Park, Eun-Ju;Yun, Doo-Hee;Cho, Eun-Jyung;Ryu, Byung-Hho;Kim, Hee-Sook
Korean Journal of Food Science and Technology
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v.26
no.1
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pp.81-87
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1994
Two different trypsin inhibitors, TRTI-1 and TRTI-2, were purified to near homogenity from Trichosanthes kirilowii root, by $0{\sim}90%$ saturated ammonium sulfate salting out, DEAE-Sephacel ion exchange chromatography, Sephadex G-50 gel filtration chromatography and trypsin-affinity chromatography. The molecular weight of TRTI-1 and TRTI-2 were estimated to be about 5,000 Da and 24,000 Da, respectively, by gel filtration and must be monomer and homodimer since they contain 4,000 Da and 10,000 Da each on SDS-polyacrylamide gel electrophoresis. TRTI-1 was stable after heating for at least 2 hr at $100^{\circ}C$ but TRTI-2 was completely inactivated after heating for 10 min at $90^{\circ}C$. When Bz-dl-Arg-pNA was used as a substrate of TPCK-treated trypsin, half-maximal inhibitions of TRTI-1 and TRTI-2 were observed at $0.8\;{\mu}M$ and 6\;${\mu}M$, repectively. Both TRTI-1 and TRTI-2 inhibited the hydrolysis of trypsin competitively and Km values were $0.97\;{\mu}M$ and $0.63\;{\mu}M$, respectively. Both TRTI-1 and TRTI-2 specifically inhibited trypsin but they did not inhibit other proteases tested, chymotrypsin, papain, elastase, collagenase, thermolysin, Nagarase, pepsin, and thrombin.
Although the number of patients with Acanthamoeba keratitis has increased dramatically since the widespread use of contact lens, it is still very hard to cure the disease. The proteases from the Acanthamoeba were reported to play important role in the pathogenesis of keratitis. In this study, the inhibitors for extracellular serine proteases of A. castellanii were screened from the extracts of 230 mushroom samples collected from various regions of Korea. The mushrooms were extracted with methanol and water ($65^{\circ}C$). Filtered and concentrated extracts (0.3 mg/ml) were preincubated with proteases before addition of peptide substrate N-succinyl-ala-ala-pro-phe p-anilide. The selected extracts showing strong inhibitory effects were characterized. Although inhibition with single extract was not so high enough, the complete inhibition was achieved with combination of two extracts. The selected extract showed little effect on other serine proteases such as thrombin (human and bovine) and on general protease such as protease K.
Thrombin-induced platelet microbicidal protein (tPMP) is a small cationic peptide that exerts potent in vitro microbicidal activity against a broad spectrum of human pathogens, including Staphylococcus aureus and Streptococcus rattus BHT. Earlier evidence has suggested that tPMP targets and disrupts the bacterial membrane. However, it is not yet clear whether membrane disruption itself is sufficient to kill the bacteria or whether subsequent, presumably intracellular, events are also involved in this process. In this study, we investigated the microbicidal activity of rabbit tPMP toward S. rattus BHT cells in the presence or absence of a pretreatment with antibiotics that differ in their mechanisms of action. The streptocidal effects of tPMP on control cells (no antibiotic pretreatment) were rapid and concentration-dependent. Pretreatment of S. rattus BHT cells with either penicillin or amoxicillin (inhibitors of bacterial cell wall synthesis) significantly enhanced the anti-S. rattus BHT effects of tPMP compared with the effects against the respective control cells over most tPMP concentration ranges tested. On the other hand, pretreatment of S. rattus BHT cells with tetracycline or doxycycline (30S ribosomal subunit inhibitors) significantly decreased the streptocidal effects of tPMP over a wide peptide concentration range. Furthermore, pretreatment with rifampin (an inhibitor of DNA-dependent RNA polymerase) essentially blocked the killing of S. rattus BHT by tPMP at most concentrations compared with the respective control cells. These results suggest that tPMP exerts anti-S. rattus BHT activity through mechanisms involving both the cell membrane and intracellular targets.
