Recently, production of transgenic animal by nuclear transfer has been known as a useful method. The production of cloned offspring derived from nuclear transfer depends upon a variety of factors such as species, donor cells type and cell cycle, and source of recipient ova. Therefore, we attempted a different transgenic methods using follicular granulosa cells (GCs). In general, ovulated GCs undergoes lutenization and transformation in vitro which might defective effects on developmental potential. In order to avoid the GCs transformation in vitro culture system, we introduced a direct injection of retrovirus into the follicles and then collected them mechanically from ovaries of 6-8 week-old ICR mice. Retrovirus vector constructed with pLN $\beta$ EGFP was injected into the follicles. The follicles are cultured in $\alpha$ -MEM supplemented with human FSH, LH and ITS in Costar Transwell dish for 4 days. Survival rate of virus injected follicles was 52.1% (12/23) and expression rate of EGPP gene was 33.3% (4/12). In this study, we found GCs performed transgenesis in our culture system. In addition, the GCs in follicle may be developed in vivo like environment rather than in vitro environment. Thus, the use of GCs as donor cells may be useful in the nuclear transfer for cloning of genetic modification. Therefore, these results suggest that follicular GCs can be transfected by viral vector during folliculogenesis in vitro.
A powerful tool for chicken transgenesis could be established by employing a germline chimera production through primordial germ cell transplantation. This study was conducted to examine whether foreign gene-transfected gonadal primordial germ cells (gPGCs) have a migration activity into the gonad after transfer to recipient embryos. In Experiment 1, gPGCs of Korean Ogol Chicken were retrieved from 5.5-day-old embryos and subsequently transferred to the dorsal aorta of 2.5-day-old White Leghorn embryos after being labeled with PKH26 fluorescent dye. To confirm migration activity after transplantation, recipient embryos were sacrificed and examined on 3 days after transfer. Sex determination was concomitantly undertaken to examine whether sex of recipient embryos could affect the migration activity of gPGCs. All of embryonic gonads examined showed positive signals with PKH26 fluorescence and W-chromosome specific band by polymerase chain reaction (PCR) was detected in male embryos when gPGCs with ZW chromosome were transferred to recipient embryos. In Experiment 2, retrieved gPGCs were transfected with LacZ gene-containing cytomegalovirus promoter ($pCMV{\beta}$) by electroporation and subsequently transferred to recipient embryos. LacZ gene expression was identified in the gonads of 6 or 10-day-old recipient embryos and hatched-chicks. A total of 20 embryos and 12 hatched-chicks were examined and 11 of them (10 embryos and one hatched chicken; 11/32=34.4%) expressed $\beta$-galactosidase, a marker substance of LacZ gene. The results of this study demonstrated that foreign gene-transfected gPGCs can migrate and settle down into the gonad after being transferred into the blood vessel of the recipient embryos. This established technique will contribute to developing a peer biotechnology for transgenic chicken.
The aim of this study was to obtain mature ova or embryos at a single cell stage, which can be used in avian transgenesis and nuclear transfer through multiple ovulations, in vitro fertilization and culture. Chicken anterior pituitary extract (CAPE) or acetone-dried chicken anterior pituitary extract (ACAPE) was used to induce multiple ovulations in hens pretreated with pregnant mare' serum gonadotrophin (PMSG). In vitro fertilization of the multiple ovulated ova was performed by inseminating sperm onto the germinal disks in m-Ringer' solution and incubating the ova at 41$^{\circ}C$, 5% $CO_2$ for 10 h in DME-F12 medium containing 20% liquid albumen. The in vitro fertilization process was observed using an environmental scanning electron microscope. When normal laying hens (white Leghorn) were administered daily with PMSG (100 IU), egg laying ceased in most hens within 3 to 8 days. Ovulation began to occur about 7.5 h after injection of CAPE and ACAPE. The number of ovulated ova was 1.00${\pm}$0.00, 2.33${\pm}$0.52 and 2.20${\pm}$0.45, respectively, after receiving 100, 200 and 300 mg CAPE. The number of ovulated ova was 2.00${\pm}$0.00, 2.86${\pm}$0.69 and 3.00${\pm}$1.22, respectively, after receiving 10, 15 and 20 mg ACAPE. The fertilized and cultured ova were able to develop into embryos up to the 32 cell stage. The present experiments demonstrated that multiple ovulations can be induced by CAPE and ACAPE successfully, and the ova resulted from the treatment retained the capability for further fertilization and embryonic development. These data provide new information to support the establishment of an in vitro culture system for future avian transgenesis studies.
