The chromosomal DNA of Klebsiella penumoniae KNF1 was partially digested with HindIII. pBR322 was completely digested with same enzyme with additional alkaline phosphatase treatment. Both DNA samples were ligated and transformed into E. coli KO60. Single coloneis of the transformed cells were isolated on N0free agar media. These colonies were ampicillin-resistant and tetracycline-sensitive. When the plasmids in transformants were cured, nitrogen-fixing activities were lost. Therefore, these transformants harbored recombinant plasmid including nif genes of K. pneumoniae. Nitrogenase activity of transformant was higher than or the same as that of K. pneumoniae KNF1.
A novel strategy was developed for isolating suppressors from sporulation-deficient mutants. The mutation in the BCY1 gene, which codes for the regulatory subunit of cAMP-dependent protein kinase, when homozygous, results in diploids being meiosis and sporulation deficient. Two plasmids, YCp-MAT.alpha. and YEp-SPOT7-lacZ, were introduced into MAT.alpha. BCY1$\^$+/ or MAT.alpha. bcy1 haploid cells. The transformant of the BCY1$\^$+/ haploid cell produced .betha.-galactosidase under nutrient starvation, but the bcy1 transformant did not. Using this system, the mutagenesis experiment performed on the bcy1 transformant strain resulted in a number of sporulation mutants that produced .betha.-galactosidase under nutrient starvation. One complementation group, sob1, was identified from the isoalted suppressor mutants and characterized as a single recessive mutation by tetrad analysis. Genetic analysis revealed that the sob1 mutation suppressed the sporulation deficiency, the failure to arrest at the G1 phase of the cell cecle, and the sensitivity to heat or nitrogen starvation caused by the bcy1 mutation. However, the sob1 mutation did not suppress the sporulation deficiency of ime1 and of ime2 diploids. These results suggest that the sob1 mutation affects a gene which functions as a downstream regulator in both meiosis and cell cycle regulation.
To enhance the capability of starch fermentation of the transformant TSD-14, the heat treated protoplasts of TSD-14 were fused with the protoplasts of C. tropicalis (lys$^-$) in the presence of 30% (w/ v) PEG and 20 mM CaC1$_2$. Fusants were selected by nutritional complementation on minium medium and the fusion frequency was 4.4$\times$10$^{-5}$. All fusants tested were possessed of complemented traits concerning carbon compound assimilation, and the cell volumes of the fusants were approximately 1.5 times larger than the parental strains. The fusants were genetically very stable, and were able to hydrolyze alpha 1,4-glucosidic linkage as well as alpha 1,6-linkage of starch contrary to one of parents TSD-14, The most promising fusant FSC-14-75 produced 8.7% (v/v) of ethanol from 15% liquefied potato starch medium, but the result was enhanced to 9.3% (v/v) by addition of 0.3% peptone. The corresponding fermentation efficiency was 86.0%.
We have used two kinds of P element constructs, Pc[(ry+)B] and p[(ry+)$\Delta$SX9], for genetic transformation by microinjection of D. melanogaster. Pc[(ry+)B] construct carrying the rosy gene within an autonomous P element was injected into a true M strain caring the ry506. mutation. The source of transposase for microinjection and transformation was provided by a P element helper plasmid designated p-$\Delta$2-3hs$\pi$, which was co-injected with nonautonomous P[(ry+)$\Delta$SX9] construct into same ry506 M strains. A dechorination method was adopted and 35 independent transformed lines were obtained froin 1143 G0 Injected (35/1143). About 20% of the injected embryos eclosed as adults. Among G0 eclosed flies, approximately 40% exhibited eye color that was similar to wild-type (ry+), but about 60% of fertile G0 transformed lines appeared to have no G1 transformants. Therefore it is unlikely that G0 expression requires integration of the rosy transposon into chromosomes. Pc[(ry+)B] and P[(ry+)$\Delta$SX9] constructs were found to be nearly same in the frequency of element-mediated transformation. On the basis of these results, nonautonomous P elements constructs could he used as same effective vectors in P element-mediated transformation for introducing and fixing genes in insect populations.
Human leptin is a 16kDa protein and is known to influence body weight control. It is composed of 146 amino acids. In this study, human leptin gene was obtained from homosapiens leptin mRNA using RT-PCR. And leptin gene was inserted into secretion vectors and Saccharomyces cerevisiae was transformed. In flask culture, Saccharomyces cerevisiae transformant showing high leptin expression titre was selected and with the best transformant, fed-batch fermentation and purification was optimized. As a result, about 2 g/L of leptin was expressed and the yield of purification was about 80%.
