Lee Jin Ha;Park Jun Seong;Park Hyen Joung;Cho Jae Young;Choi Jeong Sik;Kim Do Man
KSBB Journal
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v.19
no.5
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pp.363-367
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2004
Leuconostoc mesenteroides NRRL B-1149 produces various glucoseyltransferases for the synthesis of dextran, levan and glucose-1-phosphate using sucrose as a substrate. A sucrose phosphorylase (1149SPase) was purified from L. mesenteroides NRRL B-1149 culture by using hollow fiber filtration (30 kDa cut off), Toyopearl DEAE 650 M column chromatography and following two times of DEAE-Sepharose column chromatographies. The specific activity of the purified 1149SPase was 25.7 (U/mg) with $16\%$ yield. The 1149SPase showed a molecular size of 56 kDa on denatured $10\%$ SDS-PAGE. The N-terminal amino acid sequence of the enzyme was MEIQNKAM. The optimum pH and temperature of this enzyme were 6.2~6.5 and 37^{circ}C, respectively. It had an apparent K_{m} of 6.0 mM and K_{cat} of 1.62/s for sucrose. 1149SPase crystal was formed by hanging drop diffusion technique using 20 mM calcium chloride dihydrate, 100 mM sodium acetate trihydrate pH 4.6 and $30\%$ 2-methyl-2,4-pentanediol as vaporizing and reservation solution. The 1149SPase catalyzes transferring of glucose from isomaltose or sucrose to salicin and salicyl alcohol by disproportionation reaction or acceptor reaction and synthesized two acceptor products, respectively.
Bacillus sp. KMU-991 was isolated from Oslo city soils at Norway and shown a strong antifungal activity on red-pepper anthracnose, Colletotrichum gloeosporioides. Bacillus sp. KMU-991 produced a maximum level of antifungal substrate under aerobic incubation at $30^{\circ}C$, 180 rpm for 48 hours in TSB medium(initial pH 7.0) containing 1.0% mannitol and 1.0% ammonium chloride. Precipitate of culture broth by $30{\sim}60%$ ammonium sulfate precipitation exhibited strong antifungal activity against C. gloeosporioides KACC 40804. Butanol extract of cultured broth also shown fungal growth inhibitory activity against Fusarium oxysporum f. sp. radicus-lycopersici KACC 40537, Rhizoctonia solani AG-4 KACC 40142, Botrytis cinerea KACC 40573, Colletotrichum orbiculare KACC 40808, and Phytophthora cambivora KACC 40160 by agar diffusion method.
A marine bacterium for producing an collagenolytic protease was isolated from the southern sea of Korea and identified as Vibrio vulnificus and named as Vibrio vulnificus CYK279H. This strain producing an collagenolytic protease was showed high activity toward collagen and gelatin as substrate. The optimum initial pH, NaCl, and temperature for cell growth and protease production was 7.5, 2.0% and 25$^{\circ}C$, respectively. Optimization for collagenolytic protease production was composed of 0.3% D-galactose, 0.6% yeast extract, 4.0% gelatin, 0.2% (NH$_4$)$_2$SO$_4$, and 0.2 mM ferric citrate in artificial sea water. The maximum protease production was required gelatin and yeast extract. The collagenolytic protease production by Vibrio vulnificus CYK279H reached a maximum of 73 unit/l after the cultivation for 18 h under the optimized medium.
An enzyme ${\beta}$-galactosidase or ${\beta}$-galactohydrolase [EC3.2.1.23], commonly called lactase, mediates galacto-oligosaccharide (GOS) synthesis under conditions of high substrate concentrations. Also, lactase hydrolyzes ${\beta}$($1{\rightarrow}4$) lactose into glucose and galactose, the latter is successively transferred to free lactose to make various oligosaccharides via transgalactosylation. GOS is non-digestible to human digestive enzymes and has been used as a functional prebiotics. Among the 24 lactic acid bacteria (LAB) strains used, Lactobacillus paracasei YSM0308 was selected based on its exhibition of the highest ${\beta}$-galactoside hydrolysis activity, and the crude lactase was prepared for examination of reaction conditions to affect the GOS synthesis. Lactase activity was measured with a spectrophotometer using ONPG (o-nitropheyl ${\beta}$-D-galactopyranoside) method. Lactase activity was not detected in the culture supernatant and was mostly present in the cell pellet after centrifugation. Activity of the crude lactase preparation ranges from102 to 1,053 units/mL, with the highest activity determined for L. paracasei YSM0308. Optimal conditions for GOS synthesis are as follows: concentration of whey powder, pH, temperature, and time were 30%, pH 6.5-7.0, $30^{\circ}C$, and 4 h, respectively. The final GOS concentration was 19.41% (w/v) by the crude YSM0308 lactase, which was obtained from strain YSM0308 grown in the 10% (w/v) reconstituted whey-based medium.
High-molecular-weight ${\beta}-glucosidase$ (EC 3.2.1.21) was purified from the culture filtrate of Trichoderma koningii through a four-step procedure including chromatography on Bio-Gel P-150, DEAE-Sephadex A-50 and SP-Sephadex C-50; and chromatofocusing on Polybuffer exchanger PBE 94. The molecular weight of the enzyme was determined to be about 101,000 by SDS-polyacrylamide gel electrophoreses, and the isoelectric point was estimated to be 4.96 by analytical isoelectric focusing. The temperature optimum for activity was about $55^{\circ}C$, and the pH optimumwas 3.5. The enzyme was considerably thermostable, for no loss of activity was observed when the enzyme was preincubated at $60^{\circ}C$ for 5h. Km values for cellobiose, gentiobiose, sophorose, salicin and $p-nitrophenyl-{\betha}-D-glucoside$ were 99.2, 14.7, 7.09, 3.15 and 0.70 mM, respectively, which indicates that the enzyme has much higher affinity towards $p-nitrophenyl-{\betha}-D-glucoside$ than towards the other substrates, especially cellobiose. Substrate inhibition by $p-nitrophenyl-{\betha}-D-glucoside$ and salicin was observed at the conecntrations exceeding 5mM. Gluconolactone was a powerful inhibitor against the action of the enzyme on $p-nitrophenyl-{\betha}-D-glucoside\;(K_i\;37.9\;{\mu}M)$, wherease glucose was much less effective ($K_i$ 1.95 mM). Inhibition was of the competitive type in each case. Transglucosylation activity was detected shen the readtion products formed from $p-nitrophenyl-{\betha}-D-glucoside$ by the enzyme were analysed using high-performance liquid chromatography.
