6년생 고려인삼근(Panax ginseng C.A. Meyer) 중의 Sucrose synthase, UDP-glucose pyrophosphorylase 및 ADP-glucose pyrophosphorylase의 활성을 생육 시기별로 조사한 결과, Sucrose synthase 와 ADP-glucose pyrophosphorylase는 뿌리저장활성 지표로서 adaptive enzyme의 특성을 나타내는 반면, UDP-glucose pyrophosphorylase는 maintenance enzyme으로서 존재하였다. 평균기온이 24。C 이상일 때 전분합성이 저하되고 중심부의 산소소비량이 급격히 증가되었다.
효율적인 UDP-glucose regeneration system을 구축하기 위해서 재순환 시스템에 관여하는 4가지 효소 (UDP-glucose pyrophosphorylase, UDP-Kinase gene, UDP-galactose 4-epimerase, and $\beta$-1, 4-galactasyltrasnsferase)들을 E. coli AD202에서 발현 시켜 Disaccharide 합성 정도를 보았다. Disaccharide는 0.5 mM IPTG 농도에서 가장 높은 농도를 나타내었다. 대조구와 비교한 결과 LacNAc 농도는 1.34 mM로 10배 정도 정가하였고, lactose 농도는 0.39 mM로 대조구보다 2.6배 증가하였다. 총 disaccharide 농도는 1.73 mM 이며, 대조구 보다 6.5배 높은 생산성을 보였다. 본 논문은 결과는 metabolic flux regeneration으로 disaccharides 합성을 증가시킬 수 있다는 것을 보여주었다.
The bacterium Sphingomonas chungbukensis DJ77 produces the extracellular polysaccharide gellan in high yield. Gellan produced by this bacterium is widely used as a gelling agent, and the enzyme UDP-glucose pyrophosphorylase (UGP) is thought to play a key role in the gellan biosynthetic pathway. The UGP gene has been successfully cloned and over-expressed in E. coli. The expressed enzyme was purified with a molecular weight of approximately 32 kDa, as determined by a SDS-polyacrylamide gel, but the enzyme appears as ca. 63 kDa on a native gel, suggesting that the enzyme is present in a homodimer. Kinetic analysis of UDP-glucose for UGP indicates $K_m$ = 1.14 mM and $V_{max}$ = 10.09 mM/min/mg at pH 8.0, which was determined to be the optimal pH for UGP catalytic activity. Amino acid sequence alignment against other bacteria suggests that the UGP contains two conserved domains: An activator binding site and a glucose-1-phosphate binding site. Site-directed mutagenesis of Lys194, located within the glucose-1-phosphate binding site, indicates that substitution of the charge-reversible residue Asp for Lys194 dramatically impairs the UGP activity, supporting the hypothesis that Lys194 plays a critical role in the catalysis.
우리나라에서 미승인 품목인 유전자변형 감자 EH92-527-1를 검출하기 위한 duplex PCR 검사법이 개발되었다. 감자의 내재유전자로 UDP-glucose pyrophosphorylase (UGP)가 선별되었고, 14개 다른 작물을 이용하여 특이성이 확인되었다. 유전자변형 감자에 삽입된 T-DNA 영역과 감자 게놈 사이의 연결 부위를 증폭하도록 프라이머 EH92-F/R 쌍이 제작되었고, 몇 개의 다른 유전자 변형 작물을 이용하여 특이성이 확인되었다. 서론에서 언급한 바와 같이 BASF사에서 각 개발된 유전자변형 감자 EH92-527-1과 BPS-A1020-5가 GBSS 유전자를 동일하게 포함하고 있으나 본 연구에서 개발한 검사법은 event-specific primers를 이용하였기 때문에 유전자변형 감자 EH92-527-1에만 특이성을 나타낸다. 이와 같이 개발된 duplex PCR 검사법의 검정한계치는 약 0.05%이다. 이러한 duplex PCR 검사법이 우리나라에 미승인 유전자변형 감자의 모니터링에 유용하게 사용될 것으로 판단한다.
한국작물학회 2017년도 9th Asian Crop Science Association conference
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pp.229-229
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2017
This research study was conducted to analyze the characteristics of different rice cultivars in abnormal temperature conditions (low temperature) for ripening period abnormalities, and to investigate the physiological causes behind the abnormalities. Four Korean high quality japonica-type rice cultivars, Jinbu (JB), Junamjosaeng (JJ), Geumyoung (GY), Hwawang (HW) were used in the experiment. The following day after flowering, they were then moved into two phytotrons under natural daylight with 65% RH but controlled at different temperatures - one at $19/29^{\circ}C$ (night/day) and the other at $13/23^{\circ}C$ as the low - temperature study on ripening. For the cultivars at $13/23^{\circ}C$ (low temperature study), JB and JJ had a ripening rate of 93% which is similar to the ripening rates of cultivars at $19/29^{\circ}C$ at 45 days after heading (DAH). In contrast, GY and HW recorded lower ripening rates of 86% and 57% respectively. However, when the cultivars at $13/23^{\circ}C$ were harvested at 61 DAH (when the accumulated temperature reached $1100^{\circ}C$), the difference in ripening rates compared to the 4 cultivars of $19/29^{\circ}C$ harvested at 45 DAH was not obvious (JB 94%, JJ 97%, GY 97%, HW 88%). Starch content showed little difference among the 4 cultivars at different temperature conditions while amylose content was higher for cultivars at $13/23^{\circ}C$ compared to those at $19/29^{\circ}C$. In addition, the enzyme activities of starch biosynthesis were about 5~10 days slower in cultivars at $13/23^{\circ}C$ compared to cultivars at $19/29^{\circ}C$. The grain-filling rate showed highly significant correlations with the enzyme activities of Sucrose synthase ($R^2=0.70^{***}$), ADP glucose pyrophosphorylase ($R^2=0.63^{***}$), UDP glucose pyrophosphorylase ($R^2=0.36^{***}$), Starch synthase ($R^2=0.51^{***}$), and Starch branching enzyme ($R^2=0.59^{***}$). Among the enzymes, Sucrose synthase activity had the highest correlation coefficient with grain-filling rate. In conclusion, the activity of enzymes such as Sucrose synthase, UDP glucose pyrophosphorylase, ADP glucose pyrophosphorylase, Starch synthase, Starch branching enzyme in starch biosynthesis is proven to be highly related to the grain filling process. Notably, the decrease in the activity of Sucrose synthase and Starch branching enzyme and the late increase in ADP glucose pyrophosphorylase activity at low temperature in the ripening stage are considered to be disadvantageous as they delay ripening and increased amylose content.
