Quantitation of N7-methyldeoxyguanosine (N7-MedG) produced in the in vitro N-methly-N-nitrosuourea (NMU) action on thymus DNA has been achieved by enzymatic degradation, liquid chromatoraphic separaphic separation and desorption chemical ionization tandem mass spectrometry. In conjunction with the resolving power HPLC in the separation of isomers, desorprion chemical ionization tandem mass spectrometry has utilized in determining modified nucleosides at low levels using a stable-isotope labled compound as an internal reforence. The quantitative estimation of N7-methyldeoxyguanosine was previously established by an independent HPLC analysis of methylated calf thymus DNA. A sensitive and specific methodogy for the quantitation of N7-MedG at the picomole level using HPLC combined with tandem mass spectrometry without radioisotope labeling process is presented. The potential of the liquid chromatoraphic tandem mass exposure to methlation agents in vitro.
A series of biologically active phosphopeptides were synthesized and their behavior in tandem mass spectrometry have been investigated. The structure identifications of other unusual peptides such as sulphated, glycosylated, lipoidal, and backbone modified peptides have been carried out. For all tested peptides, the structural modification could be determined directly by measurement of the absolute molecular weight in combination with collision-induced-dissociation in tandem mass spectrometry.
The number of matched peaks (NMP) is estimated as the spectral similarity measure in tandem mass spectral library searches of small molecules. In the high resolution mode, NMP provides the same reliable identification as in the case of a common dot-product function. Corresponding true positive rates are ($94{\pm}3$) % and ($96{\pm}3$) %, respectively.
Sets of sialic acid-containing trisaccharides having different internal and terminal linkages have been synthesized to develop a sensitive method for analysis of the reducing terminal linkage positions. The trisaccharides, sialyl($\alpha$ 2-3)Gal($\beta$ 1-3)GalNAc and sialyl($\alpha$ 2-3)Gal($\beta$ 1-X)GlcNAc where X=3, 4 and 6, were synthesized and examined using electrospray ionization (ESI)-collision induced dissociation (CID) tandem mass spectrometry (MS/MS). The compounds chosen for this study are related to terminal groups likely to be found on polylactosamine-like glycoproteins and glycolipids which occur on the surface of mammalian cells. The purpose of this study is to develop tandem mass spectrometral methods to determine detailed carbohydrate structures on permethylated or partially methylated oligosaccharides for future applications on biologically active glycoconjugates and to exploit a faster method of synthesizing a series of structural isomeric oligosaccharides to be used for further mass spectrometry and instrumental analysis.
Shim, Hee Jung;Lee, Ji Ye;Kim, Byungjoo;Hong, Jongki
Mass Spectrometry Letters
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v.4
no.4
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pp.79-82
/
2013
Various types of alkaloids observed in several herbal medicines were analyzed by electrospray ionization tandem mass spectrometry in positive ion mode. In the present study, MS/MS spectralpatterns were investigated for eight-types of alkaloids (aporpine, protoberberine, tetrahydroprotoberberine, benzylisoquinoline, protopine, phthalide, morpine, and bisbenzylisoquinoline). For aporpine- and protoberberine-type alkaloids, main fragmentations occurred at substituted groups on rigid ring structures, not showing ring fusion. Interesting fragmentations due to iminolization and retro-Diels-Alder (RDA) reaction were observed in MS/MS spectra of protopine- and tetrahydroprotobereberine-type alkaloids. Also, several types of fragmentations such as inductive cleavage and ${\alpha}$-cleavage, or bond cleavage between two ring structures were observed depending on their structural characteristics. These fragmentation patterns are expected to allow instant classification of the specific alkaloid type in various MS/MS spectra of alkaloids.
Two types of glycerolipids [monoacylglycerols (MAG) and cyclitols] were isolated by reversed phase high-performance liquid chromatography from the methanol extracts of a marine sponge, and analyzed by fast atom bombardment mass spectrometry (FAB-MS) in positive-ion mode. FAB mass spectra of these compounds yielded protonated molecules $[M + H]^+$ and abundant sodiated molecules $[M + Na]^+$ from a mixture of 3-nitrobenzyl alcohol and NaI. The structures of these compounds were elucidated by FAB-collisional-induced dissociation (CID)-tandem mass spectrometry. We carried out collision-indused dissociation (CID) of these lipids in B/E-linked scan mode. The CID B/E-linked scan of $[M + H]^+$ and $[M + Na]^+$ precursor ions resulted in the formation of numerous characteristic product ions through a series of dissociative processes. The product ions formed by charge-remote fragmentation (CRF) provided important information for the identification of the acyl chain structure substituted at the glycerol backbone. Some of the product the ions were diagnostic for the presence of a glycerol backbone or acyl chain structure.
