Kim, Won-Tae;Bae, Sung-Woo;Kim, A-Young;Park, Kwan-Ho;Lee, Sang-Beom;Choi, Young-Cheol;Han, Sang-Mi;Park, Young-Han;Koh, Young-Ho
BMB Reports
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v.44
no.6
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pp.387-392
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2011
To investigate the molecular scavenging capabilities of the larvae of Hermetia illucens, two serine proteases (SPs) were cloned and characterized. Multiple sequence alignments and phylogenetic tree analysis of the deduced amino acid sequences of Hi-SP1 and Hi-SP2 were suggested that Hi-SP1 may be a chymotrypsin- and Hi-SP2 may be a trypsin-like protease. Hi-SP1 and Hi-SP2 3-D homology models revealed that a catalytic triad, three disulfide bonds, and a substrate-binding pocket were highly conserved, as would be expected of a SP. E. coli expressed Hi-SP1 and Hi-SP2 showed chymotrypsin or trypsin activities, respectively. Hi-SP2 mRNAs were consistently expressed during larval development. In contrast, the expression of Hi-SP1 mRNA fluctuated between feeding and molting stages and disappeared at the pupal stages. These expression pattern differences suggest that Hi-SP1 may be a larval specific chymotrypsin-like protease involved with food digestion, while Hi-SP2 may be a trypsin-like protease with diverse functions at different stages.
Treatment of regenerating amphibian limbs with retinoic acid (RA) is known to induce paftern duplication, which is closely related to the extent of dedifferentiation. In the present study, the activities of trypsin- and chymotrypsin-like proteases are examined to delineate a possible role in the process of dedifferentiation in the regenerating limbs of urodeles, the Korean salamander (Hynobius leechii) and the Mexican axolod (Ambystoma mexicanum). Specifically, we were interested to know if there is any correlation between trypsin- and chymotrypsin-like protease activities and the state of dedifferentiation which is augmented by RA treatment. We were also interested in expoloring if there is any species-specific difference in the profile of enzyme activities during limb regeneration. The results showed that the activities of these two enzymes reached a peak level at dedifferentiation stage, and RA treatment caused elevation of their activities, especially in the case of trypsin-like protease. The increase of trypsin-like protease activity after RA treatment was pronounced in the Korean salamander, which might reflect a species-specific responsiveness to RA. The present results imply that trypsin and chymotrypsin or similar proteases may play an active role in the process of dedifferentiation in regenerating limbs, and that trypsin or trypsin-like eryrymes might be involved in the RA-evoked enhancement of dedifferentiation which precedes overt pattern duplication.
Background: Protease-activated receptor 2 (PAR2) belongs to a family of G protein coupled receptors activated by proteolytic cleavage. Trypsin-like serine proteases interact with PAR2 expressed by a variety of tissues and immune cells. The aim of our study was to investigate whether PAR2 stimulation can lead to the activation of human mac rophages. Methods: PAR2-mediated proliferation of human macrophage cell line THP-1 was measured with MTT assay. We also examined the extracellular regulated kinase (ERK) phosphorylation and cytokine production induced by trypsin and PAR2-agonist using western blot and enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA), respectively. Results: Treatment of trypsin or PAR2-activating peptide increased cell proliferation in a dose-dependent manner, and induced the activation of ERK1/2 in THP-1 cells. In addition, trypsin-induced cell proliferation was inhibited by pretreatment of an ERK inhibitor (pD98059) or trypsin inhibitor (SBTI). Moreover, PAR2 activation by trypsin increased the secretion of TNF-${\alpha}$ in THP-1 cells. Conclusion: There results suggest that P AR2 activation by trypsin-like serine proteases can induce cell proliferation through the activation of ERK in human macrophage and that PAR2 may playa crucial role in the cell proliferation and cytokine secretion induced by trypsin-like serine proteases.
