Chondroitin sulfate proteoglycan (CSPG) inhibits neurite outgrowth of various neuronal cell types, and CSPG-associated inhibition of neurite outgrowth is mediated by the Rho/ROCK pathway. Mesenchymal stromal/stem cells (MSCs) have the potential to differentiate into neuron-like cells under specific conditions and have been shown to differentiate into neuron-like cells by co-treatment with the ROCK inhibitor Y27632 and the hypoxia condition mimicking agent $CoCl_2$. In this study, we addressed the hypothesis that a ROCK inhibitor might be beneficial to regenerate neurons during stem cell therapy by preventing transplanted MSCs from inhibition by CSPG in damaged tissues. Indeed, dose-dependent inhibition by CSPG pretreatment was observed during morphological changes of Wharton's jelly-derived MSCs (WJ-MSCs) induced by Y27632 alone. The formation of neurite-like structures was significantly inhibited when WJ-MSCs were pre-treated with CSPG before induction under Y27632 plus $CoCl_2$ conditions, and pretreatment with a protein kinase C inhibitor reversed such inhibition. However, CSPG treatment resulted in no significant inhibition of the WJ-MSC morphological changes into neuron-like cells after initiating induction by Y27632 plus $CoCl_2$. No marked changes were detected in expression levels of neuronal markers induced by Y27632 plus $CoCl_2$ upon CSPG treatment. CSPG also blocked the morphological changes of human bone marrow-derived MSCs into neuron-like cells under other neuronal induction condition without the ROCK inhibitor, and Y27632 pre-treatment blocked the inhibitory effect of CSPG. These results suggest that a ROCK inhibitor can be efficiently used in stem cell therapy for neuronal induction by avoiding hindrance from CSPG.
Human embryonic stem (ES) cells are derived from the inner cell mass of the preimplantation embryo and have the capacity to differentiate into various types of cells in the body. Hence, these cells may potentially be an indefinite source of cells for cell therapy in various degenerative diseases including neuronal disorders. For clinical applications of human ES cells, directed differentiation of these cells would be necessary. The objective of this study is to develop the culture condition for the expansion of neural precursor cells derived from human ES cells. Human ES cells were able to differentiate into neural precursor cells upon a stepwise culture condition. Neural precursor cells were propagated up to 5000-fold in cell numbers over 12-week period of culture and evaluated for their characteristics. Expressions of sox1 and pax6 transcripts were dramatically up-regulated along the differentiation stages by RT-PCR analysis. In contrast, expressions of oct4 and nanog transcripts were completely disappeared in neural precursor cells. Expressions of nestin, pax6 and sox1 were also confirmed in neural precursor cells by immunocytochemical analysis. Upon differentiation, the expanded neural precursor cells differentiated into neurons, astrocytes, and oligodendrocytes. In immunocytochemical analysis, expressions of type III ${\beta}$-tubulin and MAP2ab were observed Presence of astrocytes and oligodendrocytes were also confirmed by expressions of GFAP and O4, respectively. Results of this study demonstrate the feasibility of long-term expansion of human ES cell-derived neural precursor cells in vitro, which can be a potential source of the cells for the treatment of neurodegenerative disorders.
Min, Joongkee;Kim, Jeong Hoon;Choi, Kyoung Hyo;Yoon, Hyung Ho;Jeon, Sang Ryong
Journal of Korean Neurosurgical Society
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v.60
no.4
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pp.404-416
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2017
Objective : Functional and neural tissue recovery has been reported in many animal studies conducted with stem cells. However, the combined effect of cytokines and stem cells has not yet been adequately researched. Here, we analyzed the additive effects of granulocyte colony-stimulating factor (GCSF) on adipose-derived stem cells (ADSCs) infusion in the treatment of acute spinal cord injury (SCI) in rats. Methods : Four days after intrathecal infusion tubes implantation in Sprague-Dawley rats, SCI was induced with an infinite horizon impactor. In the Sham group (n=5), phosphate-buffered saline was injected 3, 7, and 14 days after SCI. GCSF, ADSCs, and ADSCs with GCSF were injected at the same time in the GCSF (n=8), ADSC (n=8), and ADSC+GCSF groups (n=7), respectively. Results : The ADSC and ADSC+GCSF groups, but not the GCSF group, showed significantly higher Basso-Beattie-Bresnahan scores than the Sham group during 8 weeks (p<0.01), but no significant difference between the ADSC and ADSC+GCSF groups. In the ladder rung test, all four groups were significantly different from each other, with the ADSC+GCSF group showing the best improvement (p<0.01). On immunofluorescent staining (GAP43, MAP2), western blotting (GAP43), and reverse transcription polymerase chain reaction (GAP43, nerve growth factor), the ADSC and ADSC+GCSF groups showed higher levels than the Sham and GCSF groups. Conclusion : Our analyses suggest that the combination of GCSF and ADSCs infusions in acute SCI in the rat does not have a significant additive effect. Hence, when combination agents for SCI stem cell therapy are considered, molecules other than GCSF, or modifications to the methodology, should be investigated.
