The calcification of vascular smooth muscle cells (VSMCs) is considered one of the major contributors for vascular disease. Phosphate is known as the inducer for VSMC calcification. In this study, we assessed whether phosphate affected cell viability and fetuin-A, a calcification inhibitor protein, both which are related to VSMC calcification. Also, VSMC viability by zinc level was assessed. The results showed that phosphate increased Ca and P deposition in VSMCs (A7r5 cell line, rat aorta origin). This phosphate-induced Ca and P deposition was consistent with the decreased A7r5 cell viability (P<0.05), which implies phosphate-induced calcification in A7r5 cells might be due to the decreased VSMC cell viability. As phosphate increased, the protein expression of fetuin-A protein was up-regulated. A7r5 cell viability decreased as the addition of cellular zinc level was decreased (P<0.05). The results suggested that zinc deficiency causes the decreased cell viability and it would be the future study to clarify how zinc does act for VSMC cell viability. The results suggest that the decreased VSMC viability by high P or low Zn in VSMCs may be the risk factor for vascular disease.
Zinc is considered to be involved in maintaining healthy vascular condition. Atherosclerotic calcification of vascular smooth muscle cells (VSMCs) occurs via the mechanism of cell death; therefore, cell viability is a critical factor for preventing VSMC calcification. In this study, we tested whether zinc affected VSMC viability under both normal physiological non-calcifying (0 mM P) and atherosclerotic calcifying conditions (3 and 5 mM P), since VSMC physiological characters change during the VSMC calcification process. The study results showed that an optimal zinc level ($15{\mu}M$) restored the decreased VSMC viability which was induced under low zinc levels (0 and $1{\mu}M$) and calcifying conditions (3 and 5 mM P) at 9 and 15 days culture. This zinc-protecting effect for VSMC viability is more prominent under atherosclerotic calcifying condition (3 and 5 mM P) than normal condition (0 mM P). Also, the increased VSMC viability was consistent with the decreased Ca and P accumulation in VSMC cell layers. The results suggested that zinc could be an effective biomineral for preventing VSMC calcification under atherosclerotic calcifying conditions.
Background: Kalkitoxin (KT) is an active lipopeptide isolated from the cyanobacterium Lyngbya majuscula found in the bed of the coral reef. Although KT suppresses cell division and inflammation, KT's mechanism of action in vascular smooth muscle cells (VSMCs) is unidentified. Therefore, our main aim was to investigate the impact of KT on vascular calcification for the treatment of cardiovascular disease. Objectives: Using diverse calcification media, we studied the effect of KT on VSMC calcification and the underlying mechanism of this effect. Methods: VSMC was isolated from the 6 weeks ICR mice. Then VSMCs were treated with different concentrations of KT to check the cell viability. Alizarin red and von Kossa staining were carried out to examine the calcium deposition on VSMC. Thoracic aorta of 6 weeks mice were taken and treated with different concentrations of KT, and H and E staining was performed. Real-time polymerase chain reaction and western blot were performed to examine KT's effect on VSMC mineralization. Calcium deposition on VSMC was examined with a calcium deposition quantification kit. Results: Calcium deposition, Alizarin red, and von Kossa staining revealed that KT reduced inorganic phosphate-induced calcification phenotypes. KT also reduced Ca++-induced calcification by inhibiting genes that regulate osteoblast differentiation, such as runtrelated transcription factor 2 (RUNX-2), SMAD family member 4, osterix, collagen 1α, and osteopontin. Also, KT repressed Ca2+-induced bone morphogenetic protein 2, RUNX-2, collagen 1α, osteoprotegerin, and smooth muscle actin protein expression. Likewise, Alizarin red and von Kossa staining showed that KT markedly decreased the calcification of ex vivo ring formation in the mouse thoracic aorta. Conclusions: This experiment demonstrated that KT decreases vascular calcification and may be developed as a new therapeutic treatment for vascular calcification and arteriosclerosis.
