Tumor necrosis factor (TNF) signaling is mediated via two distinct receptors, TNFR2 and TNFR1, which shows partially overlapping signaling mechanisms and biological roles. In the present study, TNFR2 and TNFR1 signal transduction mechanisms involved in activation of $NF{\kappa}B$ and CMV promoter-enhancer were compared with respect to their susceptibility towards inhibitors of intracellular signaling. For this, we used SW480 cells, where we have shown that TNF-signaling can occur independently through each of the two receptors. The TNFR1 response was inhibited by D609, bromophenacyl bromide (BPB), nordihydroguararetic acid (NDGA), and by sodium salicylate, while TNFR2-mediated activation of $NF{\kappa}B$ and CMV promoter-enhancer was resistant to these compounds. The signaling mechanisms known to be affected by these inhibitors include phospholipases as well as redox- and pH-sensitive intracellular components. Our results imply that TNFR2 signaling involved in $NF{\kappa}B$ activation proceeds independently of these inhibitor-sensitive signaling components, indicating distinct signaling pathways not shared with TNFR1.
Ultraviolet (UV) radiation of the sunlight, especially UVA and UVB, is the primary environmental cause of skin damage, including topical inflammation, premature skin aging, and skin cancer. Previous reports show that activation of nuclear $factor-{\kappa}B$ ($NF-{\kappa}B$) in human skin fibroblasts and keratinocytes after UV exposure induces the expression and release of proinflammatory cytokines, such as interleukin-1 (IL-1) and tumor necrosis $factor-{\alpha}$ ($TNF-{\alpha}$), and subsequently leads to the production of matrix metalloproteases (MMPs) and growth factor basic fibroblast growth factor (bFGF). Here, we demonstrated that TNFR2-SKEE and TNFR2-SKE, oligopeptides from TNF receptor-associated factor 2 (TRAF2)-binding site of TNF receptor 2 (TNFR2), strongly inhibited the interaction of TNFR1 as well as TNFR2 with TRAF2. In particular, TNFR2-SKE suppressed UVB- or $TNF-{\alpha}$-induced nuclear translocalization of activated $NF-{\kappa}B$ in mouse fibroblasts. It decreased the expression of bFGF, MMPs, and COX2, which were upregulated by $TNF-{\alpha}$, and increased procollagen production, which was reduced by $TNF-{\alpha}$. Furthermore, TNFR2-SKE inhibited the UVB-induced proliferation of keratinocytes and melanocytes in the mouse skin and the infiltration of immune cells into inflamed tissues. These results suggest that TNFR2-SKE may possess the clinical potency to alleviate UV-induced photoaging in human skin.
Tumor necrosis factor-$\alpha$ (TNF-$\alpha$) and lymphotoxin-$\alpha$ (LT-$\alpha$, TNF-$\beta$) can initiate and perpetuate human diseases such as multiple sclerosis (MS), rheumatoid arthritis (RA), and insulin-dependent diabetes mellitus (IDDM). TNFs can be blocked by the use of soluble TNF receptors. However, since monomeric soluble receptors generally exhibit low affinity or function as agonists, the use of monomeric soluble receptors has been limited in the case of cytokines such as TNF-$\alpha$, TNF-$\alpha$, interleukin (IL)-1, IL-4, IL-6, and IL-13, which have adapted to a multi component receptor system. For these reasons, very high-affinity inhibitors were created for the purpose of a TNFs antagonist to bind the TNFR and trigger cellular signal by using the multistep polymerase chain reaction method. First, recombinant simple TNFR-Ig fusion proteins were constructed from the cDNA sequences encoding the extracellular domain of the human p55 TNFR (CD120a) and the human p75 TNFR (CD120b), which were linked to hinge and constant regions of human $IgG_1$ heavy chain, respectively using complementary primers (CP) encoding the complementary sequences. Then, concatameric TNFR-Ig fusion proteins were constructed using recombinant PCR and a complementary primer base of recombinant simple TNFR-Ig fusion proteins. For high level expression of recombinant fusion proteins, Chinese hamster ovary (CHO) cells were used with a retroviral expression system. The transfected cells produced the simple concatameric TNFR-Ig fusion proteins capable of binding TNF and inactivating it. These soluble versions of simple concantameric TNFR-Ig fusion proteins gave rise to multiple forms such as simple dimers and concatameric homodimers. Simple TNFR-1g fusion proteins were shown to have much more reduced TNF inhibitory activity than concatameric TNFR-Ig fusion proteins. Concatameric TNFR-Ig fusion proteins showed higher affinity than simple TNFR-Ig fusion proteins in a receptor inhibitor binding assay (RIBA). Additionally, concatameric TNFR-Ig fusion proteins were shown to have a progressive effect as a TNF inhibitor compared to the simple TNFR-Ig fusion proteins and conventional TNFR-Fc in cytotoxicity assays, and showed the same results for collagen induced arthritis (CIA) in mice in vivo.
