The effect of ccocaine on reproductive system were studied in male ICR mice. daily injection of cocaine HCL (10, and 40 mg/kg s.c for 15 days) disrupted epididymal sperm levels and testicular morphology. These disruptions were manifested in a decreased number of sperum, an increased number of dead sperm as compared with control vehicle, and wre evidenced by vacuolations, multinucleated giant cell formations and coagulation necrosis in the testicular seminiferous tubules. Responses in the current study were trended in dose dependent pattem. These results suggest that thronic cocaine intoxication can perturb on male reproductive organ functioning.
Kim, Dae-Hyun;Gong, Yong-Gun;Lee, Chang-Hoon;Cha, Byung-Yul;Han, Chang-Hee
한국어업기술학회:학술대회논문집
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한국어업기술학회 2003년도 춘계 수산관련학회 공동학술대회발표요지집
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pp.304-305
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2003
Sperm structure of natantian decapod may vary according to superfamilies. Recently, the ultrastructures of sperm have been extensively used for recognizing phylogenic linkages in decapod taxa (Medina, 1994; Tudge, 1997; Tudge et al., 1991; Medina et al., 1998). Therefore, it appears that knowledge of the sperm morphology and components is very useful for estimating phylogeny in decapod. (omitted)
Purpose : These studies were undertaken to evaluate the effects of the administration of different concentrated Morindae officinalis Radix extract solution on the spermatogenic abilities such as concentration, motility and morphological normality of sperm from the testis and the activities of sperm hyaluronidase, testicular peroxidase and testicular catalase. Methods : We used the 2-month-old mice and administered the extract solution of Morindae officinalis Radix in the different concentration once a day for 60 days. The control group was administered the normal saline in the same way and duration. We examined the number of total, motile and normal sperm from the cauda epididymis, the activities of sperm hyaluronidase, testicular peroxidase and testicular catalase. Also we observed changes of isolated testis before and after administration of Morindae officinalis Radix extract solutions the mice. And we compared to the testicular tissue especially seminiferous tubules between control and treated group by histochemical methods. Results : The significant dose-dependent differences were observed in the concentration of total sperm, the motility and normality of spermatozoa of Morindae officinalis Radix extract solution administered groups compared to the control group, respectively. In the histological analysis of the testicular tissues, the enlargement of testicular lobe diameter and apparent vasculogenesis between testicular lobes were observed in the Morindae officinalis Radix extract solution administered groups compared to the control group, respectively. Also, the activity of hyaluronidase was significantly increased in the Morindae officinalis Radix extract solution administered groups compared to the control group. In the antioxidant activity analysis, the activity of testicular peroxidase was significantly increased in the Morindae officinalis Radix extract solution administered groups compared to the control group, respectively. Conclusion : This study shows that Morindae officinalis Radix has the beneficial effect on the concentration, morphology and motility of sperm, the activities of sperm hyaluronidase and testicular peroxidase. We can suggest that Morindae officinalis Radix extract solution be useful for the treatment of male sexual dysfunctions and infertility.
Fapohunda, S. O.;Ezekiel, C. N.;Alabi, O. A.;Omole, A.;Chioma, S. O.
Mycobiology
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제36권4호
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pp.255-259
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2008
The effect of aflatoxin-contaminated corn on albino mice was investigated using the sperm morphology assay. Blood parameter levels including; total white blood cells (WBC), total red blood cells (RBC), packed cell volume (PCV), serum bilirubin (SB) and fasting blood sugar (FBS) were also determined in the tested mice. Test mice were exposed to aflatoxin-contaminated corn (contamination level of 100 ppb) for $1{\sim}4$ weeks while aflatoxin-free corn and cyclophosphamide were used as negative and positive controls, respectively. Sperm cells showed varieties of morphological abnormality when assessed after 5 weeks. The percentage frequencies of the negative and positive controls were 18.8% and 48.87%, respectively, while the percentage abnormalities for the 1, 2, 3 and 4 weeks exposures were 41.38%, 48.17%, 57.13% and 61.67%, respectively. PCV, WBC, total bilirubin and glucose level values of mice in all concentrations were higher and statistically significant as compared to the negative control values using Dunnett's test. Therefore, abnormal sperm cell induction is concentrationdependent such that continuous consumption of aflatoxin-contaminated corn is capable of negatively affecting spermatogenesis by inducing or increasing the frequency of morphologically abnormal sperm cells produced.