The purpose of this paper is to introduce the simplified linkage position determination method using tandem mass spectrometry combined with molecular modeling study. Using low energy tandem mass spectrometric experiments and molecular modeling, it has been suggested that significant differences in glycosidic bond cleavage may occur due not only to ionic considerations but also may have contributions from steric hindrance of the absorbance of collision energy, leading to a statistically higher bond cleavage for sterically crowded linkages. Permethylated derivatives of the linkage-isomeric trisaccharides give useful fragmentation ratios and productions, including a 3-linkage specific ion. The ratios of fragment ions are related to the ability of each linkage position in the oligosaccharide to absorb collisional energy.
This study aims to validate a fast method of simultaneous analysis of 365 LCamenable and 142 GC-amenable pesticides in hen eggs by liquid chromatography-tandem mass spectrometry (LC-MS/MS) and gas chromatography-tandem mass spectrometry (GC-MS/MS), respectively, operating in multiple reaction monitoring (MRM) acquisition modes. The sample preparation was based on quick, easy, cheap, effective, rugged, and safe (QuEChERS) extraction. Key method performance parameters investigated were specificity, linearity, limit of quantification (LOQ), accuracy, precision and measurement uncertainty. The method was validated at two spiking levels (10 and 50 ㎍/kg), and good recoveries (70%-120%) and relative standard deviations (RSDs) (≤20) were achieved for 92.9% of LC-amenable and 86.6% of GC-amenable pesticide residues. The LOQs were ≤10 ㎍/kg for 94.2% of LC-amenable and 92.3% of GC-amenable pesticides. The validated method was further applied to 100 egg samples from caged hens, and none of the pesticides was quantified.
We demonstrated the combined applications of online protein digestion using trypsin immobilized enzyme reactor (IMER) and dual tandem mass spectrometry with collisionally activated dissociation (CAD) and electron transfer dissociation (ETD) for tryptic peptides eluted through the trypsin-IMER. For the trypsin-IMER, the organic and inorganic hybrid monolithic material was used. By employing the trypsin-IMER, the long digestion time could be saved with little or no sacrifice of the digestion efficiency, which was demonstrated for standard protein samples. For three model proteins (cytochrome c, carbonic anhydrase, and bovine serum albumin), the tryptic peptides digested by the IMER were analyzed using LC-MS/MS with the dual application of CAD and ETD. As previously shown by others, the dual application of CAD and ETD increased the sequence coverage in comparison with CAD application only. In particular, ETD was very useful for the analysis of highly-protontated peptide cations, e.g., ${\geq}3+$. The combination approach provided the advantages of both trypsin-IMER and CAD/ETD dual tandem mass spectrometry applications, which are rapid digestion (i.e., 10 min), good digestion efficiency, online coupling of trypsin-IMER and liquid chromatography, and high sequence coverage.
Androgenic anabolic steroids (AASs) are synthetic derivatives of testosterone with a common structure containing cyclopentanoperhydrophenanthrene nucleus. Their use enhances the muscle building capacity and is beneficial during performance. The AASs are one of the most abused group of substances in horse doping. Liquid chromatography tandem mass spectrometry ($LC/MS^n$) has been successfully applied to the detection of anabolic steroids in biological samples. However, the saturated hydroxysteroids viz: nandrolone, $5{\alpha}-estrane-3{\beta}$, $17{\alpha}-diol$ exhibit lower detection responses in electrospray ionisation (ESI) because of their poor ionisation efficiency. To overcome this limitation pre-column chemical derivatization has been introduced to enhance their detection responses in $LC-ESI-MS^n$ analysis. The aim of present study was to develop a sensitive method for identification and confirmation of nandrolone and its metabolite in horse urine incorporating pre-column derivatization using picolinic acid. The method consists of extraction of targeted steroid conjugates by solid phase extraction (SPE). The eluted steroid conjugates were hydrolysed by methanolysis and free steroids were recovered with liquid-liquid extraction. The resulting steroids were derivatized to form picolinoyl esters and identification was done using LC-ESI-MS/MS in positive ionization mode. The picolinated steroid adduct enhanced the detection levels in comparison to underivatized steroids.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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