Spontaneous hypertensive rats (SHR) are an established model of genetic hypertension. Vascular smooth muscle cells (VSMC) from SHR proliferate faster than those of control rats (Wistar-Kyoto rats; WKY). We tested the hypothesis that induction of heme oxygenase (HO)-1 induced by aprotinin inhibits VSMC proliferation through cell cycle arrest in hypertensive rats. Aprotinin treatment inhibited VSMC proliferation in SHR more than in normotensive rats. These inhibitory effects were associated with cell cycle arrest in the G1 phase. Tin protoporphyrin IX (SnPPIX) reversed the anti-proliferative effect of aprotinin in VSMC from SHR. The level of cyclin D was higher in VSMC of SHR than those of WKY. Aprotinin treatment downregulated the cell cycle regulator, cyclin D, but upregulated the cyclin-dependent kinase inhibitor, p21, in VSMC of SHR. Aprotinin induced HO-1 in VSMC of SHR, but not in those of control rats. Furthermore, aprotinin-induced HO-1 inhibited VSMC proliferation of SHR. Consistently, VSMC proliferation in SHR was significantly inhibited by transfection with the HO-1 gene. These results indicate that induction of HO-1 by aprotinin inhibits VSMC proliferation through cell cycle arrest in hypertensive rats.
The cellular mechanisms that contribute to the acceleration of atherosclerosis in diabetes are poorly understood. Therefore, the potential mechanisms involved in the diabetes-dependent increase in vascular smooth muscle cell (VSMC) proliferation was investigated. Using primary culture of VSMC from streptozotocin-induced diabetic rat aorta, cell proliferation assay showed two-fold increase in cell number accompanied with enhanced superoxide generation compared to normal VSMC, 2 days after plating. Both the increased superoxide production and cell proliferation in diabetic VSMC were significantly attenuated by not only tiron (1 mM), a superoxide scavenger, but also by diphenyleneiodonium (DPI; $10{\mu}M$), an NAD(P)H oxidase inhibitor. NAD(P)H oxidase activity in diabetic VSMC was significantly higher than that in control cell, accompanied with increased mRNA expression of p22phox, a membrane subunit of oxidase. Furthermore, inhibition of p22phox expression by transfection of antisense p22phox oligonucleotides into diabetic VSMC resulted in a decrease in superoxide production, which was accompanied by a significant inhibition of cell proliferation. Based on these results, it is suggested that diabetes-associated increase in NAD(P)H oxidase activity via enhanced expression of p22phox contributes to augmented VSMC proliferation in diabetic rats.
Connective tissue growth factor (CTGF) is a novel fibrotic mediator, which is considered to mediate fibrosis through extracellular matrix (ECM) synthesis in diabetic cardiovascular complications. Statins have significant immunomodulatory effects and reduce vascular injury. We therefore examined whether fluvastatin has anti-fibrotic effects in vascular smooth muscle cells (VSMCs) and elucidated its putative transduction signals. We show that advanced glycation end products (AGEs) stimulated CTGF mRNA and protein expression in a time-dependent manner. AGE-induced CTGF expression was mediated via ERK1/2, JNK, and Egr-1 pathways, but not p38; consequently, cell proliferation and migration and ECM accumulation were regulated by CTGF signaling pathway. AGE-stimulated VSMC proliferation, migration, and ECM accumulation were blocked by fluvastatin. However, the inhibitory effect of fluvastatin was restored by administration of CTGF recombinant protein. AGE-induced VSMC proliferation was dependent on cell cycle arrest, thereby increasing G1/G0 phase. Fluvastatin repressed cell cycle regulatory genes cyclin D1 and Cdk4 and augmented cyclin-dependent kinase inhibitors p27 and p21 in AGE-induced VSMCs. Taken together, fluvastatin suppressed AGE-induced VSMC proliferation, migration, and ECM accumulation by targeting CTGF signaling mechanism. These findings might be evidence for CTGF as a potential therapeutic target in diabetic vasculature complication.
