The Transformation-Associated Recombination (TAR) cloning technique allows selective isolation of chromosomal regions and genes from complex genomes. The procedure requires knowledge of relatively small genomic sequences that reside adjacent to the chromosomal region of interest. This technique involves homologous recombination during yeast spheroplast transformation between genomic DNA and a TAR vector that has 5'and 3' gene targeting sequences. In this study, we examined the minimum size of specific hooks required for a single-copy gene isolation and compared the utility of different TAR vectors, radial and unique vectors, by cloning the same single-copy gene. The efficiency of TAR cloning of the hHPRT gene was same using hooks varying from 750 to 63 bp. The number of transformants decreased approximately 20-fold when the TAR vector contained two unique hooks versus using a radial vector, but the percentage of positive recombinants increased over 2-fold when a unique TAR vector was used. Therefore, we suggest that the two-unique TAR vector is suitable for general TAR cloning given its high selectivity, and the radial TAR vector is more suitable when genomic DNA is in limited quantity, for example, DNA isolated from pathological specimens. Moreover, we confirm the minimal length of a unique sequence in a TAR vector is approximately 60 bp for a single-copy gene isolation.
Kim Jae-Woo;Do Eun-Ju;Yoon Se-Lyun;Jeong Yun-Hee;Yoon Young-Ho;Leem Sun-Hee;Sunwoo Yangil;Park In-Ho
Korean Journal of Microbiology
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v.41
no.4
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pp.239-245
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2005
Transformation-Associated Recombination (TAR) cloning technique allows selective isolation of chromosomal regions and genes from complex genomes. The procedure requires knowledge of relatively small genomic sequences that reside adjacent to the chromosomal region of interest. This technique involves homologous recombination during yeast spheroplast transformation between genomic DNA and a TAR vector that has 5' and 3' gene targeting sequences. In this study, we examined the effect of non-homologous spacing sequence in target hooks on homologous recombination using a plasmid model system. The efficiency of homologous recombination between the modified his3-TRP1-his3 fragments and HlS3 gene on plasmid were analyzed by the characterization of $Ura^+$ transformants. The numbers of $Ura^+$ transformant showed same level when seven different modified his3-TRP1-his3 fragments were used. But the percentage of positive recombinants. $Trp^+His^-$, dramatically decreased when used the modified his3-TRP1-his3 fragments contained incorrect spacing of nonhomologous region. As a result, we suggest that incorrect spacing inhibits the homologous recombination between target hook and substrate DNA. Therefore, we should consider the correct spacing in target hook when the target hook are used for cloning of orthologue gene.
The localization of carbon monoxide dehydrogenases (CO-DHs) in Pseudomonas carvoxydovorans and Acinetobacter sp.1 was examined by comparison of the distribution of CO-oxidizing activity between soluble and particulate fractions obtained after disruption of CO-grown cells by sonic oscillation and of spheroplasts by osmotic shock. When the cells were broken by sonic oscillation, most of the CO-DH activity was recovered from soluble fractions. However, disryption by osmotic lysis of spheroplasts revealed that the enzyme activity is present in the cell membrane. The results indicated the CO-DHs in these cells are loosely attached to the cytoplasmic membrane.
AL072 is a potent anti-Legionella antibiotic produced by Streptomyces strain AL91. The minimum inhibitory concentration (MIC) of AL072 against Legionella pneumophila was 0.2$\mu$g/ml. Bacterial growth was rapidly inhibited at the dose range between the MIC and 20 times of the MIC when the antibiotic was added at the mid-exponential phase. Ultrastructural changes in L. pneumophila were observed upon treatment with AL072. Under electron microscopical observation, the organisms treated with AL072 exhibited characteristic morphological changes in the cellular outer coat. Also irregular morphological changes, such as the formation of filamentous materials in the cytoplasm, an increase in the size and number of cytoplasmic vacuoles, the extruding of cytoplasmic contents, the formation of spheroplast and ghost cells, and blebbings in the cell wall were observed. Furthermore, immunoelectron microscopical observation of the group treated with the MIC showed that the immune complex attached mainly to the cell wall. The results of these experiments indicate that AL072, like the inhibitors of cell wall synthesis, act selectively on the cell wall of L. pneumophila.
Heterologous expression of glucose oxidase gene using recombinant yeast has been carried out. Polymerase chain reaction was conducted to obtain the gene encoding glucose oxidase from Aspergillus niger and sequence comparison indicated the cloned 1.9kb DNA fragment appeared to be the glucose oxidise structural gene containing a signal sequence for extracellular location. Transforming shuttle vector was constructed with YEp352 to express the cloned glucose oxidase gene under the control of either GAL1 or GAL10 promoter. Plate assay of recombinant yeasts has shown that GAL1 promoter was more effective in yielding glucose oxidise than GAL10 promoter. Among the five different concentrations of galactose tried, 1% galactose showed the highest induction of glucose oxidase. Cellular localization experiment of recombinant enzyme using spheroplast revealed that most of enzymes (80%) were secreted into culture media in contrast to A. niger. There is no difference in heat-stability of recombinant enzyme up to $50^{\circ}C$ compared to the glucose oxidase from A. niger However, a dramatic reduction of enzyme activity was observed in both enzymes at $60^{\circ}C$.
