Thermus caldophilus GK24 was selected as sources of thermostable $\beta$-galactosidase from a survey of genus Thermus. T. caldophilus GK24 (Tca) $\beta$-galactosidase was found to be inducible. The enzyme was optimally active at 75$\circ$C. Enzyme induction was achieved by addition of lactose, galactose and cellobiose to basal media. The addition of glucose to culture media had a repressive effect on further enzyme synthesis. T caldophilus GK24 was tested for production of $\beta$-galactosidase by addition of various concentration of lactose, galactose and cellobiose to standard media. Cellobiose was found to be effective for the $\beta$-galactosidase induction. The optimal induction medium for production of $\beta$-galactosidase was composed of 0.2% cellobiose, 0.3% bactotryptone, 0.3% yeast extract, basal salts and Tris/HCI(pH 7.8). The activity of the enzyme in the optimal induction medium increased nearly 16.5-fold compared to the standard medium. Tca $\beta$-galactosidase was detected when cell extracts was subjected to electrophoresis in a nondenaturing polyacryamide gel and stained for activity with 6-bromo-2-naphtyl-$\beta$-D-galactopyranoside(BNG).
Gene for lactose catabolism in Lactobacillus casei SW-M1 was encoded by a 60Kb metabolic plasmid. A derivative of only 10kb, pPlac 15 of recombinant plasmid, was constructed by introducing into pBR322 and was cloned into E. coli using restriction endonuclease Pst I. A 10kb insery DNA in plasmid pBR322 was identified as a gene encoded phospho-$\beta$-galactosidase by the determination of enzyme activity. Phospho-$\beta$-galactosidase was apparently expressed in E. coli. The enzyme activities of cell-free extract from transformant E. coli HB101 carrying pPLac 15 DNA were not different from that of L. casei as a donor strain on the basis of enzyme properites. However, specific activity of phospho-$\beta$-galactosidase in the cloned strain with Lac $Y^{-}$ phenotype of E. coli HB101 was lower than that in L. casei strain.
Kim, Tea-Youn;Lee, Jung-Min;Chang, Hae-Choon;Chung, Dae-Kyun;Lee, Jong-Hoon;Kim, Jeong-Hwan;Lee, Hyong-Joo
Journal of Microbiology and Biotechnology
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제9권2호
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pp.201-205
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1999
The effects of growth temperature and a carbon source on the expression of $\beta$-galactosidase gene of Lactococcus lactis ssp. lactis ATCC 7962 (L. lactis 7962) were investigated. At $25^{\circ}C$, L. lactis 7962 had a higher $\beta$-galactosidase activity than cells grown at $30^{\circ}C$ or $37^{\circ}C$, although cells grew most quickly at $37^{\circ}C$ The highest $\beta$-galactosidase activity was observed in cells grown in M17 with lactose (l %) followed by cells grown in a galactose (1 %) medium. L. lactis 7962 exhibited the minimum $\beta$-galactosidase activity in glucose media, indicating catabolite repression. When the cellular levels of $\beta$-galactosidase mRNA were examined using slot blot hybridization, no significant differences were observed between cells grown at $25^{\circ}C$ and cells at $30^{\circ}C$ or $37^{\circ}C$ in the same media. This suggests that the quantity of $\beta$-galactosidase mRNA may not be the reason for the higher $\beta$-galactosidase activities of L. lactis 7962 at $25^{\circ}C$ The level of ccpA (Catabolite Control Protein) transcript remained almost constant during the exponential growth phase irrespective of a carbon sourse.
가정에서 제조된 청국장으로부터 lactose를 glucose와 galactose로 가수분해하는 ${\beta}$-galactosidase의 생산균을 분리하였다. 분리균 YB-1105는 형태적 특성, 생화학적 성질 및 16S rRNA 유전자 염기서열에 근거하여 Bacillus licheniformis로 확인되었다. B. licheniformis YB-1105의 배양상등액과 균체파쇄액에서 모두 ${\beta}$-galactosidase 활성이 관찰되었으며 이들은 모두 pH 6.5와 $50^{\circ}C$의 반응조건에서 paranitrophenyl-${\beta}$-D-galactopyranoside의 가수분해 활성이 최대로 나타났다. 그러나 균체파쇄상등액에 비해 배양상등액의 ${\beta}$-galactosidase 활성은 산성 pH와 고온에서 크게 영향을 받았다. 한편 두 분획의 가수분해 활성은 낮은 농도의 galactose에 의해도 급격하게 저해되었으나, glucose와 mannose는 고농도에 의해서는 약하게 저해를 받는 것으로 확인되었다.
