Pluripotent stem cells could self-renew and differentiate into various cells. In particular, porcine pluripotent stem cells are useful for preclinical therapy, transgenic animals, and agricultural usage. These stem cells have naïve and primed pluripotent states. Naïve pluripotent stem cells represented by mouse embryonic stem cells form chimeras after blastocyst injection. Primed pluripotent stem cells represented by mouse epiblast stem cells and human embryonic stem cells. They could not produce chimeras after blastocyst injection. Populations of embryonic stem cells are not homogenous; therefore, reporter systems are used to clarify the status of stem cells and to isolate the cells. For this reason, studies of the OCT4 reporter system have been conducted for decades. This review will discuss the naïve and primed pluripotent states and recent progress in the development of porcine OCT4 reporter systems.
The pig has been considered to serve as an appropriate model of human disease. Therefore, establishment of porcine embryonic stem cell lines is important. The purpose of the present study was to further work in this direction. We produced porcine parthenogenetic embryos, and separately aggregated two of each of two-cell ($2{\times}2$), four-cell ($2{\times}4$), and eight-cell ($2{\times}8$) embryos derived by parthenogenesis. After culture for 4 days, the developmental ability of the aggregates and total blastocyst cell numbers were evaluated. The percentage of blastocysts was significantly higher in both $2{\times}4$- and $2{\times}8$-aggregated embryos ($58.3{\pm}1.9%$ and $37.2{\pm}2.8%$, respectively) than in the control or $2{\times}2$-aggregated embryos ($23.6{\pm}1.1%$ and $12.5{\pm}2.4%$, respectively). Total blastocyst cell numbers were increased in the $2{\times}4$- and $2{\times}8$-aggregated embryos (by $44{\pm}3.0%$ and $45{\pm}3.3%$, respectively) compared with those of control or $2{\times}2$-aggregated embryos ($30.5{\pm}2.1%$ and $30.7{\pm}2.6%$, respectively; p<0.05). The levels of mRNA encoding Oct-4 were higher in both the $2{\times}4$- and $2{\times}8$-aggregated embryos than in the control. When blastocysts derived from $2{\times}4$- aggregated embryos or intact normal embryos were cultured on mouse embryonic fibroblast feeder cells to obtain porcine stem cells, blastocysts from aggregated embryos formed colonies that were better in shape compared with those derived from intact blastocysts. Together, the data show that aggregation of porcine embryos not only improves blastocyst quality but also serves as an efficient procedure by which porcine embryonic stem cells can become established.
Transgenic animals production tools have been valuable for research and purpose. The current methods of gene transfer, microinjection and nuclear transfer, which are widely used in transgenic animal production, but all most methods has only had limited success in production of larger species. Here, we report the possibility of a sperm-mediated gene transfer method in porcine embryos. Oocytes were collected from ovaries harvested at a local slaughterhouse were matured in 500${mu}ell$ drops of TCM-199 under mineral oil at 38.5$^{\circ}C$ in a humidified atmosphere of 5%CO2 in air. After 42-43h of in vitro maturation oocytes were denuded. for sperm injection into the cytoplasm of the porcine oocytes, sperm suspension in NIM medium are subjected extraction with TritonX-100 before mixing with a green fluorescent gene (GFP). Sperm with Tritonx-100 were prepared by adding TritonX-100 to a final volume of 0.05% in the sperm suspension and mixing by trituration for 60s before two wishes in NIM medium at 2$^{\circ}C$. A(ter wishing, sperm were mixed with TritonX-100 at $25^{\circ}C$ followed by washes at 2$^{\circ}C$. Sperm were resuspended in ice cold NIM to a final volume of 400${mu}ell$ and 2-20ng/${mu}ell$ DNA were triturated on ice for 60s. All microinjection was performed in HEPES-buffered CZB medium at room temperature within 2h. After culture in NCSU-23 for 72h, percent of porcine embryos transfected GFP gene are 20.7%(6/29) in 20ng/${mu}ell$ sperm-DNA mixed group and other groups were 3.7 %(2/54)and 4.7%(3/67). These data suggests that sperm-mediated gene transfer method should be used to the production tool of transgenic pig efficiently.