Kim, Sung-Hoon;Kim, Chang-Jin;Rhee, Yoon;Yoo, Ick-Dong;Mheen, Tae-Ick
Korean Journal of Microbiology
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v.23
no.3
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pp.197-202
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1985
Different spheroplasting methods using glycine were tried to fast and slow-growing R. japonicum. Although one of the fast growers, R-271 showed normal growth in the presence of 4mg/ml glycine, cell morphology and colony forming unit (CFU) were greatly different from the cells of late log phase grown in the medium without glycine. In parallel, R-271 became sensitive to lysozyme after 6hr incubation in medium containing glycine (3.5mg/ml). After 24hr cultivation in glycine $(100{\mu}g/ml)$ medium, one of the slow growers, R-214 was also susceptible to lysozyme action. Spgeroplasting frequency of both strains was over 96% by glycine and lysozyme. Spheroid cell was also found in bacteroids from root nodule and soluble glycine content was relativiely smaller than other amino acids in soybean nodule extracts.
This study was performed to construct killer wine yeasts which might suppress the growth of wild yeasts, reduce the consumption of starter and condense the fermentation period. Saccharomyces cerevisiae M524, a commercial wine yeast, was treated with N-methyl-N'-nitro-N-nitrosoguanidine to induce auxotrophic mutants, i.e., CHM $2(thr^-)$, CHM 3 $(asp^-)$ and CHM 6 $(tyr^-)$. These auxotrophs were fused successfully with a killer yeast, S. cerevisiae $1368R({\alpha}\;his\;4\;kar\;1-1(kil-k)\;(k_0)$, respiratory deficient) using sphoroplast techniques and the fusants were designated as CHF 21$(th^-\;kil^+)$, CHF 22$(thr^-\;kil^+)$, CHF 31$(asp^-\;kil^+)$ and GHF 61$(tyr^-\;kil^+)$. Combined cultivation of CHF 31 with 1368R or S. cerevisiae $5{\times}47$ (killer sensitive) proved out that CHF 31 had the characteristic of killing and produced the same amount of ethanol as the prototroph, M524.
Antimicrobial actions of reactive oxygen/nitrogen species (ROS/RNS) derived from products of NADPH oxidase and inducible nitric oxide (NO) synthase in host phagocytes inactivate various bacterial macromolecules. To cope with these cytotoxic radicals, pathogenic bacteria have evolved to conserve systems necessary for detoxifying ROS/RNS and repairing damages caused by their actions. In response to these stresses, bacteria also induce expression of molecular chaperones to aid in ameliorating protein misfolding. In this study, we explored the function of a newly identified chaperone Spy, that is localized exclusively in the periplasm when bacteria exposed to conditions causing spheroplast formation, in the resistance of Salmonella Typhimurium to ROS/RNS. A spy deletion mutant was constructed in S. Typhimurium by a PCR-mediated method of one-step gene inactivation with ${\lambda}$ Red recombinase, and subjected to ROS/RNS stresses. The spy mutant Salmonella showed a modest decrease in growth rate in NO-producing cultures, and no detectable difference of growth rate in $H_2O_2$ containing cultures, compared with that of wild type Salmonella. Quantitative RT-PCR analysis showed that spy mRNA levels were similar regardless of both stresses, but were increased considerably in Salmonella mutants lacking the flavohemoglobin Hmp, which are incapable of NO detoxification, and lacking an alternative sigma factor RpoS, conferring hypersusceptibility to $H_2O_2$. Results demonstrate that Spy expression can be induced under extreme conditions of both stresses, and suggest that the protein may have supportive roles in maintaining proteostasis in the periplasm where various chaperones may act in concert with Spy, thereby protecting bacteria against toxicities of ROS/RNS.
The transformation-associated recombination (TAR) cloning technique allows selective isolation of chromosome regions or genes from complex genome. The procedure requires knowledge of relatively small genomic sequences that reside adjacent to the chromosome region of interest. This method involves homologous recombination during spheroplast transformation between genomic DNA and a TAR vector that has 5' and 3' gene targeting sequences (hooks). To examine whether TAR cloning can be applied to the isolation of gene homologues, we chose the HPRT genes from human and mouse genome. As results, the yield of positive clones for HPRT gene from human and mouse genome when using a TAR vector containing mHPRT hook or hHPRT hook was almost same level. Analysis of the gap regions in mHPRT revealed that they contain abnormalities that could result in instability of the sequences. In conclusion, we were able to use the TAR cloning technology to isolate gene homologue (orthologue) from nonidentical genome. Moreover, the use of the TAR cloning system may accelerate work on closing the remaining gaps in mammalian genome to achieve the goal of annotation of all mammalian genes.
Transformation-associated recombination (TAR) cloning is based on co-penetration into yeast spheroplasts of genomic DNA along with TAR vector DNA that contains 5'- and 3'-sequences (hooks) specific for a gene of interest, followed by recombination between the vector and the human genomic DNA to establish a circular YAC. Typically, the frequency of recombinant insert capture is 0.01-1% for single-copy genes by TAR cloning. To further refine the TAR cloning technology, we determined the effect of GC content on target hooks required for gene isolation utilizing the $Tg\cdot\AC$ mouse transgene as the targeted region. For this purpose, a set of vectors containing a B1 repeated hook and Tg AC-specific hooks of variable GC content (from 18 to 45%) was constructed and checked for efficiency of transgene isolation by radial TAR cloning. Efficiency of cloning decreased approximately 2-fold when the TAR vector contained a hook with a GC content ~${\leq}23$% versus ~40%. Thus, the optimal GC content of hook sequences required for gene isolation by TAR is approximately 40%. We also analyzed how the distribution of high GC content (65%) within the hook affects gene capture, but no dramatic differences for gene capturing were observed.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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