Transgenic animals have been widely used for developmental biology studies, as disease models, and even in industry such as transgenic bioreactor animals. For transgenic birds, quail has the great advantages of small body size, short generation time, and frequent egg production. To date, retroviral or lentiviral transduction has been used to generate transgenic quail for various purposes. However, the efficiency of transgenic offspring production with these methods is relatively low and viral vector usage has safety issues. Unfortunately, non-viral transgenesis has not been established in quail due to a deficiency of stem cell and germ cell culture systems. In this study, we established a direct in ovo lipofection method that could be used to create transgenic quail without germline-competent cells or viruses. To optimize the injection stage during embryo development, the liposome complex (containing piggyBacCMV-GFP and transposase plasmids) was introduced into an embryonic blood vessel at 50 hr, 55 hr or 60 hr. GFP expression was detected in various tissues (heart, kidney, liver and stomach) on day 12 of incubation under a fluorescence microscope. Additionally, GFP-positive cells were detected in the recipient embryonic gonads. In conclusion, the direct in ovo lipofection method with the piggyBac transposon could be an efficient and useful tool for generating transgenic quail.
Park, Seung-Kyu;Kim, Sun-Uk;Cho, Na-Na;Park, Chang-Sik;Lee, Sang-Ho
한국동물번식학회:학술대회논문집
/
한국동물번식학회 2004년도 춘계학술발표대회
/
pp.187-187
/
2004
Gene delivery is one of the keen interests in animal industry as well as research on gene function. Some of the in vivo gene delivery techniques have been successively used in various tissues for the gene therapy and transgenesis. Despite intensive efforts, it still remains to overcome problems of limited local and regional administration and low transgene expression. (omitted)
Gene and cell transfer technique will serve as a powerful tool for the genetic improvement of the poultry and to yield useful products. For avian transgenesis, Japanese quail may serve as an excellent animal model because of its small body size and fast growth rate. Recent progress was described on the manipulation of quail embryos such as the introduction of foreign genes and cells, and the subsequent culturing of the manipulated embryos yielding hatchlings. Intraspecific donor-derived offspring have been available in quail, however, further investigation will be required to obtain interspecific offspring with the aim of rescuing endangered species. Trans genesis will also be useful for improving the profitability and quality of poultry stocks and for developing stocks with novel uses. Considerable progress should soon be made toward the production of transgenic poultry. The key feature of the procedure described here is that embryos are initially taken out from the shell for ease of manipulation and then placed back in culture in addition to various operations midway during culture.
Biotechnological research and development are moving at a very fast rate. The subject has assumed greatest importance in recent years in the development of agriculture and human health. The science of biotechnology has endowed us with new tools and tremendous power to create novel genes and genotypes of plants, animals and fish. The application of biotechnology in the fisheries sector is a relatively recent practice. Nevertheless, it is a promising area to enhance fish production. The increased application of biotechnological tools can certainly revolutionise our fish farming besides its role in biodiversity conservation. The paper briefly reports the current progress and thrust areas in the use of synthetic hormones in fish breeding, production of monosex, uniparental and polyploid individuals, molecular biology and transgenesis, biotechnology in aquaculture nutrition and health management, gene banking and the marine natural products.