To explore the possibility of introducing Zea mays transposable element Ac(activator) which can be used as a mutagen and gene tag in tobacco plants other than maitre, we tried to introduce a cloned Ac element into tobacco cells by an Agrobacterium tumefaciens binary vector system. Transformation of N. babacum cv. Burley 21 tissues and regeneration to whole plant were carried out. The frequency of the transformed callus induced in shoot induction media was higher than that of transformed callus induced in callus induction media. However, the calli were not grown in the second selection media, and became yellow senescent calli. Regenerated tobacco plantlets with foreign gene were also obtained in shoot induction media containing 100 $\mu\textrm{g}$/ml kanamycin and 100$\mu\textrm{g}$/ml carbenicillin. The leaf tissues of transformant was also resistant to 1000 $\mu\textrm{g}$/ml kanamycin. The chromosomal DNAs of transformant and normal plant of N. tabacum were digested by EcoR I and Hind III but not by Pst I.
Streptomyces cattleya is a producer of carbapenem antibiotics, thienamycin and N-acetylthienamycin, which have potent and broad-spectrum antibacterial activities. We stud ied on strain improvement for antibiotic productivity of S. cattleya by transformation technique which employed S.cattleya protoplasts and chromosomal DNAs of glutamic acid producers: Corynebacterium glutamicum and Arthrobacter simplex. 150 Transformant strains were cultured and bioassayed using Bacillus subtilis and Staphylococcus aureus as test organisms. 8.7% of transformants tested showed 1.4~2.6 fold higher productivities than wild type which produced $1.61{\pm}0.67{\mu}g/ml$. The best transformant produced $8.36{\pm}2.84{\mu}g/ml$ carbapenems.
Bacillus thuringiensis subsp. morrisoni PG-14 is a gram-positive soil bacterium producing mosquitocidal parasporal inclusions composed of several crystal proteins. Among these crystal protein genes, cryIVD gene is one of major component which has 72 kDa in size. However, these parasporal inclusions sink quickly from the surface of water where mosquito larval feeding occurred. To develope mosquitocidal cyanobacterium, therefore, we constructed the expression vector, pCYASK 5-1 harboring cryIVD gene. The expression vector, pCYASK5-1 was transformed into the cyanobacterium Syne- chocystis PCC6803 reported as a natural mosquito larval food source and the transformants were selected with kanamycin. Expression of IVD gene in transformant was characterized by SDS-polyacrylamide gel electrophoresis (PAGE) and immunoblot analysis. The mosquitocidal activity of a transformant was determined with Culex tritaeniorhynchus. The results showed that, the transformed cyanobacterium is toxic to mosquito larvae and will be expected as a potential agent that is used for mosquito control.
Ferritin is an iron storage protein found in most living organisms. For expression and industrial use, human light chain ferritin (L-ferritin) was cloned from human liver cDNA library and expressed in Pichia pastoris strain GS115. The recombinant L-ferritin in Pichia pastoris was glycosylated. In a fed-batch culture, the cell mass reached about 57 g/l of dry cell weight, and the L-ferritin in the cell was increased to about 95 mg/l after 150 h. In an atomic absorption spectrometry analysis, the intracellular content of iron in the L-ferritin transformant was measured as $1,694{\pm}85\;\mu\textrm{g}g/g$, which is 5.4-fold more than that of the control strain. This L-ferritin transformant could serve as iron-fortified nutrients in animal feed stock.
Since it is known that Agrobacterium tumefaciens, which has long been used to transform plants, can transfer the T-DNA to yeast Saccharomyces cerevisiae during tumourigenesis, a variety of fungi were subjected to transformation to improve their transformation frequency. In this study, I report the A. tumefaciens-mediated transformation of filamentous fungus Aspergillus niger. Transfer of the binary vector pBIN9-Hg, containing the bacterial hygromycin B phosphotransferase gene under the control of the Aspergillus nidulans trpC promoter and terminator as a selectable marker, led to the selection of $50{\sim}100$ hygromycin B-resistant transformants per $1{\times}10^7$ conidia of A. niger. This efficiency is improved $10{\sim}20$ fold more than reported elsewhere. In order to avoid the difficulties in selection transformant from the over-growing non-transformant, I used top agar containing 900 ${\mu}g/ml$ of hygromycin. Genomic PCR and Southern analysis showed that all transformants contained single T-DNA insert per fungal genome. This technique offers an easier and more efficient method than that of using protoplast.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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