Purpose: The use of direct oral Xa inhibitors (DXaIs) to prevent venothrombotic events is increasing. However, gastrointestinal bleeding, including that related to endoscopic resection, is a concern. In this study, we evaluated bleeding and coagulation times during the perioperative period of gastric endoscopic submucosal dissection (ESD). Materials and Methods: Patients who consecutively underwent gastric ESD from August 2016 to December 2018 were analyzed. Bleeding rates were compared among the 3 groups (antiplatelet, DXaIs, and control). DXaI administration was discontinued on the day of the procedure. Prothrombin time (PT), activated partial thromboplastin time, and the ratio of inhibited thrombin generation (RITG), which was based on dilute PT, were determined before and after ESD. Results: During the study period, 265 gastric ESDs were performed in 239 patients, where 23 and 50 patients received DXaIs and antiplatelets, respectively. Delayed bleeding occurred in 17 patients (7.4%) and 21 lesions (7.1%). The bleeding rate in the DXaI group was significantly higher than that in the other groups (30.4%, P<0.01), and the adjusted odds ratio of bleeding was 5.7 (95% confidence interval, 1.4-23.7; P=0.016). In patients using DXaIs, there was a significant (P=0.046) difference in the median RITG between bleeding cases (18.6%) and non-bleeding cases (3.8%). Conclusions: A one-day cessation of DXaIs was related to a high incidence of bleeding after gastric ESD, and monitoring of residual coagulation activity at trough levels might enable the predicted risk of delayed bleeding in patients using DXaIs.
Baik, Ji Sue;Seo, You Na;Rhee, Man Hee;Park, Moon-Taek;Kim, Sung Dae
Biomedical Science Letters
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v.27
no.3
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pp.170-176
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2021
Thapsigargin (TG), a sarco/endoplasmic reticulum (ER) Ca2+-ATPase (SERCA) inhibitor, has been widely used as an agonist for platelet aggregation for decades. In this study, we investigated the effect of TG on the release of lactate dehydrogenase (LDH) for platelets and elucidated its mechanism. Platelet LDH release and platelet aggregation were increased by TG treatment; 1,000 nM of TG induced the complete lysis of platelets. Other agonists such as collagen (2.5 ㎍/mL), thrombin (0.1 U/mL), and ADP (10 mM) did not induce significant platelet LDH release despite platelet aggregation. Finally, we investigated the effects of pharmacological inhibitors on TG-induced platelet aggregation and LDH release. SP600125, a JNK inhibitor, and LY294002, a PI-3K inhibitor, inhibited TG-induced platelet LDH release but not platelet aggregation. Forskolin, an adenylyl cyclase activator, also inhibited LDH release without affecting platelet aggregation by TG. These results suggest that the TG-induced platelet aggregation was accompanied by LDH release but regulated by a different signaling pathway.
Tissue thromboplastin (tissue factor), a membrane bound glycoprotein is an important initiating factor in blood coagulation cascade, which leads to the formation of thrombin by activating both factor X and IX. Activation of blood coagulation by TF is essential for blood injury, and stimulates the blood coagulation in myocardial infarction, cancer and blood coagulatory diseases. High density lipoprotein, apolipoprotein A-II were known to be biological TF inhibitors. Recently, studies on search for TF inhibitors from natural products have been active in Korea. Among the edible mushrooms screened for inhibitory activities on the TF, Lentinus edodes showed the most strong activity, followd by Agaricus bisporus and Ganoderma lucidium. And the fractionation of the above mushrooms with the chloroform ($CHCl_3$) and ethylacetate (EtOAc) was done and evaluated for the inhibitory activities on TF. In Ganoderma lucidium, $CHCl_3$ fraction and $H_2O$ layer were not active, but EtOAc fraction exhibited a strong inhibitory activity on TF and the $IC_{50}$ value was $1.07{\times}10^{-4}\;g$. In the case of Agaricus bisporus, there were no inhibitory activities on the TF in all of the fractions. $CHCl_3$ fraction and $H_2O$ layer of Lentinus edodes did not show inhibition on the TF but EtOAc fraction showed strong inhibition on the TF, and the $IC_{50}$ value was $7.70{\times}10^{-4}\;g$.
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