This was performed to improve the working conditions of oyster mushroom cultivation on bed using rice straw of which binding and cutting procedure need a lot of time. There was a little difference in physiochemical components between rice straw and cotton waste C/N ration of cotten waste was, however, similar to rice straw as 84-85. If is feasible to use as substrate material. The average yield of a net was 1450g in six frustration harvest, when the size of an onion net was $35{\times}30cm$, mixture ratio of rice straw to cotton waste was 40:60(V/V). Cultivation method using an onion net saved 3 days for preparation, 4 hours for inoculation compared to normal bed cultivation. This method was analysed to give 5% economical benefit.
In this study, we attempted to find substitute materials, distillers residue of cassava, alfalfa pellet, and distillers residue of corn, for cotton seed meal in bottle cultivation of Pleurotus ostreatus. In all treatments, the total carbon content was comparable with the exception of T4, and the total nitrogen content of T3 was similar to the control group, and C/N ratio of T4 was higher than other treatments. The diameter of plieus was the largest in T2, and the diameter of stipe was the largest in T2 and T4. And the length of stipe was largest in T1 and T2, and the most number of available stipes was in T1 and T3. The yield and bio-efficiency of fruit-body by residue of corn with soluble treatment(T3), were similar to the control of P. ostreatus. Therefore, it was suggested that residue of corn was substituted for cotton seed meal for cultivation of P. ostreatus.
The human genome contains approximately 13 orphan cytochrome P450 (P450, CYP) genes, of which the apparent function or substrate has not been identified. However, they seem to possess their own biological relevance in some tissues or developmental stages. Here, we characterized the heterologously expressed CYP2W1, an orphan P450 enzyme. The recombinant CYP2W1 protein containing a $6{\times}$(His)-tag at Nterminus has been expressed in Escherichia coli and purified. Expression level of CYP2W1 holoenzyme was around 500 nmol P450 holoenzyme per liter culture medium. The reduced CO difference spectrum of CYP2W1 showed a maximum absorption at 449 nm. CYP2W1 indicated the significant induction to bioactivate Trp-P-1, MeIQ, and IQ in E. coli DJ701 tester strain. However, the bioactivation of B[$\alpha$]P, and NNK by CYP2W1 was relatively low. The model structure of CYP2W1 suggested the characteristic P450 folds with the lengths and orientations of the individual secondary elements. The F-G loop is situated on the distal side of heme to accommodate the flexibility of active site of CYP2W1. These studies can provide useful information for the finding of its biological roles and structure-function relationships of an orphan CYP2W1 enzyme.
The SCO0284 gene of Streptomyces coelicolor A3(2) is predicted to encode an α-galactosidase (680 amino acids) belonging to glycoside hydrolase family 27. In this study, the SCO0284 coding region was cloned and overexpressed in Streptomyces lividans TK24. The mature form of SCO0284 (641 amino acids, 68 kDa) was purified from culture broth by gel filtration chromatography, with 83.3-fold purification and a yield of 11.2%. Purified SCO0284 showed strong activity against p-nitrophenyl-α-D-galactopyranoside, melibiose, raffinose, and stachyose, and no activity toward lactose, agar (galactan), and neoagarooligosaccharides, indicating that it is an α-galactosidase. Optimal enzyme activity was observed at 40℃ and pH 7.0. The addition of metal ions or EDTA did not affect the enzyme activity, indicating that no metal cofactor is required. The kinetic parameters Vmax and Km for p-nitrophenyl-α-D-galactopyranoside were 1.6 mg/ml (0.0053 M) and 71.4 U/mg, respectively. Thin-layer chromatography and mass spectrometry analysis of the hydrolyzed products of melibiose, raffinose, and stachyose showed perfect matches with the masses of the sodium adducts of the hydrolyzed products, galactose (M+Na, 203), melibiose (M+Na, 365), and raffinose (M+Na, 527), respectively, indicating that it specifically cleaves the α-1,6-glycosidic bond of the substrate, releasing the terminal D-galactose.
Previously, an extracellular ${\alpha}$-amylase (BKA) had been purified from the culture of Bacillus sp. KR8104. Subsequently, the crystal structure of the active enzyme revealed a 422 amino acids polypeptide. In this study, the bka was cloned into E. coli, which encoded a polypeptide of 659 amino acids including two additional fragments: one 44 residues N-terminal fragment and another 193 residues C-terminal fragment. In order to investigate the role of the C-terminal fragment, two constructs with and without this region [$BKA{\Delta}$(N44) and $BKA{\Delta}$(N44C193)] were designed and expressed in E. coli BL21. The optimum pH, thermal stability, and the end-products of starch hydrolysis were found to be similar in both constructs. The $K_m$ and $V_{max}$ values for $BKA{\Delta}$(N44) were lower than $BKA{\Delta}$(N44C193), using either starch or ethylidene-blocked 4-nitrophenylmaltoheptaoside as a substrate.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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