Yeganeh Koohestanidehaghi;Mohammad Ali Khalili;Fatemeh Dehghanpour;Mohammad Sei
Clinical and Experimental Reproductive Medicine
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제51권1호
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pp.13-19
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2024
Radiofrequency electromagnetic radiation (RF-EMR) from various sources may impact health due to the generation of frequency bands. Broad pulses emitted within frequency bands can be absorbed by cells, influencing their function. Numerous laboratory studies have demonstrated that mobile phones-generally the most widely used devices-can have harmful effects on sex cells, such as sperm and oocytes, by producing RF-EMR. Moreover, some research has indicated that RF-EMR generated by mobile phones can influence sperm parameters, including motility, morphology, viability, and (most critically) DNA structure. Consequently, RF-EMR can disrupt both sperm function and fertilization. However, other studies have reported that exposure of spermatozoa to RF-EMR does not affect the functional parameters or genetic structure of sperm. These conflicting results likely stem from differences among studies in the duration and exposure distance, as well as the species of animal used. This report was undertaken to review the existing research discussing the effects of RF-EMR on the DNA integrity of mammalian spermatozoa.
Gonad index, spermatogenesis and the reproductive cycle of Meretrix petechialis were investigated by cytological, histological observations. Monthly changes in the gonad index coincides the gonadal development. The morphology of the spermatozoon had a primitive type and is similar to that of other bivalves having a short mid-piece with five to six mitochondria surrounding the centrioles. The morphology of the sperm nucleus type and the acrosome shape of this species were cylindrical type and cap-like shape, respectively. The spermatozoon was approximately 40-45 ${\mu}m$ in length including the sperm nucleus length (about 1.50 ${\mu}m$), acrosome length (0.60 ${\mu}m$) and tail flagellum. The axoneme of the tail flagellum consisted of nine pairs of microtubules at the periphery and a pair at the center. The axoneme of the sperm tail showed 9 + 2 microtubular arrangement. The spawning period was from June to September and the main spawning occurred from July to August when seawater temperatures were higher than $20^{\circ}C$. The reproductive cycle of this species could be categorized into five successive stages: early active stage (February to March), late active stage (February to May), ripe stage (April to July), partially spawned stage (June to September), and spent/inactive stage (September to February).
To evaluate the fertilizing capacity of domestic animal spermatozoa by hamster test, semen were collected from 15 boars(Duroc, Landrace, and Yorkshire) and 2 mixed dogs which had been proved to be fertile in the past then, the semen were preserved in BWW medium at $4^{\circ}C$ or $18^{\circ}C$ for about 20 hours and coincubated with zona-free hamster ova for 5 hours. The ova were stained by lacmoid and examined under phase contrast microscope to investigate the rates of sperm binding to the ova, penetration and formation of a male pronucleus, and the numbers of both bound and penetrated sperm per ovum. Both the semen preserved at $18^{\circ}C$ for about 20 hours and that treated by swim up procedure showed considerably higher rates of sperm binding and penetration as well as higher number of penetrated sperm than that preserved at $4^{\circ}C$ for about 20 hours, respectively(p<0.01). Motility of boar sperm at insemination was from 40 to 90% and no difference in hamster test was obtained according to different degree of sperm motility. Abnormality in morphology of boar sperm at insemination was from 6 to 45% and no difference in hamster test was obtained according to different degree of sperm abnormality. The sperm concentrations of $7{\times}10^7$ and $7{\times}10^6$ showed considerably higher rates of sperm binding and penetration as well as higher number of bound sperm than that of $7{\times}10^4$ (p<0.01) along with the same higher results than that of $7{\times}10^5$(0<0.05), respectively. Boar sperm showed considerably higher rates of sperm binding and penetration as well as higher numbers of both bound and penetrated sperm than dog sperm, when both semen were treated by BWW+heparin medium and swim up procedure, respectively. These results indicated that fertile boar sperm showed considerably lower rates in the results of hamster test, when preserved at $4^{\circ}C$ for about 20 hours and in lower concentration of sperm than when preserved at $18^{\circ}C$ for about 20 hours and in higher concentration of sperm, respectively, and at the same time considerably higher results than fertile dog sperm, consequently to prove that hamster test would be of great value in assaying the fertilizing capacity of boar sperm.