This paper investigates the production and optimization of $\beta$-galactosidase enzyme using synthetic medium by Kluyveromyces lactis NRRL Y-8279 in stirred tank bioreactor. Response surface methodology was used to investigate the effects of fermentation parameters on $\beta$-galactosidase enzyme production. Maximum specific enzyme activity of 4,622.7 U/g was obtained at the optimum levels of process variables (aeration rate 2.21 vvm, agitation speed 173.4 rpm, initial sugar concentration 33.8 g/L, incubation time 24.0 hr). The optimum temperature and pH of the $\beta$-galactosidase enzyme produced under optimized conditions were $37^{\circ}C$ and pH 7.0, respectively. The enzyme was stable over a pH range of 6.0-7.5 and a temperature range of $25-37^{\circ}C$. The $K_m$ and $V_{max}$ values for O-nitrophenol-$\beta$-D-galactopyranoside (ONPG) were 1.20 mM and $1,000\;{\mu}mol/min{\cdot}mg$ protein, respectively. The response surface methodology was found to be useful in optimizing and determining the interactions among process variables in $\beta$-galactosidase enzyme production. Hence, this study fulfills the lack of using mathematical and statistical techniques in optimizing the $\beta$-galactosidase enzyme production in stirred tank bioreactor.
Yigit, Nalan Ozgur;Koca, Seval Bahadir;Isil, Behire;Diler, Ibrahim
Asian-Australasian Journal of Animal Sciences
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제27권5호
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pp.700-705
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2014
A 12-week feeding trial was conducted with 87 g rainbow trout to evaluate the effects on growth performances, feed efficiency and nutrient digestibility of adding ${\beta}$-mannanase and ${\alpha}$-galactosidase enzymes, solely or in combination. Seven diets were prepared by adding ${\beta}$-mannanase, ${\alpha}$-galactosidase and mixed enzyme at two different levels (1 g/kg and 2 g/kg) to control diet (without enzyme) including soybean meal. Mixed enzymes (1 g/kg, 2 g/kg) were prepared by adding ${\beta}$-mannanase and ${\alpha}$-galactosidase at the same doses (0.5+0.5 g/kg and 1+1 g/kg). At the end of the experiment, addition of ${\beta}$-mannanase, ${\alpha}$-galactosidase and mixed enzyme to diet containing 44% soybean meal had no significant effects on growth performance and gain:feed (p>0.05). In addition, adding ${\beta}$-mannanase, ${\alpha}$-galactosidase and mixed enzyme in different rations to trout diets had no affect on nutrient digestibility and body composition (p>0.05).
A bacterium producing ${\alpha}$-galactosidase (${\alpha}$-$\small{D}$-galactoside galactohydrolase, EC 3.2.1.22) was isolated. The isolate, KM-1 was identified as Bacillus coagulans based on its 16S rRNA sequence, morphology, and biochemical properties. ${\alpha}$-Galactosidase activity was detected the culture supernatant of B. coagulans KM-1. The bacterium showed the maximum activity for hydrolyzing para-nitrophenyl-${\alpha}$-$\small{D}$-galactopyranoside (pNP-${\alpha}Gal$) at pH 6.0 and $50^{\circ}C$. It hydrolyzed oligomeric substrates such as melibiose, raffinose, and stachyose liberating a galactose residue, indicating that the B. coagulans KM-1 ${\alpha}$-galactosidase hydrolyzed ${\alpha}$-1,6 linkage. The results suggest that the decreased stachyose and raffinose contents in fermented soybean meal are due to the ${\alpha}$-galactosidase activity.
$\beta$-galactosidase를 강력하게 생산하는 호알칼리성, 고온성 세균 TA-11를 부엽토에서 분리하여 Bacillus sp. TA-11로 동정 하였다. Bacillus sp. TA-11에 의한 $\beta$-galactosidase 생산은 lactose 1.5%, peptone과 yeast ext. 각각 0.4%, $MgSO_4$ 0.2%, $NH_4$CL 0.05% 및 NaCl 0.2% 등을 함유한 배지의 pH를 10.0으로 하여 시험균을 접종한후 $50^{\circ}C$에서 2일간 진탕배양 하였을 때 가장 좋았다.
전세포 효소 고정화 캡슐을 제조하기 위하여 Eschericia coli를 calcium alginate 캡슐내부에 접종하고 배양하였다. E. coli의 캡슐내부 건조중량이 1OOg/L에 달하였다. 생산배지에서 배양하는 동안 캡슐내부에 축적되는 미생물의 양이 많을수록 캡슐 내부에 축적되는 $\beta$galactosidase의 활성도 높았다. 생산배지에 금속이온 $Zn^{+2}를 2{\times}10^{-4} M $ 첨가함으로써 캡슐내부에 축척되는 ${\beta}$-galactosidase의 활성 을 25% 증가시킬 수 있었다. 캡슐제조시 해바라기유를 부피비로 2% 첨가함으로써 캡슐내부에 축적되 는 ${\beta}$-galactosidase의 활성을 10% 증가시킬 수 었었다. 부피산소전달계수, $k_La가 2.55h^- $ 안 플라스크 대신 $k_La가 82h^- $인 concentric air lift reactor 내에서 고정화 E. coli를 배양호농로써 캡슐내부의 전세포${\beta}$-galactosidase의 활성을 86% 증가시킬 수 있었다.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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