Glucosylation is a well-known approach to improve the solubility, pharmacological, and biological properties of flavonoids, making flavonoid glucosides a target for large-scale biosynthesis. However, the low yield of products coupled with the requirement of expensive UDP-sugars limits the application of enzymatic systems for large-scale. C. glutamicum is a Gram-positive and generally regarded as safe (GRAS) bacteria frequently employed for the large-scale production of amino acids and biofuels. Due to the versatility of its cell factory system and its non-endotoxin producing properties, it has become an attractive system for the industrial-scale biosynthesis of alternate products. Here, we explored the cell factory of C. glutamicum for efficient glucosylation of flavonoids using apigenin as a model flavonoid, with the heterologous expression of a promiscuous glycosyltransferase, YdhE from Bacillus licheniformis and the endogenous overexpression of C. glutamicum genes galU1 encoding UDP-glucose pyrophosphorylase and pgm encoding phosphoglucomutase involved in the synthesis of UDP-glucose to create a C. glutamicum cell factory system capable of efficiently glucosylation apigenin with a high yield of glucosides production. Consequently, the production of various apigenin glucosides was controlled under different temperatures yielding almost 4.2 mM of APG1(apigenin-4'-O-β-glucoside) at 25℃, and 0.6 mM of APG2 (apigenin-7-O-β-glucoside), 1.7 mM of APG3 (apigenin-4',7-O-β-diglucoside) and 2.1 mM of APG4 (apigenin- 4',5-O-β-diglucoside) after 40 h of incubation with the supplementation of 5 mM of apigenin and 37℃. The cost-effective developed system could be used to modify a wide range of plant secondary metabolites with increased pharmacokinetic activities on a large scale without the use of expensive UDP-sugars.
The mature cyst of Acanthamoeba is highly resistant to various antibiotics and therapeutic agents. Cyst wall of Acanthamoeba are composed of cellulose, acid-resistant proteins, lipids, and unidentified materials. Because cellulose is one of the primary components of the inner cyst wall, cellulose synthesis is essential to the process of cyst formation in Acanthamoeba. In this study, we hypothesized the key and short-step process in synthesis of cellulose from glycogen in encysting Acanthamoeba castellanii, and confirmed it by comparing the expression pattern of enzymes involving glycogenolysis and cellulose synthesis. The genes of 3 enzymes, glycogen phosphorylase, UDP-glucose pyrophosphorylase, and cellulose synthase, which are involved in the cellulose synthesis, were expressed high at the 1st and 2nd day of encystation. However, the phosphoglucomutase that facilitates the interconversion of glucose 1-phosphate and glucose 6-phosphate expressed low during encystation. This report identified the short-cut pathway of cellulose synthesis required for construction of the cyst wall during the encystation process in Acanthamoeba. This study provides important information to understand cyst wall formation in encysting Acanthamoeba.
Chalcones exhibit multiple biological activities. Various studies have attempted to modify the structure of chalcones with a special focus on the addition of substituents to the benzene rings. However, these chemical modifications did not improve the water solubility and bioavailability of chalcones. Glycosylation can markedly affect the physical and chemical properties of hydrophobic compounds. Here, we evaluated the ability of a highly promiscuous glycosyltransferase (GT) BsGT1 from Bacillus subtilis ATCC 6633 to biosynthesize chalcone glucosides. Purified BsGT1 catalyzed the conversion of 4'-hydroxychalcone (compound 1), 4'-hydroxy-4-methylchalcone (compound 2), and 4-hydroxy-4'-methoxychalcone (compound 3), into chalcone 4'-O-β-D-glucoside (compound 1a), 4-methylchalcone 4'-O-β-D-glucoside (compound 2a), and 4'-methoxychalcone 4-O-β-D-glucoside (compound 3a), respectively. To avoid the addition of expensive uridine diphosphate glucose (UDP-Glc), a whole-cell biotransformation system was employed to provide a natural intracellular environment for in situ co-factor regeneration. The yields of compounds 1a, 2a, and 3a were as high as 90.38%, 100% and 74.79%, respectively. The successful co-expression of BsGT1 with phosphoglucomutase (PGM) and UDP-Glc pyrophosphorylase (GalU), which are involved in the biosynthetic pathway of UDP-Glc, further improved the conversion rates of chalcones (the yields of compounds 1a and 3a increased by approximately 10%). In conclusion, we demonstrated an effective whole-cell biocatalytic system for the enzymatic biosynthesis of chalcone β-D-glucoside derivatives.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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