MAPI (microbial alkaline protease inhibitor) was isolated from cultrue broth of Streptomyces chromofuscus SMF28. The Ki values of MAPI for the representative serine proteases such as chymotrypsin and proteinase K were 0.28 and $0.63{\;}\mu\textrm{M}$, respectively, and for the cysteine proteases cathepsin B and papain were 0.66 and $0.28{\;}\mu\textrm{M}$, respectively. These data indicate that MAPI is not a potent selective inhibitor of serine or cysteine proteases. Progress curves for the inhibition of three proteases by MAPI exhibithe characteristic patterns; MAPI exhibited slow-binding inhibition of cathepsin B. It was rapidly associated with chymotrypsin before the addition of substrate and then reactivation of MAPI-inhibited enzyme was investigated in the presence of substrate. On the other hand, MAPI-proteinase K interaction was typical for those classical inhibitors. When MAPI was incubated with trypsin, there was an extensive reduction in the ingibitory activities of MAPI corresponding to 66.5% inactivation of MAPI, indicating that trypsin-like protease may play a role in the decrease of the inhibitory activity during cultivation.
The relationship between morphological differentiation and production of trypsin-like protease (TLP_ in streptomycetes was studied. All the Streptomyces spp.In this study produced TLP just before the onset of aerial mycelium formation. Addition of TLP inhibitor, TLCK, to the top surface of colonies inhibited aerial mycelium formation as well as TLP inhibitor, TLCK, to the top surface of colonies inhibited aerial mycelium formation as well as TLP activity. Addition of 2% glucose to the Bennett agar medium repressed both the aerial mycelium formation and TLP production in S. abuvaviensis, S. coelicolor A3(2), S exfoliatus, S. microflavus, S. roseus, s. lavendulae, and S. rochei. However the addition of glucose did not affect S. limosus, S. felleus, S. griseus, S. phaechromogenes, and S. rimosus. The glucose repression on aerial mycelium formation and production of TLP was relieved by the addition of glucose anti-metabolite (methyl .alpha.-glucopyranoside). Therefore, it was concluded that TLP production is coordinately regulated with morphological differentiation and TLP activity is essential for morphological differentiation in streptomycetes. The proposed role of TLP is that TLP participates in the degradation of substrate mycelium protein for providing nutrient for aerial mycelial growth.
Nutritional factors regulating the morphological differentiation and physiological differentiation of Streptomyces exfoliatus SMF13 on surface cultures were evaluated. S. exfoliatus SMF13 produced leupeptin and chymotrypsin-like protease (CTP) at the stage of substrate mycelium growth, and leupeptin-inactivating enzyme (LIE) and trypsin-like protease (TLP) at the stage of aerial mycelium growth. The activity of leupeptin and CTP was high in the region of active growing substrate mycelium, whereas the activity of LIE and TLP was high in the region of aerial mycelium or spores. The differentiations were induced in glucose-limited conditions or by the addition of glucose anti-metabolite (methyl $\alpha$-glucopyranoside), but repressed by high concentrations of glucose or casamino acids. Morphological differentiation (formation of aerial mycelia and spores) was closely related with physiological differentiation (formation of brown-pigment, LIE and TLP). The local distribution of leupeptin, CTP, LIE, and TLP in a developing colony showed that colony development correlated with the production and functions of the compounds: CTP is essential for providing a nitrogen source for mycelium growth: leupeptin regulates TLP activity: LIE inactivates leupeptin: TLP hydrolyzes nongrowing mycelium.
Porcine colostrum and milk were separated into the acid-soluble and casein fractions by acidification followed by centrifuge. The acid-soluble fraction of porcine colostrum was further separated by liquid chromatography and anisotropic membrane filtration. Trypsin and chymotrypsin inhibitory capacity in porcine colostrum, milk and their components was determined by incubating bovine trypsin or chymotrypsin in a medium containing their corresponding substrates with or without addition of various amounts of porcine colostrum, porcine milk or their components. The inhibition of insulin-like growth factor I (IGF-I) and epidermal growth factor (EGF) degradation in pig small intestinal contents by porcine colostrum was measured by incubating iodinated IGF-I or EGF with the intestinal contents with or without addition of porcine colostrum. Degradation of labeled IGF-I or EGF was determined by monitoring the generation of radioactivity soluble in 30% trichloroacetic acid (TCA). The results showed that porcine colostrum had high levels of trypsin and chymotrypsin inhibitory activity and increased the stability of IGF-I and EGF in pig intestinal contents. The inhibitory activity declined rapidly during lactation. It was also found that trypsin and chymotrypsin inhibitory activity and the inhibition on IGF-I and EGF degradation in the acid-soluble fraction were higher than that in the casein fraction. Heat-resistance study indicated that trypsin inhibitors in porcine colostrum survived heat treatments of $100^{\circ}C$ water bath for up to 10 min, but exposure to boiling water bath for 30 min significantly decreased the inhibitory activity. Compared with the trypsin inhibitors, the chymotrypsin inhibitors were more heatsensitive. Separation of the acid-soluble fraction of porcine colostrum by liquid chromatography and anisotropic membrane filtration revealed that the trypsin and chymotrypsin inhibitory capacity was mainly due to a group of small proteins with molecular weight of 10,000-50,000. In conclusion, the present study confirmed the existence of high levels of protease inhibitors in porcine colostrum, and the inhibition of porcine colostrum on degradation of milk-borne growth factors in the pig small intestinal tract was demonstrated for the first time.
