Tumor necrosis factor-$\alpha$ (TNF-$\alpha$) and lymphotoxin-$\alpha$ (LT-$\alpha$, TNF-$\beta$) can initiate and perpetuate human diseases such as multiple sclerosis (MS), rheumatoid arthritis (RA), and insulin-dependent diabetes mellitus (IDDM). TNFs can be blocked by the use of soluble TNF receptors. However, since monomeric soluble receptors generally exhibit low affinity or function as agonists, the use of monomeric soluble receptors has been limited in the case of cytokines such as TNF-$\alpha$, TNF-$\alpha$, interleukin (IL)-1, IL-4, IL-6, and IL-13, which have adapted to a multi component receptor system. For these reasons, very high-affinity inhibitors were created for the purpose of a TNFs antagonist to bind the TNFR and trigger cellular signal by using the multistep polymerase chain reaction method. First, recombinant simple TNFR-Ig fusion proteins were constructed from the cDNA sequences encoding the extracellular domain of the human p55 TNFR (CD120a) and the human p75 TNFR (CD120b), which were linked to hinge and constant regions of human $IgG_1$ heavy chain, respectively using complementary primers (CP) encoding the complementary sequences. Then, concatameric TNFR-Ig fusion proteins were constructed using recombinant PCR and a complementary primer base of recombinant simple TNFR-Ig fusion proteins. For high level expression of recombinant fusion proteins, Chinese hamster ovary (CHO) cells were used with a retroviral expression system. The transfected cells produced the simple concatameric TNFR-Ig fusion proteins capable of binding TNF and inactivating it. These soluble versions of simple concantameric TNFR-Ig fusion proteins gave rise to multiple forms such as simple dimers and concatameric homodimers. Simple TNFR-1g fusion proteins were shown to have much more reduced TNF inhibitory activity than concatameric TNFR-Ig fusion proteins. Concatameric TNFR-Ig fusion proteins showed higher affinity than simple TNFR-Ig fusion proteins in a receptor inhibitor binding assay (RIBA). Additionally, concatameric TNFR-Ig fusion proteins were shown to have a progressive effect as a TNF inhibitor compared to the simple TNFR-Ig fusion proteins and conventional TNFR-Fc in cytotoxicity assays, and showed the same results for collagen induced arthritis (CIA) in mice in vivo.
Kim, Eun-Jung;Jeong, Mi-Suk;Hwang, Jae-Ryoung;Lee, Je-Ho;Jang, Se-Bok
Bulletin of the Korean Chemical Society
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v.31
no.7
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pp.2019-2024
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2010
Insulin-like growth factor binding protein 5 (IGFBP-5) plays an important role in controlling cell survival, differentiation and apoptosis. Apoptosis can be induced by an extrinsic pathway involving the ligand-mediated activation of death receptors such as tumor necrosis factor receptor 1 (TNFR1). To determine whether IGFBP-5 and TNFR1 interact as members of the same apoptosis pathway, recombinant IGFBP-5 and TNFR1 were isolated. The expression and purification of the full-length TNFR1 and truncated IGFBP-5 proteins were successfully performed in E. coli. The binding of both IGFBP-5 and TNFR1 proteins was detected by surface plasmon resonance spectroscopy (BIAcore), fluorescence measurement, electron microscopy, and size-exclusion column (SEC) chromatography. IGFBP-5 indeed binds to TNFR1 with an apparent $K_D$ of 9 nM. After measuring the fluorescence emission spectra of purified IGFBP-5 and TNFR1, it was found that the tight interaction of these proteins is accompanied by significant conformational changes of one or both. These results indicate that IGFBP-5 acts potently as a novel ligand for TNFR1.