Kim, Yeon-Ju;Ji, Seung Taek;Kim, Da Yeon;Jung, Seok Yun;Kang, Songhwa;Park, Ji Hye;Jang, Woong Bi;Yun, Jisoo;Ha, Jongseong;Lee, Dong Hyung;Kwon, Sang-Mo
Molecules and Cells
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v.41
no.6
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pp.582-590
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2018
Endothelial progenitor cells (EPCs) and outgrowth endothelial cells (OECs) play a pivotal role in vascular regeneration in ischemic tissues; however, their therapeutic application in clinical settings is limited due to the low quality and quantity of patient-derived circulating EPCs. To solve this problem, we evaluated whether three priming small molecules (tauroursodeoxycholic acid, fucoidan, and oleuropein) could enhance the angiogenic potential of EPCs. Such enhancement would promote the cellular bioactivities and help to develop functionally improved EPC therapeutics for ischemic diseases by accelerating the priming effect of the defined physiological molecules. We found that preconditioning of each of the three small molecules significantly induced the differentiation potential of $CD34^+$ stem cells into EPC lineage cells. Notably, long-term priming of OECs with the three chemical cocktail (OEC-3C) increased the proliferation potential of EPCs via ERK activation. The migration, invasion, and tube-forming capacities were also significantly enhanced in OEC-3Cs compared with unprimed OECs. Further, the cell survival ratio was dramatically increased in OEC-3Cs against $H_2O_2$-induced oxidative stress via the augmented expression of Bcl-2, a pro-survival protein. In conclusion, we identified three small molecules for enhancing the bioactivities of ex vivo-expanded OECs for vascular repair. Long-term 3C priming might be a promising methodology for EPC-based therapy against ischemic diseases.
Natural Killer (NK) cells are the lymphocytes that are derived from hematopoietic stem cells, developed in the bone marrow from hematopoietic stem cells (HSC) by sequential acquisition of functional surface receptors, and express the repertoire of inhibitory and activating receptors. Recently, Osteopontin (OPN) has been identified as a critical factor for differentiation of natural killer cells. However, the detailed mechanism of OPN-induced NK differentiation has been still to be elucidated. Here, we determined the signaling pathway and possible receptor for OPN in NK differentiation. OPN induced expression of Bcl-2 and activation of Erk kinase. Inhibition of Erk pathway decreased the effect of OPN on NK differentiation. In addition, the expression of integrin ${\alpha}9$ was significantly increased by OPN during NK differentiation, suggesting the possible role of a major signaling molecule for OPN- induced NK differentiation.
Kim, Jun-Seop;Lee, Jong-Hak;Kwon, Owen;Cho, Jang-Hee;Choi, Ji-Young;Park, Sun-Hee;Kim, Chan-Duck;Kim, Yong-Jin;Kim, Yong-Lim
Kidney Research and Clinical Practice
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v.36
no.2
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pp.200-204
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2017
Administration of autologous mesenchymal stem cells (MSCs) has been shown to improve renal function and histological findings in acute kidney injury (AKI) models. However, its effects in chronic kidney disease (CKD) are unclear, particularly in the clinical setting. Here, we report our experience with a CKD patient who was treated by intravenous infusion of autologous MSCs derived from adipose tissue in an unknown clinic outside of Korea. The renal function of the patient had been stable for several years before MSC administration. One week after the autologous MSC infusion, the preexisting renal insufficiency was rapidly aggravated without any other evidence of AKI. Hemodialysis was started 3 months after MSC administration. Renal biopsy findings at dialysis showed severe interstitial fibrosis and inflammatory cell infiltration, with a few cells expressing CD34 and CD117, 2 surface markers of stem cells. This case highlights the potential nephrotoxicity of autologous MSC therapy in CKD patients.