An overview of developments important in the future of animal breeding is discussed. Examples from the application of quantitative genetic principles to selection in chickens and mice are given. Lessons to be learned from these species are that selection for production traits in livestock must also consider selection for reproduction and other fitness-related traits and inbreeding should be minimized. Short-term selection benefits of best linear unbiased predictor methodology must be weighed against long-term risks of increased rate of inbreeding. Different options have been developed to minimize inbreeding rates while maximizing selection response. Development of molecular genetic methods to search for quantitative trait loci provides the opportunity for incorporating marker-assisted selection and introgression as new tools for increasing efficiency of genetic improvement. Theoretical and computer simulation studies indicate that these methods hold great promise once genotyping costs are reduced to make the technology economically feasible. Cloning and transgenesis are not likely to contribute significantly to genetic improvement of livestock production in the near future.
Genetic modification enables modification of target genes or genome structure in livestock and experimental animals. These technologies have not only advanced bioscience but also improved agricultural productivity. To introduce a foreign transgene, the piggyBac transposon element/transposase system could be used for production of transgenic animals and specific target protein-expressing animal cells. In addition, the clustered regularly interspaced short palindromic repeat-CRISPR associated protein 9 (CRISPR-Cas9) system have been utilized to generate chickens with knockout of G0/G1 switch gene 2 (G0S2) and myostatin, which are related to lipid deposition and muscle growth, respectively. These experimental chickens could be the invaluable genetic resources to investigate the regulatory pathways and mechanisms of improvement of economic traits such as fat quantity and growth. The gene-edited animals could also be applicable to the livestock industry.
Rats are one of the most widely used animals in biomedical sciences because their metabolism and physiology are comparable to humans. In recent years, gene-targeted models have been developed using various animal species utilizing engineered nucleases such as clustered regularly interspaced short palindromic repeats (CRISPR)/CRISPR-associated gene (Cas). It has recently become possible to efficiently transfect CRISPR/Cas into embryos via electroporation. However, electroporation can damage fertilized eggs; therefore, it is important to determine the optimal embryo culture conditions. A standardized approach for routine and reproducible rat transgenesis will render rat models more accessible for research. We performed experiments to obtain rat embryos with efficient superovulation and synchronization, and to investigate the appropriate medium conditions for pronuclear stage embryos subjected to electroporation stimulation for the introduction of engineered nuclease.
본 웹사이트에 게시된 이메일 주소가 전자우편 수집 프로그램이나
그 밖의 기술적 장치를 이용하여 무단으로 수집되는 것을 거부하며,
이를 위반시 정보통신망법에 의해 형사 처벌됨을 유념하시기 바랍니다.
[게시일 2004년 10월 1일]
이용약관
제 1 장 총칙
제 1 조 (목적)
이 이용약관은 KoreaScience 홈페이지(이하 “당 사이트”)에서 제공하는 인터넷 서비스(이하 '서비스')의 가입조건 및 이용에 관한 제반 사항과 기타 필요한 사항을 구체적으로 규정함을 목적으로 합니다.
제 2 조 (용어의 정의)
① "이용자"라 함은 당 사이트에 접속하여 이 약관에 따라 당 사이트가 제공하는 서비스를 받는 회원 및 비회원을
말합니다.
② "회원"이라 함은 서비스를 이용하기 위하여 당 사이트에 개인정보를 제공하여 아이디(ID)와 비밀번호를 부여
받은 자를 말합니다.
③ "회원 아이디(ID)"라 함은 회원의 식별 및 서비스 이용을 위하여 자신이 선정한 문자 및 숫자의 조합을
말합니다.
④ "비밀번호(패스워드)"라 함은 회원이 자신의 비밀보호를 위하여 선정한 문자 및 숫자의 조합을 말합니다.
제 3 조 (이용약관의 효력 및 변경)
① 이 약관은 당 사이트에 게시하거나 기타의 방법으로 회원에게 공지함으로써 효력이 발생합니다.