Objective: This study evaluated the effects of temperature and storage time on the quality and DNA integrity of freeze-dried sperm from individuals with normozoospermia. Methods: Normal sperm samples from 15 men aged 24 to 40 years were studied. Each sample was divided into six groups: fresh, freezing (frozen in liquid nitrogen), freeze-dried then preserved at room temperature for 1 month (FD-1m-RT), freeze-dried then preserved at room temperature for 2 months (FD-2m-RT), freeze-dried then preserved at 4 ℃ for 1 month (FD-1m-4 ℃), and freeze-dried then preserved at 4 ℃ for 2 months (FD-2m-4 ℃). The morphology, progressive motility, vitality, and DNA integrity of the sperm were evaluated in all groups. Results: In all freeze-dried groups, sperm cells were immotile after rehydration. The freeze-dried groups also showed significantly less sperm vitality than the fresh and frozen groups. Significantly more morphological sperm abnormalities were found in the freeze-dried groups, but freeze-drying did not lead to a significantly higher DNA fragmentation index (DFI). The DFI was significantly higher in the FD-2m-RT group than in the other freeze-dried groups. Conclusion: The freeze-drying method preserved the integrity of sperm DNA. The temperature and duration of storage were also identified as factors that influenced the DFI. Accordingly, more research is needed on ways to improve sperm quality in the freeze-drying process.
Eo, Yeol;Kim, Sang Hwan;Bang, Seong-Gyu;Oh, Min-Gee;Park, Chan-Hee;Yoon, Jong Taek
한국동물생명공학회지
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제34권2호
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pp.100-105
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2019
The purpose of this study was to evaluate the effect of addition of ethylene glycol, glycerol and sucrose to TCG (Tris, Citric Acid, Glucose, Egg Yolk) and DMSO Frozen. The extender containing Egg yolk concentration (10%, 20%) affects viability and acrosome morphology of rabbit sperm. Sperm viability was then assessed for the freezing extenders TCGD (Tris + Citricacid + Glucose + DMSO), TCGED (Tris + Citricacid + Glucose + Egg yolk + DMSO), TCGGD (Tris + Citricacid + Glucose + Glycerol + DMSO) and TCGSD Tris + Citricacid + Glucose + Sucrose + DMSO) during thawing at 38℃. for 20 seconds, respectively. TCG + 10% egg yolk (viability: 77.0 ± 0.8, NAI: 73.3 ± 0.9) was significantly (sperm viability and normal acrosome interaction (NAI)) higher than TCG + 20% egg yolk (70.7 ± 1.1, 70.0 ± 0.9) in the sperm normalcy analysis according to the yolk concentration. TCGGD (53.4 ± 0.1, 62.3 ± 0.4), TCGSD (61.3 ± 0.0, 67.1 ± 0.1) sperm viability and normal acrosome interaction (NAI) in frozen spermatozoa are TCGD (46.4 ± 2.8 and 56.3 ± 1. 4) and TCGED (23.0 ± 1.1 and 54.6 ± 1.4) extenders was thawed at 38℃ for 20 seconds. According to the results from each frozen bulking agent, sperm membrane integrity by hypotonic swelling test (HOST) analysis in TCGGD (59.8 ± 0.7), TCGSD (59.3 ± 0.5) was significantly high compared to other experimental groups (p < 0.05). In conclusion, these results suggested that TCGGD and TCGSD extenders enhance survivability of rabbit sperm after frozen-thawing.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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