Tumor necrosis factor (TNF) signaling is mediated via two distinct receptors, TNFR2 and TNFR1, which shows partially overlapping signaling mechanisms and biological roles. In the present study, TNFR2 and TNFR1 signal transduction mechanisms involved in activation of $NF{\kappa}B$ and CMV promoter-enhancer were compared with respect to their susceptibility towards inhibitors of intracellular signaling. For this, we used SW480 cells, where we have shown that TNF-signaling can occur independently through each of the two receptors. The TNFR1 response was inhibited by D609, bromophenacyl bromide (BPB), nordihydroguararetic acid (NDGA), and by sodium salicylate, while TNFR2-mediated activation of $NF{\kappa}B$ and CMV promoter-enhancer was resistant to these compounds. The signaling mechanisms known to be affected by these inhibitors include phospholipases as well as redox- and pH-sensitive intracellular components. Our results imply that TNFR2 signaling involved in $NF{\kappa}B$ activation proceeds independently of these inhibitor-sensitive signaling components, indicating distinct signaling pathways not shared with TNFR1.
Ultraviolet (UV) radiation of the sunlight, especially UVA and UVB, is the primary environmental cause of skin damage, including topical inflammation, premature skin aging, and skin cancer. Previous reports show that activation of nuclear $factor-{\kappa}B$ ($NF-{\kappa}B$) in human skin fibroblasts and keratinocytes after UV exposure induces the expression and release of proinflammatory cytokines, such as interleukin-1 (IL-1) and tumor necrosis $factor-{\alpha}$ ($TNF-{\alpha}$), and subsequently leads to the production of matrix metalloproteases (MMPs) and growth factor basic fibroblast growth factor (bFGF). Here, we demonstrated that TNFR2-SKEE and TNFR2-SKE, oligopeptides from TNF receptor-associated factor 2 (TRAF2)-binding site of TNF receptor 2 (TNFR2), strongly inhibited the interaction of TNFR1 as well as TNFR2 with TRAF2. In particular, TNFR2-SKE suppressed UVB- or $TNF-{\alpha}$-induced nuclear translocalization of activated $NF-{\kappa}B$ in mouse fibroblasts. It decreased the expression of bFGF, MMPs, and COX2, which were upregulated by $TNF-{\alpha}$, and increased procollagen production, which was reduced by $TNF-{\alpha}$. Furthermore, TNFR2-SKE inhibited the UVB-induced proliferation of keratinocytes and melanocytes in the mouse skin and the infiltration of immune cells into inflamed tissues. These results suggest that TNFR2-SKE may possess the clinical potency to alleviate UV-induced photoaging in human skin.
Kim, Jin-Ho;Kim, Ju;Jang, Yong-Suk;Chung, Gook-Hyun
BMB Reports
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v.39
no.5
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pp.586-594
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2006
Germinal centers (GCs) have been identified as site at which the somatic mutation of immunoglobulins occurs. However, somatic mutations in immunoglobulins have also been observed in animals that normally do not harbor germinal centers. This clearly indicates that somatic mutations can occur in the absence of germinal centers. We therefore attempted to determine whether or not GCs exist in TNFR1-deficient mice, and are essential for the somatic mutation of immunoglobulins, using (4-hydroxy-3-nitropheny)acetyl-ovalbumin (NP-OVA). Both wild-type and TNFR1-deficient mice were immunized with NPOVA, and then examined with regard to the existence of GCs. No typical B-cell follicles were detected in the TNFR1-deficient mice. Cell proliferation was detected throughout all splenic tissue types, and no in vivo immune-complex retention was observed in the TNFR1-deficient mice. All of these data strongly suggest that no GCs were formed in the TNFR1-deficient mice. Although TNFR1-deficient mice are unable to form GCs, serological analyses indicated that affinity maturation had been achieved in both the wild-type and TNFR1-deficient mice. We therefore isolated and sequenced several DNA clones from wild-type and the TNFR1-deficient mice. Eight out of 12 wild-type clones, and 11 out of 14 clones of the TNFR-1-deficient mice contained mutations at the CDR1 site. Thus, the wild-type and TNFR1-deficient mice were not extremely different with regard to types and rates of somatic mutation. Also, high-affinity antibodies were detected in both types of mice. Collectively, our data appear to show that affinity maturation may occur in TNFR1-deficient mice, which completely lack GCs.
