Epidermal growth factor receptor (EGFR) is a member of the ErbB family (ErbB1-4) of receptor tyrosine kinases (RTKs). EGFR controls numerous physiological functions, including cell proliferation, migration, differentiation and survival. Importantly, aberrant signaling by EGFR has been linked to human cancers in which EGFR and its various ligands are frequently overexpressed or mutated. EGFR coordinates activation of multiple downstream factors and is subject of various regulatory processes as it mediates biology of the cell it resides in. Therefore, many studies have been devoted to understanding EGFR biology and targeting the protein for the goal of controlling tumor in clinical settings. Endocytic regulation of EGFR offers a promising area for targeting EGFR activity. Upon ligand binding, the activated receptor undergoes endocytosis and becomes degraded in lysosome, thereby terminating the signal. En route to lysosome, the receptor becomes engaged in activating various signaling pathways including PI-3K, MAPK and Src, and endocytosis may offer both spatial and temporal regulation of downstream target activation. Therefore, endocytosis is an important regulator of EGFR signaling, and increasing emphasis is being placed on endocytosis in terms of cancer treatment and understanding of the disease. In this review, EGFR signaling pathway and its intricate regulation by endocytosis will be discussed.
Mast cells play an important role in early and late phase allergic reactions through allergen and IgE-dependent release of histamine, proteases, prostaglandins, and several multifunctional cytokines. In this study, we investigated whether Cudrania tricuspidata extract (CTE) suppresses IgE-mediated allergic responses in mast cells, an allergic animal model, and its mechanism of action in mast cells. We found that CTE inhibited IgE-mediated degranulation and cytokine production in rat basophilic leukemia (RBL)-2H3 mast cells and bone marrow-derived mast cells (BMMC), as well as passive cutaneous anaphylaxis (PCA) in mice. With regard to its mechanism of action, CTE suppressed the activating phosphorylation of spleen tyrosine kinase (Syk), a key enzyme in mast cell signaling processes and that of LAT, a downstream adaptor molecule of Syk in $Fc{\varepsilon}RI$-mediated signal pathways. CTE also suppressed the activating phosphorylation of mitogen-activated protein (MAP) kinases and Akt. The present results strongly suggest that the anti-allergic activity of CTE is mediated through inhibiting degranulation and allergic cytokine secretion by inhibition of Syk kinase in mast cells. Therefore, CTE may be useful for the treatment of allergic diseases.
Recently, we reported that defective autophagy may contribute to the inhibition of the growth in response to PP2 (4-amino-5-(4-chlorophenyl)-7-(t-butyl)pyrazolo[3,4-d]pyrimidine), a selective SFK inhibitor, in multidrug-resistant v-Ha-ras-transformed NIH 3T3 cells (Ras-NIH 3T3/Mdr). In this study, we demonstrated that PP2 induces LC3 conversion via a mechanism that is uncoupled from autophagy and increases apoptosis in Ras-NIH 3T3/Mdr cells. PP2 preferentially induced autophagy in Ras-NIH 3T3 cells rather than in Ras-NIH 3T3/Mdr cells as determined by LC3-I to LC3-II conversion and GFP-LC3 fluorescence microscopy. Beclin 1 knockdown experiments showed that, regardless of drug resistance, PP2 induces autophagy via a Beclin 1-dependent mechanism. PP2 induced a conformational change in Beclin 1, resulting in the enhancement of the pro-autophagic activity of Beclin 1, in Ras-NIH 3T3 cells. Further, PI3K inhibition induced by wortmannin caused a significant increase in apoptosis in Ras-NIH 3T3 cells, as demonstrated by flow cytometric analysis of Annexin V staining, implying that autophagy inhibition through PI3K increases apoptosis in response to PP2 in Ras-NIH 3T3 cells. However, despite the fact that wortmannin abrogates PP2-induced GFP-LC3 punctae formation, some LC3 conversion remains in Ras-NIH 3T3/Mdr cells, suggesting that LC3 conversion may occur in an autophagy-independent manner. Taken together, these results suggest that PP2 induces LC3 conversion independent of PI3K, concomitant with the uncoupling of LC3 conversion from autophagy, in multidrug-resistant cells.