This study was carried out to compare the semen characteristics, frozen-thawed sperm viability and testosterone concentration and in vitro fertilization (IVF) and development of in vitro matured pig oocytes between two Yorkshire boars. Semen and blood samples were collected once per week from October to November 2002 from two adult Yorkshire boars at 18 months of age with 170 kg body weight. Sperm were deep frozen in 5 ml maxi-straws with lactose-egg yolk and N-acetyl-D-glucosamine (LEN) diluent and stored in liquid nitrogen. Blood samples were obtained at 10 a.m. by inserting a 21 gauge, hypodermic needle attached to 10 ml syringe into surface veins in the ear. The concentration of testosterone was determined by Competitive Enzyme Immunoassay. Ovaries were collected from prepubertal gilts at a local slaughter house. Cumulus oocyte complexes were aspirated from antral follicles (3 to 6 mm in diameter). The medium used for oocyte maturation was modified TCM 199. After about 22 h of culture, oocytes were cultured without cysteamine and hormones for 22 h at $38.5^{\circ}C$, 5% $CO_2$ in air. For IVF, one frozen 5 ml straw was thawed at $52^{\circ}C$in 40 sec and was diluted with 20 ml Beltsville thawing solution at room temperature. Sperm were washed 2 times in mTLP-PVA and inseminated without preincubation after thawing. Oocytes were inseminated with $2{\times}10^7$/ml sperm concentration. Oocytes were coincubated for 6 h in 500 ${\mu}$l mTBM fertilization medium. At 6 h after IVF, oocytes were transferred into 500 ${\mu}$l NCSU-23 culture medium for further culture of 48 and 144 h. There were no significant differences in the semen volume, motility, normal acrosome morphology and sperm concentration of raw semen between A and B of Yorkshire boar. However, motility and normal acrosome of boar A were higher than those of boar B at 0.5, 2, 3, 4, 5 and 6 h incubations of frozen-thawed sperm. Testosterone concentration (3.75 ng/ml) of boar A was higher than that (2.34 ng/ml) of boar B. The rate of blastocyst formation (15.1%) of boar A was higher than that (10.4%) of boar B. In conclusion, serum testosterone concentration of boar showed very important role for the frozen-thawed sperm viability and the blastocyst formation of pig oocytes matured in vitro.
돼지 웅성 페르몬인 5a-androst-16-en-3-one을 대체할 수 있는 활성 분자를 탐색하여 가축의 생산과 수요를 조절하기 위한 생물학적 자극 통제 수단으로 활용하고자 냄새 분자로서 2-cyclohexyloxytetrahydrofurane (A) 및 2-phenoxytetrahydrofurane (B) 유도체들의 구조 변화와 수용체인 porcine odorant binding protein (pOBP)에 대한 결합친화력 상수(p[Od.]/sub 50/) 사이의 정량적인 구조-활성관계에 관한 분자 HQSAR 모델XI을 유도하였다. 냄새 분자 중에서 cyclohexyl-치환체(A)가 phenyl-치환체(B)보다 높은 결합 친화력을 나타내었으며(A>B) 모델XI은 분자 조각크기(5∼8), 홀로그램 길이(97 bin)의 키랄성(chirality)조건에서 예측성(q²=0.916)과 상관성(r²=0.988)이 매우 양호하였다. 기여도(contribution map)로부터 냄새 분자의 결합 친화력 상수에 기여하는 부분은 2-oxyfuryl group의 C3 및 C5 원자인 반면에 cyclohexyl 고리상 tert-butyl group의 중심 탄소 원자와 furyl group의 C4 원자 부분은 기여하지 않았다.
본 연구의 목적은 돼지의 신장 자가이식에서 항산화제에 의한 허혈 및 재관류 손상의 감소에 대하여 ascorbic acid와 alpha-tocopherol이 미치는 영향을 평가하는 데 있다. 6두의 어린 돼지에 자가 신장 이식을 실시하였으며, 처치군에서는 수술 2일전 비타민 C와 E를 이틀 동안 전처치 하고, 그 뒤에 수술 중 비타민 C와 heparin이 첨가된 생리식염수를 절제되어 자가 이식할 신장에 관주하였다. 대조군에서는 수술 중 heparin이 첨가된 생리 식염수만을 절제되어 자가 이식할 신장에 관주하였다. 신장 기능을 평가하기 위하여 혈액 샘플을 채취하였으며, 수술 전, 수술 후 1, 3, 7, 14일에 혈청 creatinine과 BUN을 측정하였다. 그리고 병리조직 검사를 위해 14일 후 신장을 적출 보관하였다. 신장의 기능 검사에서 대조군과 처치군 사이에서 전체적인 유의성은 없었지만, 1일째, 3일째 또는 5일째에 두 그룹간의 유의적인 차이가 인정되었다 (p<0.05). 병리조직 검사 결과 처치군이 대조군 보다 더 적은 조직 손상의 정도를 보였다. 이러한 결과는, 비타민 C와 heparin을 이용한 신장의 관주 및 흡인의 과정이 신장의 허혈 및 재관류 손상을 감소시키는 데에 효과가 있었음을 시사하며, 이는 돼지의 신장 자가 이식에서 허혈 및 재관류의 손상을 감소시키며 신기능의 회복에 효과가 있음을 시사하는 바이다.