Kim, Jung-Hyun;Cha, Myung-Hoon;Lee, Tae-Kon;Seung, Hyo-Jun;Park, Choon-Sik;Chung, Il-Yup
Journal of Microbiology
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제37권2호
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pp.111-116
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1999
Tumor necrosis factor receptor (TNFR)-associated factor 2 (TRAF2) is known to act as a signal transducer that connects TNFR2 to its downstream effector functions such as proliferation of thymocytes, regulation of gene expression, and cell death. TRAF2 consists of largely two domains, the N-terminal half that contains a signal-emanating region and the C-terminal half that is responsible for binding to the intracellular region of TNFR2. In this study, we examined the possible roles of TRAF2 in granulocyte-macrophage colony-stimulating factor (GM-CSF) gene expression and cell death. A truncated mutant of TRAF2 ( 2-263) that contains only a C-terminal half was generated, and transiently transfected to the A549 cell, a human lung cancer cell line, and L929 cell, a murine TNF-sensitive cell line. GM-CSF mRNA was induced in untransfected A540 cells both in dose- and time-dependent manner upon the exposure of TNF. However, neither the full length TRAF2 nor the mutant altered GM-CSF mRNA production regardless of the presence or absence of TNF. Furthermore, neither TRAF2 versions significantly changed the cytotoxic effect of TNF on L929 cells. These data suggest that TRAF2 may not be involved in the signal transduction pathway for GM-CSF gene induction and cell death mediated by TNF.
Hwang, Eun Young;Jeong, Mi Suk;Sung, Minkyung;Jang, Se Bok
Bulletin of the Korean Chemical Society
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제34권4호
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pp.1089-1095
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2013
The tumor necrosis factor-receptor 1 (TNFR1)-associated death domain protein (TRADD) contains an N-terminal TRAF binding domain and a C-terminal death domain. TRADD is known to interact directly with TNF receptor 2 (TNFR2) and the Fas-associated death domain protein (FADD), which are signal transducers that activate NF-${\kappa}B$ and induce apoptosis, respectively. To date, there has been no structural information on the TRADD and FADD death domain (DDs) complex. In this study, the death domains of TRADD and FADD were co-expressed and purified from Escherichia coli for structural characterization. We found that human TRADD (hTRADD) interacted strongly with mouse FADD (mFADD) via their DDs and interacted weakly with human FADD (hFADD)-DD. Moreover, the structures of the TRADD-DD:FADD-DD complexes were separately modeled from predicted structures in the protein data bank (PDB). The results of this study will have important applications in human diseases such as cancer, AIDS, degenerative and autoimmune diseases, and infectious diseases.
Kim, Minseong;Lee, Sang-Hee;Lee, Seunghyung;Kim, Gur-Yoo
대한의생명과학회지
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제25권1호
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pp.107-112
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2019
The corpus luteum (CL) is composed to various cells, such as luteal steroidogenic cells (LSCs), luteal thecal steroidogenic cells (LTCs), luteal endothelial cells (LECs), fibroblast, immune cells and blood cells. The life span of CL is controlled by proliferation and apoptosis of luteal cells. Therefore, this study investigated apoptotic factors in luteal cells derived from bovine CL. The CL tissues were collected from bovine ovaries and luteal cells were isolated from middle phase CL. Then, LTCs and LECs were separated according to cellular morphology from LSCs. The expression of Bax, Bcl-2, Fas and tumor necrosis factor 1 receptor (TNF1R) mRNA and protein were analyzed using quantitative RT-PCR and western blot. Results show that, Bax and TNFR1 mRNA expression were significantly increased at late group than early and middle groups, otherwise Bcl-2 were significantly decreased at late group than early group (P<0.05). Fas mRNA expression were significantly decreased in middle group compared to early and late groups (P<0.05). In addition, Bax and Bcl-2 mRNA in LTCs was lower than LSCs, Fas mRNA was higher than LSCs. The Bcl-2 protein expression was lower at LTCs than LSCs, especially Fas protein in LTCs was significantly lower than LSCs and LECs (P<0.05). Otherwise, TNFR1 protein of LTCs were similar with LSCs but higher compared with LECs. In conclusion, we suggest that the results may help understanding of apoptosis ability in luteal cells according to cell type during CL regression of estrous cycle.