p62 is a phosphotyrosine-independent ligand of the SH2 domain of $p56^{Ick}$, a T-cell specific Src family tyrosine kinase. Recently p62 has been shown to interact with a number of proteins, such as $PKC\varsigma$ and ubiquitin, and implicated in important cellular functions such as cell proliferation. Since the two p62 interacting proteins, $p56^{Ick}$ and $PKC\varsigma$, have been reported to play roles in cell death, 1 have addressed the potential role of p62 during apoptosis in Jurkat cells in this study. Herein 1 show that p62 was specifically cleaved into two peptides by a caspase-3-like activity during Fas-receptor mediated apoptosis in Jurkat cells. This cleavage generated two fragments with molecular weights of about 35 kDa that differed in subcellular localizations. The N-terminal cleaved fragment was present in the detergent-insoluble fraction whereas the C-terminal fragment was found in the detergent-soluble fraction. In addition, the C-terminal fragment appeared to be subjected to further degradation as apoptosis prolonged. Moreover, overexpression of p62 in Jurkat cells attenuated the Fas receptor mediated apoptosis, suggesting that p62 is involved in apoptotic signal transduction pathway in lymphocytes.
Lee, Dajeong;Park, Young Hwan;Lee, Ji Eon;Kim, Hyuk Soon;Min, Keun Young;Jo, Min Geun;Kim, Hyung Sik;Choi, Wahn Soo;Kim, Young Mi
Biomolecules & Therapeutics
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제28권5호
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pp.456-464
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2020
Mast cells (MCs) are systemically distributed and secrete several allergic mediators such as histamine and leukotrienes to cause type I hypersensitivity. Dasatinib is a type of anti-cancer agent and it has also been reported to inhibit human basophils. However, dasatinib has not been reported for its inhibitory effects on MCs or type I hypersensitivity in mice. In this study, we examined the inhibitory effect of dasatinib on MCs and MC-mediated allergic response in vitro and in vivo. In vitro, dasatinib inhibited the degranulation of MCs by antigen stimulation in a dose-dependent manner (IC50, ~34 nM for RBL-2H3 cells; ~52 nM for BMMCs) without any cytotoxicity. It also suppressed the secretion of inflammatory cytokines IL-4 and TNF-α by antigen stimulation. Furthermore, dasatinib inhibited MC-mediated passive cutaneous anaphylaxis (PCA) in mice (ED50, ~29 mg/kg). Notably, dasatinib significantly suppressed the degranulation of MCs in the ear tissue. As the mechanism of its effect, dasatinib inhibited the activation of Syk and Syk-mediated downstream signaling proteins, LAT, PLCγ1, and three typical MAP kinases (Erk1/2, JNK, and p38), which are essential for the activation of MCs. Interestingly, in vitro tyrosine kinase assay, dasatinib directly inhibited the activities of Lyn and Fyn, the upstream tyrosine kinases of Syk in MCs. Taken together, dasatinib suppresses MCs and PCA in vitro and in vivo through the inhibition of Lyn and Fyn Src-family kinases. Therefore, we suggest the possibility of repositioning the anti-cancer drug dasatinib as a treatment for various MC-mediated type I hypersensitive diseases.