② 당 사이트는 이 약관을 개정할 경우에 적용일자 및 개정사유를 명시하여 현행 약관과 함께 당 사이트의
초기화면에 그 적용일자 7일 이전부터 적용일자 전일까지 공지합니다. 다만, 회원에게 불리하게 약관내용을
변경하는 경우에는 최소한 30일 이상의 사전 유예기간을 두고 공지합니다. 이 경우 당 사이트는 개정 전
내용과 개정 후 내용을 명확하게 비교하여 이용자가 알기 쉽도록 표시합니다.
제 4 조(약관 외 준칙)
① 이 약관은 당 사이트가 제공하는 서비스에 관한 이용안내와 함께 적용됩니다.
② 이 약관에 명시되지 아니한 사항은 관계법령의 규정이 적용됩니다.
제 2 장 이용계약의 체결
제 5 조 (이용계약의 성립 등)
① 이용계약은 이용고객이 당 사이트가 정한 약관에 「동의합니다」를 선택하고, 당 사이트가 정한
온라인신청양식을 작성하여 서비스 이용을 신청한 후, 당 사이트가 이를 승낙함으로써 성립합니다.
② 제1항의 승낙은 당 사이트가 제공하는 과학기술정보검색, 맞춤정보, 서지정보 등 다른 서비스의 이용승낙을
포함합니다.
제 6 조 (회원가입)
서비스를 이용하고자 하는 고객은 당 사이트에서 정한 회원가입양식에 개인정보를 기재하여 가입을 하여야 합니다.
제 7 조 (개인정보의 보호 및 사용)
당 사이트는 관계법령이 정하는 바에 따라 회원 등록정보를 포함한 회원의 개인정보를 보호하기 위해 노력합니다. 회원 개인정보의 보호 및 사용에 대해서는 관련법령 및 당 사이트의 개인정보 보호정책이 적용됩니다.
제 8 조 (이용 신청의 승낙과 제한)
① 당 사이트는 제6조의 규정에 의한 이용신청고객에 대하여 서비스 이용을 승낙합니다.
② 당 사이트는 아래사항에 해당하는 경우에 대해서 승낙하지 아니 합니다.
- 이용계약 신청서의 내용을 허위로 기재한 경우
- 기타 규정한 제반사항을 위반하며 신청하는 경우
제 9 조 (회원 ID 부여 및 변경 등)
① 당 사이트는 이용고객에 대하여 약관에 정하는 바에 따라 자신이 선정한 회원 ID를 부여합니다.
② 회원 ID는 원칙적으로 변경이 불가하며 부득이한 사유로 인하여 변경 하고자 하는 경우에는 해당 ID를
해지하고 재가입해야 합니다.
③ 기타 회원 개인정보 관리 및 변경 등에 관한 사항은 서비스별 안내에 정하는 바에 의합니다.
제 3 장 계약 당사자의 의무
제 10 조 (KISTI의 의무)
① 당 사이트는 이용고객이 희망한 서비스 제공 개시일에 특별한 사정이 없는 한 서비스를 이용할 수 있도록
하여야 합니다.
② 당 사이트는 개인정보 보호를 위해 보안시스템을 구축하며 개인정보 보호정책을 공시하고 준수합니다.
③ 당 사이트는 회원으로부터 제기되는 의견이나 불만이 정당하다고 객관적으로 인정될 경우에는 적절한 절차를
거쳐 즉시 처리하여야 합니다. 다만, 즉시 처리가 곤란한 경우는 회원에게 그 사유와 처리일정을 통보하여야
합니다.
제 11 조 (회원의 의무)
① 이용자는 회원가입 신청 또는 회원정보 변경 시 실명으로 모든 사항을 사실에 근거하여 작성하여야 하며,
허위 또는 타인의 정보를 등록할 경우 일체의 권리를 주장할 수 없습니다.
② 당 사이트가 관계법령 및 개인정보 보호정책에 의거하여 그 책임을 지는 경우를 제외하고 회원에게 부여된
ID의 비밀번호 관리소홀, 부정사용에 의하여 발생하는 모든 결과에 대한 책임은 회원에게 있습니다.