Objective: The mechanism of action of fatty acid synthase (FASN) in drug tolerance of breast cancer cells with epithelial-mesenchymal transition (EMT) features was investigated. Methods: The breast cancer cell line MCF-7-MEK5 with stably occurring EMT and tumour necrosis factor-${\alpha}$ (TNF-${\alpha}$) tolerance was used as the experimental model, whereas MCF-7 acted as the control. Tumour cells were implanted into nude mice for in vivo analysis, and cerulenin was used as a FASN inhibitor. RT-PCR, real-time quantitative PCR and Western blot were employed to detect the expression of FASN, TNFR-1, TNFR-2, Wnt-1, ${\beta}$-catenin and cytC at the RNA and protein levels. Results: Compared with MCF-7, TNFR-1 expression in MCF-7-MEK5 was slightly changed, TNFR-2 was decreased, and FASN, Wnt-1, ${\beta}$-catenin and cytC were increased. The expression of Wnt-1 and ${\beta}$-catenin in MCF-7-MEK5 decreased after cerulenin treatment, whereas cytC expression increased. Conclusions: The important function of FASN in the drug tolerance of breast cancer may be due to the following mechanisms: FASN downregulated TNFR-2 expression through lipid rafts to make the cells less sensitive to TNF-${\alpha}$, and simultaneously activated the Wnt-$1/{\beta}$-catenin signalling pathway. Thus, cytC expression increased, which provided cells with anti-apoptotic capacity and induced drug tolerance.
Neuroprotective properties of lithium were evaluated by using in vivo NMDA excitotoxicity model. Systemic injection of NMDA to young mice induced neuronal apoptosis mediated by both TNFR-l and Fas ligand, and long-term lithium treatment showed noticeable neuroprotection against NMDA-induced excitotoxicity: NMDA-damaged neurons expressed several apoptosis-related gene products such as TNFR-l, Fas ligand, and caspase-3, and these gene expressions were not found in the brain of mice chronically treated with lithium. Therefore, it is highly likely that the protection offered by chronic lithium treatment occurred at far upstream of caspase activation, since the chronic lithium treatment increased the expression of Bcl-2, an important antiapoptotic gene known to act upstream of caspase cascade. Timm's histochemistry indicated the complete blockade of the NMDA insults by the treatment. There was no indication of axonal regeneration, which follows synaptic degeneration induced by neuronal damage. Furthermore, this study reports for the first time that TNFR-l and Fas ligand are involved in neuroprotective effects of lithium in NMDA-induced neuronal apoptosis.
Kim, Jung-Hyun;Cha, Myung-Hoon;Lee, Tae-Kon;Seung, Hyo-Jun;Park, Choon-Sik;Chung, Il-Yup
Journal of Microbiology
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v.37
no.2
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pp.111-116
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1999
Tumor necrosis factor receptor (TNFR)-associated factor 2 (TRAF2) is known to act as a signal transducer that connects TNFR2 to its downstream effector functions such as proliferation of thymocytes, regulation of gene expression, and cell death. TRAF2 consists of largely two domains, the N-terminal half that contains a signal-emanating region and the C-terminal half that is responsible for binding to the intracellular region of TNFR2. In this study, we examined the possible roles of TRAF2 in granulocyte-macrophage colony-stimulating factor (GM-CSF) gene expression and cell death. A truncated mutant of TRAF2 ( 2-263) that contains only a C-terminal half was generated, and transiently transfected to the A549 cell, a human lung cancer cell line, and L929 cell, a murine TNF-sensitive cell line. GM-CSF mRNA was induced in untransfected A540 cells both in dose- and time-dependent manner upon the exposure of TNF. However, neither the full length TRAF2 nor the mutant altered GM-CSF mRNA production regardless of the presence or absence of TNF. Furthermore, neither TRAF2 versions significantly changed the cytotoxic effect of TNF on L929 cells. These data suggest that TRAF2 may not be involved in the signal transduction pathway for GM-CSF gene induction and cell death mediated by TNF.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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