BAE MYUNG AE;JUN DO YOUN;KIM KYUNG MIN;KIM SANG KOOK;CHUN JANG SOO;TAUB DENNIS;PARK WAN;MOON BYUNG-JO;KIM YOUNG HO
Journal of Microbiology and Biotechnology
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제15권4호
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pp.756-766
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2005
The signaling mechanism underlying aburatubolactam C-induced FasL upregulation was investigated in human Jurkat T cells. After treatment with aburatubolactam C, the src-family PTKs $p56^{lck}\;and\;p59^{fyn}$, and MAP kinases ERK2 and JNK1, were activated prior to FasL upregulation; Both $p56^{lck}\;and\;p59^{fyn}$ were directly activated 2.4- and 2.2-fold, respectively, in vitro by aburatubolactam C. The aburatubolactam C-induced cellular changes, including the activation of ERK2 and INK1, and FasL upregulation, were completely prevented by the PTK inhibitor genistein. The activation of protein kinase C (PKC$\delta,\;\epsilon\;and\;\mu$ was also induced following aburatubolactam C treatment. Although the activation of $p56^{lck}$ and tyrosine phosphorylation of the cellular proteins were not blocked by the PKC inhibitor GFl09203X, the activation of ERK2 was completely abrogated, along with a detectably enhanced JNK1 activation; FasL upregulation, and apoptosis. However, the FasL upregulation and apoptosis were significantly inhibited by the PKC activator PMA, with a remarkable increase in the ERK2 activation. The cytotoxic effect of aburatubolactam C was reduced in the presence of the anti-Fas neutralizing antibody ZB-4. Although ectopic expression of Bcl-2 failed to completely block the cytotoxicity of aburatubolactam C, it was clearly suppressed. The c-Fos mRNA expression was upregulated in a biphasic manner, where the second phasic expression overlapped with the FasL upregulation. Accordingly, these results demonstrate that aburatubolactam C-induced apoptosis is exerted, at least in part, by FasL upregulation dictated by activation of the PTK ($p56^{lck}\;and\;p59^{fyn}$) /JNKI pathway, which is negatively affected by the concurrent activation of the PKC/ERK2 pathway proximal to PTK activation.
p56$^{Ick}$, a cytoplasmic protein tyrosine kinase of the src family, is non-covalently associated with the cell surface coreceptors CD4 and CD8, which are expressed on thymocytes and mature T cells. The coreceptor protein plays an important role during the differentiation of thymocytes and the activation of T cells. DNA constructs were designed to study the roles of CD4 and CD8 during the differentiation of thymocytes. One is a chimeric cDNA which consists of coding regions for the extracellular domain of CD8a and the transmembrane and cytoplasmic domain of CD4. The other is the same chimeric cDNA but with a point mutation converting Cys to Ala in the Ick-binding site to disrupt the association. We confirmed that the CD8a/CD4 chimeric molecule bound to Ick more efficiently than the wild type CD8a protein. However, the chimeric protein with the Cys$leftrightarro$Ala mutation did not associate with Ick. The results suggest a possibility that the CD8a/CD4 chimeric protein may behave like a CD4 protein in associating with Ick and that it may deliver a signal inside the cell in a similar manner, Analysing effects of the mutant CD8a/CD4 chimeric protein expression in developing thymocytes will elucidate the role of Ick during the determination of CD4/CD8 cell lineages.
Park, Inyoung;Son, Myongsun;Ahn, Eunseon;Kim, Young-Woong;Kong, Young-Yun;Yun, Yungdae
Molecules and Cells
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제43권11호
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pp.921-934
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2020
Lck-interacting transmembrane adaptor 1 (LIME) has been previously identified as a raft-associated transmembrane protein expressed predominantly in T and B lymphocytes. Although LIME is shown to transduce the immunoreceptor signaling and immunological synapse formation via its tyrosine phosphorylation by Lck, a Src-family kinase, the in vivo function of LIME has remained elusive in the previous studies. Here we report that LIME is preferentially expressed in effector T cells and mediates chemokine-mediated T cell migration. Interestingly, in LIME-/- mice, while T cell receptor stimulation-dependent proliferation, differentiation to effector T cells, cytotoxic T lymphocyte (CTL) function and regulatory T lymphocyte (Treg) function were normal, only T cell-mediated inflammatory response was significantly defective. The reduced inflammation was accompanied by the impaired infiltration of leukocytes and T cells to the inflammatory sites of LIME-/- mice. More specifically, the absence of LIME in effector T cells resulted in the reduced migration and defective morphological polarization in response to inflammatory chemokines such as CCL5 and CXCL10. Consistently, LIME-/- effector T cells were found to be defective in chemokine-mediated activation of Rac1 and Rap1, and dysregulated phosphorylation of Pyk2 and Cas. Taken together, the present findings show that LIME is a critical regulator of inflammatory chemokine-mediated signaling and the subsequent migration of effector T cells to inflammatory sites.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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