Incubation routine and sex role of Streaked Shearwaters Calonectris leucomelas at Sasudo Island, in Jeju, South Korea, were studied during the incubation period, June to August in 2002. Incubation routine in Procellariiformes represents a sequence of alternating shifts taken in turn by female and male in a species-specific pattern. Hence, coordination of individual incubation rhythms between partners is crucial for successful breeding attempt. In Streaked Shearwaters, incubation routine represents a sequence of alternating shifts taken in turn by male and female. The first incubation shift was made by male after female had laid the egg. The mean incubation period was 50.8 days until hatching. Males had spent on average 26.5 days incubating and females 24.3 days accordingly. The mean duration of incubation shifts decreased progressively from 6th and 7th shift to hatching. Overall, males had spent more time incubating than females during the incubation period, but the mean duration of the incubation shift 5.6 days for males and 5.7 days for females did not differ between males and females. There were no effect of the body size of the breeding pair on incubation performance. For males the mean of body weight decreased during the incubation, whereas for females it remained approximately stable. In Streaked Shearwaters, the duration of incubation shift and subsequent foraging trip are related to loss of body weight during the period of fasting. In addition, coordination of individual incubation rhythms affects their incubation behaviour.
Anatomical and histological changes were studied in the dorsal, ventral, third and splenic lobes of the pancreas of the chicken embryos (8 days of incubation, 10 days of incubation to hatching). From 13 days of incubation, all four pancreatic lobes, namely, dorsal, ventral, third and splenic lobes were observed. Histologically, the pancreas of 10-14 days of incubation were consisted of mesenchymal tissue, exocrine acini and pancreatic islets. But mesenchymal tissues were disappeared from 15 days of incubation. The pancreatic ducts were observed from 14 days of incubation. The dark and light typed pancreatic islets were observed in splenic lobe from 13 days of incubation, in the third lobe from 11 days of incubation, and in the dorsal lobe from 13 days of incubation. But no dark typed islets were observed in the ventral lobes.
With histological changes, ontogeny and relative frequencies of bovine Sp-1/chromogranin(bCG)-, serotonin-, gastrin-, cholecystokinin-8(CCK-8)-, somatostatin-, S-100 protein-, polypeptide YY(PYY)- and glucagon-immunoreactive cells were investigated in the duodenum of the chicken embryos from 10 days of incubation to hatching. Histologically, pseudostraitified columnar epithelium were observed from 10 days of incubation to 14 days of incubation, thereafter these epithelium were differentiated to simple columnar epithelium. $Liberk{\ddot{u}}hn$ glands were observed from 18 days of incubation and goblet cells were detected from hatching. In the duodenum, bCG-immunoreactive cells were detected from 14 days of incubation and increased to 18 days of incubation, thereafter decreased with ages. Serotonin-immunorecative cells were detected from 14 days of incubation and increased with ages. Somatostatin-immunoreactive cells were detected from 14 days of incubation and CCK-immunoreactive cells were detected from 19 days of incubation. No gastrin-, S-100 protein-, PYY-, glucagon-immunoreactive cells were detected in this study.
Previous research has indicated that radish powder could be a suitable replacement for chemical nitrite sources in alternatively cured meat products. However, the effects of radish powder level on the physicochemical properties of cured meat have not been systematically studied. In this study, we aimed to investigate the effects of varying concentrations of radish powder and incubation time on the physicochemical properties and cured meat pigments of alternatively cured meat products. We divided our experimental setup into seven groups with different radish powder concentrations and incubation times: control (0.01% sodium nitrite), treatment 1 (0.15% radish powder and 2 h incubation), treatment 2 (0.15% radish powder and 4 h incubation), treatment 3 (0.30% radish powder and 2 h incubation), treatment 4 (0.30% radish powder and 4 h incubation), treatment 5 (0.30% celery powder and 2 h incubation), and treatment 6 (0.30% celery powder and 4 h incubation). The cooking yield, CIE a* values (redness), and total pigment levels were not significantly different (p > 0.05) between any of the alternatively cured treatments and the control. However, when 0.30% radish powder or celery powder was added to the products, the CIE b* values increased significantly (p < 0.05) with incubation time. At the same vegetable concentration, the nitrite content, nitrosyl hemochrome, and curing efficiency also increased significantly (p < 0.05) as the incubation time increased from 2 to 4 h, regardless of the types of vegetable powder. Among the meat products cured with radish powder, treatment 4 showed the highest increase in residual nitrite content, nitrosyl hemochrome content, and curing efficiency, but showed decreased lipid oxidation. Our results suggest that increased concentrations of radish powder and longer incubation times would be more suitable for producing alternatively cured meat products comparable to traditionally cured products treated with synthetic nitrite.
Histological changes, distributions and relative frequencies of bovine Sp-1/chromogranin (bCG)-, serotonin-, gastrin-, cholecystokinin-8(CCK-8)-, somatostatin-, S-100 protein-, polypeptide YY(PYY)- and glucagon-immunoreactive cells were investigated in the gizzard and pylorus of the chicken embryos from 10 days of incubation to hatching. Histologically, the pseudostratified columnar epithelium were observed from 10 days of incubation to 15 days of incubation, thereafter these epithelium were differentiated to simple columnar epithelium, gastric gland and/or mucosal gland. In the gizzard, bCG-immunoreactive cells were observed from 19 days of incubation and S-100 protein-immunoreactive cells were detected from 15 days of incubation to 18 days of incubation. No serotonin-, gastrin-, CCK-8-, somatostatin-, PYY- and glucagon-immunoreactive cells were found in this region. In the pylorus, bCG-, gastrin- and somatostatin-immunoreactive cells were observed from 16 days of incubation respectively, thereafter these cells were increased with ages. CCK-8-immunoreactive cells were detected on hatching and S-100 protein-immunoreactive cells were detected from 16 days of incubation to 18 days of incubation. No serotonin-, PYY- and glucagon-immunoreactive cells were observed in this region.