Latent membrane protein 1 (LMP1) of the Epstein-Barr virus (EBV) is an integral membrane protein with six transmembrane domains, which is essential for EBV-induced B cell transformation. LMP1 functions as a constitutively active tumor necrosis factor receptor (TNFR) like membrane receptor, whose signaling requires recruitment of TNFR-associated factors (TRAFs) and leads to NF-${\kappa}B$ activation. NF-${\kappa}B$ activation by LMP1 is critical for B cell transformation and has been linked to many phenotypic changes associated with EBV-induced B cell transformation. Deletion analysis has identified two NF-${\kappa}B$ activation regions in the carboxy terminal cytoplasmic domains of LMP1, termed CTAR1 (residues 194-232) and CTAR2 (351-386). The membrane proximal C-terminal domain was precisely mapped to a PXQXT motif (residues 204-208) involved in TRAF binding as well as NF-${\kappa}B$ activation. In this study, we dissected the CTAR2 region, which is the major NF-${\kappa}B$ signaling effector of LMP1, to determine a minimal functional sequence. A series of LMP1 mutant constructs systematically deleted for the CTAR2 region were prepared, and NF-${\kappa}B$ activation activity of these mutants were assessed by transiently expressing them in 293 cells and Jurkat T cells. The NF-${\kappa}B$ activation domain of CTAR2 appears to reside in a stretch of 6 amino acids (residues 379-384) at the end of the carboxy terminus.
Background: Diabetes-related neuropathic pain frequently occurs, and the underpinning mechanism remains elusive. The periaqueductal gray (PAG) exhibits descending inhibitory effects on central pain transmission. The current work aimed to examine whether inflammatory cytokines regulate mechanical allodynia and thermal hyperalgesia induced by diabetes through the phosphoinositide 3-kinase (PI3K)-mammalian target of rapamycin (mTOR) pathway in the PAG. Methods: Streptozotocin (STZ) was administered intraperitoneally to mimic allodynia and hyperalgesia evoked by diabetes in rats. Behavioral assays were carried out for determining mechanical pain and thermal hypersensitivity. Immunoblot and ELISA were performed to examine PAG protein amounts of interleukin-1β (IL-1β), IL-6, and tumor necrosis factor-α (TNF-α), as well as their corresponding receptors in STZ rats, and the expression of PI3K/protein kinase B (Akt)/mTOR signaling effectors. Results: Increased PAG p-PI3K/p-Akt/p-mTOR protein amounts were observed in STZ-induced animals, a PI3K-mTOR pathway inhibition in the PAG attenuated neuropathic pain responses. Moreover, the PAG concentrations of IL-1β, IL-6, and TNF-α and their receptors (namely, IL-1R, IL-6R, and tumor necrosis factor receptor [TNFR] subtype TNFR1, respectively) were increased in the STZ rats. Additionally, inhibiting IL-1R, IL-6R, and TNFR1 ameliorated mechanical allodynia and thermal hyperalgesia in STZ rats, alongside the downregulation of PI3K-mTOR signaling. Conclusions: Overall, the current study suggests that upregulated proinflammatory cytokines and their receptors in the PAG activate PI3K-mTOR signaling, thereby producing a de-inhibition effect on descending pathways in modulating pain transmission, and eventually contributing to neuropathic pain.
This study was to investigated the effects of the bee venom on inhibition of cell growth via upregulation of death receptor expression in the A549 human lung cancer cells. Bee venom(1-5 ${\mu}g$/ml) inhibited the growth of A549 lung cancer cells by the induction of apoptotic cell death in a dose dependent manner. Consistent with apoptotic cell death, expression of TNFR1, Fas, death receptors(DR) 3, 4 and 6 was increased in the cells. Expression of DR downstream pro-apoptotic proteins including caspase-3, -9 and Bax was concomitantly increased, but the expression of Bcl-2, NF-${\kappa}B$ were inhibited by treatment with bee venom in A549 cells. Moreover, deletion of DR3, DR4 by small interfering RNA significantly reversed bee venom-induced cell growth inhibitory effect, whereas Apo3L strengthened anti-proliferative effect of bee venom through enhancement of DR3 expression. These results suggest that bee venom should exert anti-tumor effect through induction of apoptotic cell death in lung cancer cells via enhancement of death receptor expression, and that bee venom could be a promising agent for preventing and treating lung cancer.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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