Trypsin-like enzyme was purified from shrimp hepatopancreas through Q-Sepharose ionic exchange, benzamidine Sepharose-6B affinity, and Superdex 75 gel chromatography. Purity of trypsin-like enzyme was increased 69-fold with $44\%$ yield. The enzyme consisted of a single polypeptide chain with a molecular weight (M.W.) of 32 kDa judged by sodium dodecylsulfate polyacrylamide gel electrophoresis (SDS-PAGE). The enzyme was completely inactivated by serine enzyme inhibitors such as soybean trypsin inhibitor (SBTI), tosyl-Llysine chloromethyl ketone (TLCK), and leupeptin. However, the enzyme was not affected by tosyl-L-phenylalanine chloromethyl ketone (TPCK) which is a chymotrypsin specific inhibitor. The enzyme had no activity against benzoyl-tyrosine ethyl ester (BTEE) which is a chymotrypsin specific substrate. The enzyme showed high activity on the carboxyl terminal of Phe, Tyr. Glu, Arg, and Asp. However. no activity was detected against the carboxyl terminal of Pro, Trp, Cys, Gly, Val, and Ala.
An anticoagulant/fibrinolytic protease was purified to homogeneity from the earthworm Lumbricus rubellus. The protein was a single chain glycoprotein of 32 kDa that exhibited strong proteolytic activity on human thrombin and fibrin clots. Proteolytic degradation of these plasma proteins by the purified enzyme occurred at a neutral pH range. Among several human plasma proteins tested as possible substrates for the protease reaction, the 32 kDa enzyme specifically hydrolyzed both thrombin and fibrin polymers without affecting other proteins, such as serum albumin, immunoglobulin, and hemoglobin. Treatment of the purified enzyme at neutral pH with either phenylmethylsulfonylfluoride or soybean trypsin inhibitor resulted in a loss of catalytic activity. The enzyme hydrolyzed the chromogenic substrate H-D-Phe-L-Pipecolyl-L-Arg-p-nitroanilide with a $K_m$ value of 1.1 ${\mu}M$ at a neutral pH. These results suggest that the anticoagulant/fibrinolytic enzyme from Lumbricus rubellus is a member of the serine protease family having a trypsin-like active site, and one of the potential clevage sites for the enzyme is the carbonyl side of arginine residues in polypeptide chains.
The fibrinolytic activities of soluble proteins extracted from young leaves of Camellia japonica L. were studied. Fibrinolvity activity of extract from partitions of C. japonica L. showed 1.6-2.0 times higher than plasmin used as positive control. The fibrinolytic enzyme was confirmed directly from young leaves of C. japonica L. by a fibrin Plate and fibrin zymography. The protein was composed of a single polypeptide and its apparent molecular weight was found to be 45 kDa, as judged by SDS-polyacrylamide gel electrophoresis. The optimum pH and temperature for the fibrinolytic activity were pH 5.5 and $30^{\circ}C$, respectively. Also, the fibrinolytic activity was clearly inhibited by PMSF and TLCK, suggesting that it is a member of the trypsin-like serine protease. All these results suggest the protease is a fibrinolytic enzyme belong to a family of trypsin-like serine protease.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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