Our study was conducted to examine differences in incubation behavior among breeding sites and the relationship between factor affecting environmental change and incubation behavior of the Black-faced Spoonbill (Platalea minor). We set up the remote sensor cameras at three breeding sites (Mae-do, Namdongji, Guji-do) to observe incubation behavior in Gyeonggi Bay, South Korea from 2015 to 2018. We analyzed effects of breeding year, day of incubation started, day of incubation, the time of incubation exchanges and sex on incubation bout length. Mean incubation bout length of females (Mae-do: $7.19{\pm}0.23$ hours, Namdongji: $6.08{\pm}0.23$ hours, Guji-do: $7.96{\pm}0.30$ hours) was longer than males (Mae-do: $6.14{\pm}0.21$ hours, Namdongji: $5.45{\pm}0.28$ hours, Guji-do: $7.38{\pm}0.29$ hours). Mean incubation bout length was longer in Guji-do than other study sites. Incubation bout length tended to increase with the clutch initiation date. Males incubated their eggs at day time while female did at night time, these tendencies were observed more clearly in Guji-do. The proportion of time spent incubating of females was higher than males. Males' proportion increased as incubation progressed and increased rate in Guji-do was higher than other study sites. Our results showed that incubation rhythm of the Black-faced Spoonbill differed among breeding sites and varied with the environmental cycle.
Controversy remains over whether the coronavirus disease 2019 (COVID-19) virus may have infectivity during the incubation period before the onset of symptoms. The author had the opportunity to examine the infectivity of COVID-19 during the incubation period by conducting an epidemiological survey on a confirmed patient who had visited Jeju Island during the incubation period. The epidemiological findings support the claim that the COVID-19 virus does not have infectivity during the incubation period.
Chick embryos received a single injection of actinomycin D($0.1{\mu}g,\;0.05{\mu}g\;or\;0.1{\mu}g$) or puromycin($10.0{\mu}g,\;30.0{\mu}g\;or\;50.0{\mu}g$) into the yolk sac of Arbor acres chick embryos either prior to incubation or at certain periods of time (48, 96 and 144 hours) after incubation. After 10days of incubation, surviving embryos were investigated morphologically and biochemically. Embryos treated with actinomycin D or puromycin showed a high mortality when they were exposed prior to incubation and at 48 hours after incubation. Electron micrographs of chondrocytes in tarso-metatarsal of antibiotics (actinomycin D or puromycin) treated embryos showed the destruction of cytoplasm and nuclei when they were exposed prior to incubation. Endoplasmic reticulum was expanded and mitochondria were damaged in chondrocytes of surving embryos treated with low doses at 48 hours, 96 hours or 144 hours after incubation. The activities of enzymes such as lactate dehydrogenase, malate dehydrogenase and succinate dehydrogenase in embryos treated with actinomycin D or puromycin were much less than those of the saline treated group. Also, the amounts of DNA, RNA and protein were greatly decreased.
Ontogeny, distributions and relative frequencies of somatostatin-immunoreactive cells were investigated in the proventriculus of the chicken embryos with incubation periods. Samples were taken from 10 groups(10 days of incubation to hatching) and studied by immunohistochemical methods. The findings were as follows. Somatostatin-immunoreactive cells were observed from 12 days of incubation in the proventricular glands and after that increased with incubation periods. The first observation time of these cells in the epithelium were at 15 days of incubation in the basal portion but in 16 and 17 days of incubation, no immunoreactive cells were observed in the epithelium but after that a few immunoreactive cells were observed in the basal portion and gastric gland regions. The shapes of these cells were spherical to spindle in the proventricular glands and spherical to round in the epithelium and gastric gland.
Sayed Abbas Datli Beigi;Mohammad Ali Khalili;Ali Nabi;Mohammad Hosseini;Abolghasem Abbasi Sarcheshmeh;Mojdeh Sabour
Clinical and Experimental Reproductive Medicine
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제49권4호
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pp.270-276
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2022
Objective: The present study assessed the biological characteristics of human spermatozoa at different time intervals (0, 1, 1.5, and 2 hours) after incubation at 37℃. Methods: Twenty-five normozoospermic semen samples were incubated at 37℃. Incubation was performed at four time intervals of 0 (after liquefaction), 1, 1.5, and 2 hours. The samples were evaluated for sperm parameters at each time interval. Results: The rate of sperm progressive motility decreased at 1.5 hours compared to 0 hours as well as 2 hours compared to 1 hour and 0 hours. The rate of non-motile spermatozoa also decreased after 2 hours compared to after 0 hours. No significant changes were observed in sperm viability (p=0.98) and non- progressive motility (p=0.48) at any time intervals. Abnormal sperm morphology increased at 1.5 hours of incubation time (p<0.001). No significant changes were observed in DNA fragmentation at 1 hour compared to 0 hours (median [interquartile range]: 19.5 [4] vs. 19 [4]), as well as at 1.5 hours compared to 1 hour (20 [5]). However, a significant increase in DNA fragmentation was observed at 1.5 hours compared to 0 hours. The mitochondrial membrane potential decreased remarkably after 1 hour of incubation time. No significant differences were observed in the acrosome reaction or malonaldehyde levels at any time point (p=0.34 and p=0.98, respectively). Conclusion: The incubation of normozoospermic samples before use in assisted reproductive technology should be less than 1.5 hours to minimize the destructive effects of prolonged incubation time on general and specific sperm parameters.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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