③ 회원은 당 사이트 및 제 3자의 지적 재산권을 침해해서는 안 됩니다.
제 4 장 서비스의 이용
제 12 조 (서비스 이용 시간)
① 서비스 이용은 당 사이트의 업무상 또는 기술상 특별한 지장이 없는 한 연중무휴, 1일 24시간 운영을
원칙으로 합니다. 단, 당 사이트는 시스템 정기점검, 증설 및 교체를 위해 당 사이트가 정한 날이나 시간에
서비스를 일시 중단할 수 있으며, 예정되어 있는 작업으로 인한 서비스 일시중단은 당 사이트 홈페이지를
통해 사전에 공지합니다.
② 당 사이트는 서비스를 특정범위로 분할하여 각 범위별로 이용가능시간을 별도로 지정할 수 있습니다. 다만
이 경우 그 내용을 공지합니다.
제 13 조 (홈페이지 저작권)
① NDSL에서 제공하는 모든 저작물의 저작권은 원저작자에게 있으며, KISTI는 복제/배포/전송권을 확보하고
있습니다.
② NDSL에서 제공하는 콘텐츠를 상업적 및 기타 영리목적으로 복제/배포/전송할 경우 사전에 KISTI의 허락을
받아야 합니다.
③ NDSL에서 제공하는 콘텐츠를 보도, 비평, 교육, 연구 등을 위하여 정당한 범위 안에서 공정한 관행에
합치되게 인용할 수 있습니다.
④ NDSL에서 제공하는 콘텐츠를 무단 복제, 전송, 배포 기타 저작권법에 위반되는 방법으로 이용할 경우
저작권법 제136조에 따라 5년 이하의 징역 또는 5천만 원 이하의 벌금에 처해질 수 있습니다.
제 14 조 (유료서비스)
① 당 사이트 및 협력기관이 정한 유료서비스(원문복사 등)는 별도로 정해진 바에 따르며, 변경사항은 시행 전에
당 사이트 홈페이지를 통하여 회원에게 공지합니다.
② 유료서비스를 이용하려는 회원은 정해진 요금체계에 따라 요금을 납부해야 합니다.
제 5 장 계약 해지 및 이용 제한
제 15 조 (계약 해지)
회원이 이용계약을 해지하고자 하는 때에는 [가입해지] 메뉴를 이용해 직접 해지해야 합니다.
제 16 조 (서비스 이용제한)
① 당 사이트는 회원이 서비스 이용내용에 있어서 본 약관 제 11조 내용을 위반하거나, 다음 각 호에 해당하는
경우 서비스 이용을 제한할 수 있습니다.
- 2년 이상 서비스를 이용한 적이 없는 경우
- 기타 정상적인 서비스 운영에 방해가 될 경우
② 상기 이용제한 규정에 따라 서비스를 이용하는 회원에게 서비스 이용에 대하여 별도 공지 없이 서비스 이용의
일시정지, 이용계약 해지 할 수 있습니다.
제 17 조 (전자우편주소 수집 금지)
회원은 전자우편주소 추출기 등을 이용하여 전자우편주소를 수집 또는 제3자에게 제공할 수 없습니다.
제 6 장 손해배상 및 기타사항
제 18 조 (손해배상)
당 사이트는 무료로 제공되는 서비스와 관련하여 회원에게 어떠한 손해가 발생하더라도 당 사이트가 고의 또는 과실로 인한 손해발생을 제외하고는 이에 대하여 책임을 부담하지 아니합니다.
제 19 조 (관할 법원)
서비스 이용으로 발생한 분쟁에 대해 소송이 제기되는 경우 민사 소송법상의 관할 법원에 제기합니다.
[부 칙]
1. (시행일) 이 약관은 2016년 9월 5일부터 적용되며, 종전 약관은 본 약관으로 대체되며, 개정된 약관의 적용일 이전 가입자도 개정된 약관의 적용을 받습니다.