Lee, Kang Pa;Park, Eun-Seok;Kim, Dae-Eun;Park, In-Sik;Kim, Jin Tack;Hong, Heeok
Nutrition Research and Practice
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v.8
no.5
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pp.521-525
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2014
BACKGROUND/OBJECTIVES: Artemisinin (AT), an active compound in Arternisia annua, is well known as an anti-malaria drug. It is also known to have several effects including anti-oxidant, anti-inflammation, and anti-cancer activities. To date, the effect of AT on vascular disorders has not been studied. In this study, we investigated the effects of AT on the migration and proliferation of vascular smooth muscle cells (VSMC) stimulated by platelet-derived growth factor BB (PDGF-BB). MATERIALS/METHODS: Aortic smooth muscle cells were isolated from Sprague-Dawley rats. PDGF-BB stimulated VSMC migration was measured by the scratch wound healing assay and the Boyden chamber assay. Cell viability was determined by using an EZ-Cytox Cell Viability Assay Kit. The production of reactive oxygen species (ROS) in PDGF-BB stimulated VSMC was measured through $H_2DCF$-DA staining. We also determined the expression levels of signal proteins relevant to ROS, including measures of extracellular signal-regulated kinase (ERK) 1/2 measured by western blot analysis and matrix metalloproteinase (MMP) 9 measured by reverse transcription-polymerase chain reaction (RT-PCR). RESULTS: AT ($10{\mu}M$ and $30{\mu}M$) significantly reduced the proliferation and migration of PDGF-BB stimulated VSMC in a dose-dependent manner. The production of ROS, normally induced by PDGF-BB, is reduced by treatment with AT at both concentrations. PDGF-BB stimulated VSMC treated with AT ($10{\mu}M$ and $30{\mu}M$) have reduced phosphorylation of ERK1/2 and inhibited MMP9 expression compared to untreated PDGF-BB stimulated VSMC. CONCLUSIONS: We suggest, based on these results, that AT may exert an anti-atherosclerotic effect on PDGF-BB stimulated VSMCs by inhibiting their proliferation and migration through down-regulation of ERK1/2 and MMP9 phosphorylation.
The platelet-derived growth factor (PDGF) signaling pathway is essential for inducing a dedifferentiated state of vascular smooth muscle cells (VSMCs). Activation of PDGF inhibits smooth muscle cell (SMC)-specific gene expression and increases the rate of proliferation and migration, leading to dedifferentiation of VSMCs. Recently, microRNAs have been shown to play a critical role in the modulation of the VSMC phenotype in response to extracellular signals. However, little is known about microRNAs regulated by PDGF in VSMCs. Herein, we identify microRNA- 15b (miR-15b) as a mediator of VSMC phenotype regulation upon PDGF signaling. We demonstrate that miR-15b is induced by PDGF in pulmonary artery smooth muscle cells and is critical for PDGF-mediated repression of SMC-specific genes. In addition, we show that miR-15b promotes cell proliferation. These results indicate that PDGF signaling regulates SMC-specific gene expression and cell proliferation by modulating the expression of miR-15b to induce a dedifferentiated state in the VSMCs.
Proceedings of the Korean Society of Applied Pharmacology
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2003.11a
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pp.100-100
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2003
We have reported that oral administration of Saiko-Ka-Ryukotsu-Borei-To (SRB), a traditional Chinese formulation, inhibited the intimal thickening in carotid artery after balloon injury in cholesterol-fed rats. To elucidate its mechanism, the effects of SRB on migration and proliferation of vascular smooth muscle cell (VSMC) were examined in vivo and in vitro. We have reported that oral administration of Saiko-ka-Ryukotsu-Borei-To (SRB), a traditional Chinese formulation, inhibited the intimal thickening in carotid artery after balloon injury in cholesterol-fed rats. To elucidate its mechanism, the effects of SRB on migration and proliferation of vascular smooth muscle cell (VSMC) were examined in vivo and in vitro.
Recent research indicates that lactate promotes the switching of vascular smooth muscle cells (VSMCs) to a synthetic phenotype, which has been implicated in various vascular diseases. This study aimed to investigate the effects of lactate on the VSMC phenotype switch and the underlying mechanism. The CCK-8 method was used to assess cell viability. The microRNAs and mRNAs levels were evaluated using quantitative PCR. Targets of microRNA were predicted using online tools and confirmed using a luciferase reporter assay. We found that lactate promoted the switch of VSMCs to a synthetic phenotype, as evidenced by an increase in VSMC proliferation, mitochondrial activity, migration, and synthesis but a decrease in VSMC apoptosis. Lactate inhibited miR-23b expression in VSMCs, and miR-23b inhibited VSMC's switch to the synthetic phenotype. Lactate modulated the VSMC phenotype through downregulation of miR-23b expression, suggesting that overexpression of miR-23b using a miR-23b mimic attenuated the effects of lactate on VSMC phenotype modulation. Moreover, we discovered that SMAD family member 3 (SMAD3) was the target of miR-23b in regulating VSMC phenotype. Further findings suggested that lactate promotes VSMC switch to synthetic phenotype by targeting SMAD3 and downregulating miR-23b. These findings suggest that correcting the dysregulation of miR-23b/SMAD3 or lactate metabolism is a potential treatment for vascular diseases.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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