Porphyromonas gingivalis is a major etiologic agent of chronic periodontitis and cytokines produced by macrophages play important roles in the pathogenesis of periodontal diseases. In this study we investigated the cytokine response of phorbol myristate acetatedifferentiated THP-1 cells exposed to P. gingivalis. Compared with the prominent cell wall components of P. gingivalis (lipopolysaccharide and the major fimbrial protein FimA), live P. gingivalis stimulated much higher levels of cytokine production. In addition, whereas low multiplicity of infection challenges (MOI=10) of P. gingivalis 381 stimulated high levels of monocyte chemoattractant protein-1 (MCP-1), tumor necrosis factor-${\alpha}$ (TNF-${\alpha}$), interleukin-6 (IL-6), and IL-1${\beta}$, high dose challenges with this bacterium (MOI = 100) resulted in a substantially diminished production of MCP-1 and IL-6. Moreover, high MOI P. gingivalis challenges achieved only low levels of induction of MCP-1 and IL-6 mRNA. The decreased production of MCP-1 and IL-6 appeared to be mediated by P. gingivalis proteases, because high MOI challenges with congenic protease mutant strains of this microorganism (MT10 and MT10W) did not result in a diminished production of MCP-1 and IL-6. Similar to its protease mutant strains, leupeptin (a protease inhibitor)- treated P. gingivalis at high doses induced high levels of MCP-1 production. To examine the mechanisms underlying the diminished production of MCP-1 by P. gingivalis proteases, the activation of mitogen-activated protein (MAP) kinases and NF-${\kappa}$B was compared between the 381 and MT10W strains. Whilst high doses of both 381 and MT10W similarly activated the three members of the MAP kinase family, the DNA binding activity of NF-${\kappa}$B, as revealed by gel shift assays, was greatly increased only by MT10W. Taken together, our data indicate that P. gingivalis stimulates the production of high levels of TNF-${\alpha}$, IL-1${\beta}$, IL-6, and MCP-1 but that high dose challenges with this bacterium result in a diminished production of MCP-1 and IL-6 via the protease-mediated suppression of NF-${\kappa}$B activation in THP-1 macrophagic cells.
Porphyromonas gingivalis (Pg), Aggregatibacter actinomycetemcomitans (Aa), Tannerella forsythia (Tf), Prevotella intermedia (Pi), and Fusobacterium nucleatum (Fn) are major periodontal pathogens. Lipopolysaccharides (LPSs) from periodontal bacteria play an important role in periodontal pathogenesis by stimulating host cells to produce inflammatory cytokines. In this study, highly pure LPSs from the five major periodontopathogens were prepared, and their monocyte chemoattractant protein-1 (MCP-1) and tumor necrosis factor-α (TNF-α)-inducing activities were compared in human umbilical vein endothelial cells (HUVECs) and THP-1 macrophagic cells, respectively. In HUVECs, LPSs from Aa and Fn were potent stimulators for MCP-1 induction; however, LPSs from Pg, Pi, and Tf were much weaker MCP-1 inducers. In THP-1 cells, LPSs from Pg, Aa, and Fn were relatively strong inducers of TNF-α, whereas LPSs from Pi and Tf produced little activity. The Toll-like receptor (TLR)2/TLR4 dependency of various LPSs was also determined by measuring NF-κB reporter activity in TLR2- or TLR4-expressing 293 cells. LPSs from Aa, Fn, and Tf stimulated only TLR4; however, LPSs from Pg and Pi stimulated both TLR2 and TLR4. These results suggest that LPSs from major periodontal bacteria differ considerably in their cell-stimulating activity.
The expression of interleukin-1α (IL-1α) is elevated in monocytic cells, such as monocytes and macro-phages, within atherosclerotic arteries, yet the cellular molecules involved in cytokine upregulation remain unclear. Because peptidoglycan (PG), a major component of gram-positive bacterial cell walls, is detected within the inflammatory cell-rich regions of atheromatous plaques, it was investigated if PG contributes to IL-1α expression in monocytes/macrophages. Exposure of THP-1 monocytic cells to PG resulted in elevated levels of IL-1α gene transcripts and increased secretion of IL-1α protein. The transcription and secretion of IL-1α were abrogated by OxPAPC, an inhibitor of TLR2/4, but not by polymyxin B that inhibits lipopolysaccharide-induced TLR4 activation. To understand the molecular mechanisms of the inflammatory responses due to bacterial pathogen-associated molecular patterns (PAMPs) in diseased arteries, we attempted to determine the cellular factors involved in the PG-induced upregulation of IL-1α expression. Pharmacological inhibition of cell signaling pathways with LY294002 (a PI3K inhibitor), Akti IV (an inhibitor of Akt activation), rapamycin (an mTOR inhibitor), U0126 (a MEK inhibitor), SB202190 (a p38 MAPK inhibitor), SP6001250 (a JNK inhibitor), and DPI (a NOX inhibitor) also significantly attenuated the PG-mediated expression of IL-1α. These results suggest that PG induces the monocytic or macrophagic expression of IL-1α, thereby contributing to vascular inflammation, via multiple signaling molecules, including TLR2, PI3K/Akt/mTOR, and MAPKs.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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