Tobacco mosaic virus(TMV) coat protein cDNA was transformed to Nicotiana tabacum cv. NC82 and the transgenic tobacco plants resistant to TMV infection were isolated in the next generation. The expression of TMV coat protein cDNA and genetic stability of the fifth generation of TMV resistant transgenic tobacco plants at the higher temperature were investigated. The TMV coat protein cDNA was amplified by genomic PCR in all the TMV resistant transgenic tobacco plants. The TMV coat protein expressed in the transgenic tobacco plants was detected at very low level by immunoblot hybridization. Even in tansgenic plants that showed the viral symptom only on very late sucker growth (delay type plants), the coat protein expression in the suckers was much less than that of susceptible tobacco infected with TMV. The TMV coat protein expressed in the transgenic tobacco plants was below 0.01% of total protein. Transcription and expression of the coat protein cDNA in delay type plants were observbed at high temperature (38$^{\circ}C$), and TMV replication was suppressed at both 28$^{\circ}C$ and 38$^{\circ}C$. This indicates that unlike the resistance conferred by 'N' gene. TMV resistance of transgenic tobacco plant won't break down at high temperature.
Complementary DNA of the movement protein (MP) gene of tobacco mosaic virus Korean pepper strain (TMV-KP) was synthesized from purified TMV-KP RNA by using the reverse transcription and polymerase chain reaction (PCR) system. The synthesized double stranded cDNA was cloned into the plasmid pUC9 and transformed into Escherichia coli JM110. The movement protein gene of TMV-KP of the selected clones was subjected to sequence analysis by Sanger's dideoxy chain termination method. The complete sequence of viral MP gene from TMV-KP strain was 807 nucleotides long. The nucleotide of MP gene from TMV-KP has thirteen and two nucleotide differences from TMV vulgarae (TMV-OM) and Korean (TMV-K) strains, respectively. Thus, the nucleotide sequence of TMV-KP MP gene showed higher homology of 99% with that of TMV-K MP gene.
Induction of systemic acquired resistance (SAR) against phytophthora blight and pathogenesis-related (PR) protein accumulation by TMV infection in pepper plant (Capsicum annuum cv. Nockwang) were examined to understand the mechanism of the systemic acquired resistance in pepper plant. The zoospore suspension of Phytophthora capsici was inoculated on stem of pepper plant in which TMV-pepper strain had been inoculated on fully expanded upper leaves, and thephytopha blight incidence was examined. Both disease severity and lesion length of phytophthora blight were much smaller in TMV pre-inoculated pepper plant than in uninoculated control plants. The phytophthora blight incidence was decreased about 50% in the TMV pre-inoculated pepper, compared to the uninoculated control plant at 10 days after P. capsici inoculation. Accumulation of PR1 and PR5 proteins in intercellular fluid of TMV-inoculated and uninoculated upper leaves were monitored by immuno-blot with tobacco P1b and PR5a, antibody during induction of SAR. PR1 and PR5 were detected from 24 hours after TMV inoculation in both TMV-inoculated and uninouclated upper leaves, and increased rapidly in TMV-inoculation in uninoculated upper leaves were defoliated. PR5 could be detected upto 20 days after TMV inoculation in uninoculated upper leaves. These results suggest that TMV infection induces SAR against phytophthora blight in pepper plant, and that PR proteins are accumulated very rapidly during induction of SAR and maintained for quite long time in pepper plant.
Tobacco (Nicotiana tabacum) cultivars including NC 82 and KF 114, and Datura stramonium, Physalis floridana, Gomphrena globosa, and Chenopodium spp. were added to the previous host plants tested for the further examination on the biological characteristics of tobacco mosaic virus (TMV) strains isolated from tobacco (TMV-Common), tomato (TMV-Tomato), and pepper (TMV-Pepper), In TMV-Tomato and TMV-Pepper, different symptoms were noted in P. floridana (no symptom development), and NC 82 (local lesion production on the inoculated leaves) from TMV-Common with which systemic mosaic symptoms were developed. Local lesions were developed in KF 114, D. stramonium, G. globosa, and Chenopodium spp by TMV-Common and TVM-Tomato, while no symptom was observed in KF114 and G. globosa. Also the number and size of local lesions were smaller in KF 114 than Xanthi-nc tobacco (local lesion host) infected with TMV-Tomato. Systemic necrosis was induced in Xanthi-nc and KF 114 when infected with TMV-C at high temperature, but not with the other strains.
This study was conducted to investigate the occurrence and characterization of tobacco mosaic virus(TMV) in Chinese foxglove isolated from the field of the Chonbuk province(Jinan, Jangsu, Jeongeup). TMV was detected in all three regions and confirmed positive reaction by ELISA test. In the host range test, Chenopodium amaranticola, Nicotiana glutinosa, N. tabacum cv. 'Bright yellow', N. tabacum cv. 'KY57, Datura stramonium were locally infected with the virus. The virus produced mosaic symptom on inoculated leaves of N. tabacum cv. 'Samson'. However, Chenopodium quinoa, Glycine max, Raphanus sativus, Cucumis sativus, Cucurbita moschata, Brassica rape and Lycopersion esculentum did not show any symptoms. TMV particles were revealed as a stiff rod shape by transmission electron microscopic(TEM) and measured as 300 nm in length with 18 nm in diameter. Total RNA was extracted from showing symptom loaves infected with TMV and the reverse transcriptionpolymerase chain reaction (RTPCR) obtained 531 bp DNA product of RNA with specific primer used. The capsid protein of TMVRE showed higher amino acid sequence homology(97.7%) with TMVTo than with TMVP(72.2%). The capsid protein of TMV152 showed same amino acid sequence homology with TMVF. The result of comparison of nucleotides sequence homology between TMVRE strain and other TMV strain showed 94% homology with others except TMVP(67.3%) and TMV C(68.6%).
