The ion aggregates formed between cationic triphenylmethane dyes and tetraphenylborate(TPB) or tetrakis(4-fluorophenyl) borate (TFB) anions have been investigated spectroscopically. The photometric sensitivities of the dyes are found to be increasing in the order pararosaniline < malachite green < methyl violet 2B < crystal violet < ethyl violet. Cetyltrimethylammonium bromide(CTAB) and Triton X-100(TX-100) destroy the ion aggregates. By comparing the concentration of surfactant beyond which dye-borate mixed solutions behave identically with the dye blank, the order of hydrophobicity appears to be parallel with that of photometric sensitivity.
Triphenylmethane was decolorized rapidly by enterbacter cloacae MG 82 at initial reaction time. The spheroplast showed higher activity of triphenylmentane decolorization than that of intact cell suspension. The outer part of the bacterial cell envelope and the peptidoglycan are important for the function of transport barrier of triphenylmethane. In intact cell, decolorization activity was higher at 37$\circ $C than at $\circ $C, indicating that triphenylmethane decolorization is due to the enzyme reaction. Culture filtrate showed no decolorization activity, while cell-free extract appeared high activity of 1.45 units, clearly showing that decolorization activity was due to the cell-free extract. Comparing decolorization activities of cell fractions, it was found that decolorization activity was located at the compartment of cytoplasmic membrane. The enzyme activity was also shown to be Mg$^{++}$-dependent. The optimum pH and temperature of enzyme activity were 7.0 and 50$\circ $C, respectively. The thermostability of this enzyme at 35$\circ $C was kept to 58% for 3 hours.
A Klebsiella pneumoniae WL-5 with the capability of decolorizing several recalcitrant dyes was isolated from activated sludge of an effluent treatment plant of a textile and dyeing industry. This strain showed a higher dye decolorization under static condition and color removal was optimal at pH 6-8 and $30-35^{\circ}C$. More than 90% of its color of Congo Red were reduced within 12 hr at $200\;{\mu}M$ dye concentration. Malachite Green, Brilliant Green and Reactive Black-5 lost over 85% of their colors at $10\;{\mu}M$ dye concentration, but the percentage decolorization of Reactive Red-120, Reactive Orange-16, and Crystal Violet were about 46%, 25%, and 13%, respectively. Decolorizations of Congo Red and triphenylmethane dyes, such as Malachite Green, Brilliant Green, and Crystal Violet were mainly due to adsorption to cells, whereas azo dyes, such as Reactive Black-5, Reactive Red-120, and Reactive Orange-16 seemed to be removed by biodegradation through unknown enzymatic processes.
The reaction between cyanide ion and triphenyl methane dyes is subject to marked catalysis by cationic micelles of cetyltrimethyl ammonium bromide(CTABr) and retarded by anionic micelles of sodium lauryl sulfate(NaLS). Added salts, anions inhibit the catalysis by CTABr, and cations, especially $Zn^{++},\;Cd^{++}$ decrease the retardation of the reaction rates in the presence of NaLS. The kinetic effects of the ionic micelles are much larger in water than in ethanol-water, methanol-water, propanol-water and acetone-water, but strange solvent effects, acceleration the reaction rates, was found in the reaction with malachite green in water-methanol system.
With an aim to evaluate dye decolorization by white rot fungus on natural living conditions, reproducing by solid-state fermentation, the process of triphenylmethane dyes decolorization using the white rot fungus P. ostreatus BP, cultivated on rice straw solid-state medium, has been demonstrated. Three typical dyes, including malachite green, bromophenol blue, and crystal violet, were almost completely decolorized by the fungus after 9 days of incubation. During the process of dye decolorization, the activities of enzyme secreted by the fungus, and the contents of soluble components, such as phenolic compounds, protein, and sugar, changed regularly. The fungus could produce ligninolytic, cellulolytic, and hemicellulolytic enzymes and laccase was the most dominant enzyme in solid-state medium. Laccase, laccase isoenzyme, and the laccase mediator could explain the decolorization of malachite green, bromophenol blue, and crystal violet by the fungus in solid-state medium, respectively. It is worth noting that the presence of the water-soluble phenolic compounds could stimulate the growth of fungus, enhance the production of laccase, and accelerate dye decolorization.
The Optimal condition for degradation of crystal violet and other triphenylmethane dyes by Citrobacter sp. SK-3 isolated from the activated sludge of dye manufacturing factory was investigated. The optimal culture medium for the degradation of triphenylmethane dye was composed of minimum inorganic salt medium supplemented with 0.5% galactose, 0.1% beef extract, with the initial pH of 8.0 to 9.0. Under this condition, Citrobacter sp. SK-3 degraded 200 ppm of crystal violet completely within 24 hours. Citrobactre sp. SK-3 also degraded efficiently malachite green, pararosaniline, brilliant green, methyl violet, basic fuchsin and methyl red. Analysis of the degradation products of crystal violet through this layer chromatography and high performance liquid chromatography indicated that the methyl groups bound to crystal violet backborn were gradually demethylated to pentamethyl-, tetramethyl- and trimethylpararosaniline.
Decolorizing characteristics of crystal violet by Enterobacter cloace MG82, which can decolorize rapidly triphenylmethane dyes, were investigated. The higher growth and decolorization activity was shown at big ratio of dissolved oxygen in the medium. The decolorization activity of crystal violet revealed highest at the middle of lag phase. As the concentration of crystal violet was higher, the growth of E. cloacae MG82 and decolorizing activity of crystal violet by this strain were worse. The maximum concentration of crystal violet at which E. cloacae MG82 be able to grow was 375 ${\mu}$M. E. cloacae MG82 was not able to use the crystal violet itself as a sole carbon source. So, it was shown that growth of E. cloacae MG82 and decolorization activity of crystal violet by this strain needed addition of another energy sources except this dye.
Kim, Jeong-Dong;Yoon, Jung-Hoon;Park, Yong-Ha;Fusako Kawai;Kim, Hyun-Tae;Lee, Dae-Weon;Kang, Kook-Hee
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.12
no.3
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pp.437-443
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2002
A number of soil and wastewater samples were collected from the vicinity of an effluent treatment plant for the chemical industry. Several microorganisms were screened fur their ability to decolorize the triphenylmethane group of dyes. As a result, a novel crystal violet dye-degrading strain LK-24 was isolated. Taxonomic identification including 16S rDNA sequencing and phylogenetic analysis indicated that the isolate had a $99.5\%$ homology in its 16S rDNA base sequence with Stenotrophomonas maltophilia. The triphenylmethane dye, crystal violet, was degraded extensively by growing cells of Stenotrophomonas maltophilia LK-24 in agitated liquid cultures, although their growth was strongly inhibited in the initial stage of incubation. This group of dyes is toxic, depending on the concentration used. The dye was significantly degraded at a relatively lower concentration, below $100{\mu}g\;ml^-1$, yet the growth of the cells was totally suppressed at a dye concentration of $250{\mu}g\;ml^-1$. The degradation products of crystal violet were identified as 4,4'-bis(dimethylamino)-benzophenone and ${\rho}$-dimethylaminophenol by Gas chromatography-Mass spectrometry. The 4,4'-bis(dimethylamino)-benzophenone was easily obtained in a reasonable yield, as it was not metabolized further by S. maltophilia LK-24; however, the ${\rho}$-dimethylaminophenol was not easily identifiable, as it was further metabolized.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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