Several studies have investigated the various effects of dexamethasone (Dex) on the proliferation and differentiation of mesenchymal stem cells (MSCs). Previously, we reported that co-treatment with L-ascorbic acid 2-phosphate and fibroblast growth factor (FGF)-2 maintained differentiation potential in MSCs through expression of hepatocyte growth factor (HGF). In this study, we investigated the effects of co-treatment with FGF-2 and Dex on the proliferation and differentiation potential of MSCs during a 2-month culture period. Co-treatment with FGF-2 and Dex increased approximately a 4.7-fold higher accumulation rate of MSC numbers than that by FGF-2 single treatment during a 2-month culture period. Interestingly, co-treatment with FGF-2 and Dex increased expression of HGF and maintained adipogenic differentiation potential during this culture period. These results suggest that co-treatment with FGF-2 and Dex preserves the proliferation and differentiation potential during long-term culture.
Kuzan-Fischer, Claudia Miranda;Juraschka, Kyle;Taylor, Michael D.
Journal of Korean Neurosurgical Society
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v.61
no.3
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pp.292-301
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2018
Medulloblastoma is the most common malignant brain tumor of childhood and remains a major cause of cancer related mortality in children. Significant scientific advancements have transformed the understanding of medulloblastoma, leading to the recognition of four distinct clinical and molecular subgroups, namely wingless (WNT), sonic hedgehog, group 3, and group 4. Subgroup classification combined with the recognition of subgroup specific molecular alterations has also led to major changes in risk stratification of medulloblastoma patients and these changes have begun to alter clinical trial design, in which the newly recognized subgroups are being incorporated as individualized treatment arms. Despite these recent advancements, identification of effective targeted therapies remains a challenge for several reasons. First, significant molecular heterogeneity exists within the four subgroups, meaning this classification system alone may not be sufficient to predict response to a particular therapy. Second, the majority of novel agents are currently tested at the time of recurrence, after which significant selective pressures have been exerted by radiation and chemotherapy. Recent studies demonstrate selection of tumor sub-clones that exhibit genetic divergence from the primary tumor, exist within metastatic and recurrent tumor populations. Therefore, tumor resampling at the time of recurrence may become necessary to accurately select patients for personalized therapy.
Despite the therapeutic effect of mesenchymal stem cells (MSCs) in ischemic diseases, pathophysiological conditions, including hypoxia, limited nutrient availability, and oxidative stress restrict their potential. To address this issue, we investigated the effect of melatonin on the bioactivities of MSCs. Treatment of MSCs with melatonin increased the expression of peroxisome proliferator-activated receptor gamma coactivator-1 alpha (PGC-1α). Melatonin treatment enhanced mitochondrial oxidative phosphorylation in MSCs in a PGC-1α-dependent manner. Melatonin-mediated PGC-1α expression enhanced the proliferative potential of MSCs through regulation of cell cycle-associated protein activity. In addition, melatonin promoted the angiogenic ability of MSCs, including migration and invasion abilities and secretion of angiogenic cytokines by increasing PGC-1α expression. In a murine hindlimb ischemia model, the survival of transplanted melatonin-treated MSCs was significantly increased in the ischemic tissues, resulting in improvement of functional recovery, such as blood perfusion, limb salvage, neovascularization, and protection against necrosis and fibrosis. These findings indicate that the therapeutic effect of melatonin-treated MSCs in ischemic diseases is mediated via regulation of PGC-1α level. This study suggests that melatonin-induced PGC-1α might serve as a novel target for MSC-based therapy of ischemic diseases, and melatonin-treated MSCs could be used as an effective cell-based therapeutic option for patients with ischemic diseases.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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