During the screening or antiviral substances having inhibitory effect on tobacco mosaic virus(TMV) infection to tobacco plants, we found that a bacterial isolate, KTB61, which was identified as a Pseudomonas sp., strongly inhibited the formation of TMV local lesions. When the culture filtrate from KTB61 was applied on the upper surface of leaves of N. tabaccum Xanthi-nc tobacco at the same time of or 24 hours before TMV inoculation, almost complete inhibition was achieved. Incidence of systemic TMV infection to the susceptible tobacco cultivar, NC82, was reduced by 95% when TMV was inoculated onto the upper surface of leaves 24 hours after spraying the culture filtrate. Also 75∼80% of inhibitory effect was obtained by the inoculation of TMV onto the under surface of the leaves treated with culture filtrate 24 hours beforehand. In field trials, the TMV infection was reduced by 96.5% when the tobacco seedlings, N. tabaccum cv. NC82, were soaked with culture filtrate before transplanting.
Biological and serological assays were conducted with overwintered roots of tobacco and red pepper, capsule of tobacco, and several species of weeds in order to check whether those tissue could serve as a natural source of effection of tobacco mosaic virus (TMV) to field tobacco plants in the spring. Also in this study TMV occurrence was surveyed at several different stages of tobacco growth to see if a natural source discussed above has anything to do with actual appearance of TMV at fields. The results are as follows 1) The most critical period for TMV infection was the time when tobacco plants were handled with human hands; in the case of the modified polyethylene film mulching system it was at transplantation and when this modified system was changed to the regular system, and, in the case of the regular polyethylene film mulching system, the time was at transplanting and at primary sucker control by hands. 2) Roots of tobacco and red pepper were found to carry infective TMV even after overwintering in the soil. 3) Out of 38 weed species belonging to 22 families examined, only two species, Solanum nigrum and Physalis alkekengi var. franchetii were shown to be naturally infected with TMV. 4) TMV was isolated from capsule tissue, but not from immature anther of tobacco.
Wasabies showing mosaic symptoms were collected and extracted for virus purification. Tobacco mosaic virus (TMV) was identified as causal agent by electron microscopy and nucleic acid and coat protein analyses. TMV strains were determined by enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA). TMV was identified as W and C strain in wasabi. The results of host reaction indicated that this virus induced local lesions on Nicotiana tabacum cv. Bright Yellow and N. glutinosa, leaf spots on Chenopodium amaranticolor and mosaic symptoms on wasabi. Rot shape virus particles were observed and was about 300 nm in length. About 6.5 kb single RNA molecule was observed from extracted viral RNA sample and 26 KDa coat protein was detected in denatured acrylamide gel. Infection ratio of TMV was 8% for the first cultivation year, but was 22% for the second year when TMV-W antiserum was used. The results of this experiment showed that infection ratios of both TMV-W and TMV-C strains were higher compared to that of TMV-P strain.
KF 116 was TMV resistant tobacco plant and KB 301 was PVY resistant plant transformed with TMV CP gene and PVY CP gene, respectively. These resistant plants were cross-fertilized and the 4 lines of the TMV-PVY resistant plants were selected from F1 hybrid plants. The rate of PVY-resistant plant in these hybrids was 100 percent and that of TMV-resistant plants including delay type was 90-98 percent at 4 weeks after virus inoculation. It was confirmed that the TMV and PVY CP genes were integrated into the genome of hybrid plants by genomic PCR, and Southern blot hybridization. The genome of F1 hybrid plants had one copy and 4 copies of PVY-CP gene and TMV-CP gene, respectively, and CaMV 35S promoters were not methylated, regardless of the difference symptom development to TMV.
Kim, Joung-Soo;Kim, Jae-Hyun;Choi, Gug-Seoun;Chae, Soo-Young;Kim, Hyun-Ran;Joung, Bong-Nam;Choi, Yong-Mun
Research in Plant Disease
/
v.9
no.2
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pp.89-93
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2003
An isolate of Tobacco mosaic virus (TMV) was isolated from potato cultivar ‘Chubak’ showing vein clearing and mild mosaic at Namhae in Korea. This isolate, TMV-St, was differentiated from other tobamoviruses based on biological properties, serological relationships and nucleotide sequence analyses of coat protein genes. TMV-St caused typical symptoms on four indicator plants as compared to the tobamovirus of TMV-U1, Pepper mild mottle virus (PMMoV), and Tomato mosaic virus (ToMV), which caused economic losses in Solanaceous vegetables, tomato, pepper, and eggplant. Remarkably, the TMV-St induced distinctly different symptom of systemic chlorotic spots on Chenophodium murale. On C. murale, Gomphorena globosa, and Nic-otiana rustica, the four viruses were classed by the virulence of systemic or local infections. In serological test TMV-St antiserum showed a precipitation line with each other tabamovirus. The CP gene of TMV-St contain 477 nucleotides, and the nucleotides sequence was the most similar to that of TMV-U1.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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