동물의 장기를 인간에게 이식하게 되면 초급성거부반응(Hyperacute rejection, HAR)이 일어난다. 초급성거부반응은 면역계의 구성요소 중 보체(complement)에 의해 일어나는 거부반응으로 돼지의 혈관세포 표면에 있는 $Gal{\alpha}$(1,3)Gal 당분자에 인간의 항체가 즉각 반응하기 때문에 일어나며, ${\alpha}1,3$-galactosyltransferase(${\alpha}1,3$-GT) 유전자는 돼지 혈관세포 표면의 $Gal{\alpha}$(1,3)Gal 당분자 생성에 관여한다. 따라서 인간에게 돼지의 장기를 이식하기 위해서는 ${\alpha}1,3$-galactosyltransferase 유전자를 제거하는 것이 필요한 것으로 알려져 있다. 본 연구실의 이전 연구에서, 시카고 미니돼지 귀체세포에서 상동 재조합(Homologous recombination)을 통해 ${\alpha}1,3$-galactosyltransferase 유전자가 제거된 체세포를 개발한 바 있으며, 이 체세포를 통하여 ${\alpha}1,3$-GT 유전자가 제거된 돼지도 생산된 바 있다. 본 연구에서는, human serum 처리 시 돼지 세포를 보호해 준다고 보고되고 있는 human complement regulator인 human Decay-accelerating factor(hDAF)와 human ${\alpha}1,2$-fucosyltransferase(hHT)유전자를 ${\alpha}1,3$-GT 유전자 위치에 gene targeting하여 동시에 hDAF와 hHT가 발현하는 체세포를 개발하였다. Knock-in vector는 hDAF와 hHT 두 유전자가 발현할 수 있도록 IRES로 연결하였으며, ${\alpha}1,3$-GT 유전자의 start codon을 이용하여 발현할 수 있도록 구축하였다. 구축한 vector는 electroporation을 통해 미니 돼지 체세포에 도입하였으며, PCR 결과, ${\alpha}1,3$-GT 유전자 위치에서 상동 재조합이 일어났음을 확인하였다. Positive-negative 선별 방법을 통해 얻은 gene targeting 된 체세포는 RT-PCR에 의해 hDAF와 hHT 유전자의 발현이 확인되었으며, 대조군(NIH minipig)에 비해 ${\alpha}1,3$-GT 유전자의 발현이 감소하였다. 또한 이들 세포에 100% human complement serum을 처리하였을 때 knock-in 세포가 대조군에 비해 30% 정도 더 높은 생존율을 보였다. 따라서 개발된 체세포는 이종간 장기이식을 위한 돼지 생산과 함께 이를 이용한 이종간의 장기 이식 시 초급성 거부반응을 억제하는 데 사용될 수 있을 것으로 생각된다.
돼지에서 medetomidine-ketamine (MK) 합제에 대한 마취효과와 이 합제에 대한 atipamezole (MKA) 과 yohimbine (MKY)의 길항효과를 비교하였다. 24 마리 Landrace - Yorkshire 혼혈 종 돼지를 사용하였다. Medetomidineketamine 는 한 주사기로 근육주사 하였고 atipamezole 과 yohimbine 은 마취 후 20 분에 정맥 주사 하였다. 평균마취시간, 평균흉와시간, 평균기립시간 및 평균보행시간은 MKA와 MKY군에서 MK군보다 유의적으로 짧았다. 그러나 MKA군과 MKY군간의 유의적인 차이는 없었다. 평균혈압은 MKA와 MKY군에서 MK군보다 유의적으로 낮았다. 결론적으로 Medetomidine-ketamine 에 의한 마취 및 혈압 상승 효과는 atipamezole과 yohimbine 에 의해 안전하고 빠르게 길항되었다. 따라서 atipamezole과 yohimbine은 돼지에서 Medetomidine-ketamine 마취를 길항하는 데 안전하고 효과적으로 사용될 수 있다.
Park, K-W.;Yoo, J.Y.;Choi, K.M.;Yang, B.S.;Im, G.S.;Seol, J.G.
Asian-Australasian Journal of Animal Sciences
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제22권1호
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pp.20-25
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2009
Xenotransplantation of pig organs into humans is a potential solution for the shortage of donor organs for transplantation. However, multiple immune barriers preclude its clinical application. In particular, the initial type of rejection in xenotransplantation is an acute cellular rejection by host $CD8^+$ cytotoxic T lymphocyte (CTL) cells that react to donor major histocompatibility complex (MHC) class I. The human cytomegalovirus (HCMV) glycoprotein Unique Short (US) 2 specifically targets MHC class I heavy chains to relocate them from the endoplasmic reticulum (ER) membrane to the cytosol, where they are degraded by the proteasome. In this study we transfected the US2 gene into minipig fetal fibroblasts and established four US2 clonal cell lines. The integration of US2 into transgenic fetal cells was confirmed using PCR and Southern blot assay. The reduction of Swine Leukocyte Antigen (SLA)-I by US2 was also detected using Flow cytometry assay (FACS). The FACS analysis of the US2 clonal cell lines demonstrated a substantial reduction in SLA-I surface expression. The level (44% to 76%) of SLA-I expression in US2 clonal cell lines was decreased relative to the control. In cytotoxicity assay the rate of $CD8^+$ T cell-mediated cytotoxicity was significantly reduced to 23.8${\pm}$15.1% compared to the control (59.8${\pm}$8.4%, p<0.05). In conclusion, US2 can directly protect against $CD8^+$-mediated cell lysis. These results indicate that the expression of US2 in pig cells may provide a new approach to overcome the CTL-mediated immune rejection in xenotransplantation.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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