria cunea nuclear polyhedrosis virus) expression vector and expressed in insect cells. The gD gene was located in the 6.43 kb BamHI fragment of the strainF. The open reading frame (ORF) of the gD gene was 1,185 by and codes 394 amino acid residues. Recombinant baculoviruses, GD-HcNPVs, expressing the gD protein were constructed. Spodoptera frugiperda cells, infected with the recombinant virus, synthesized a matured gX-gD fusion protein with an approximate molecular weight of 54 kDa and secreted the gD proteins into the culture media by an immunoprecipitation assay The fusion gD protein was localized on the membrane of the insect cells, seen by using an immunofluorescence assay The deduced amino acid sequence presents additional characteristics compatible with the structure of a viral glycoprotein: signal peptide, putative glycosylation sites and a long C-terminal transmembrane sequence. These results indicate the utility of the HcNPV-insect cell system for producing and characterizing eukaryotic proteins.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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