Molecular association of glucose transporters with the other proteins in the plasma membrane was assessed by gel electrophoresis and immunoblot techniques. Approximately $31.5{\pm}5.1%$ of GLUT-4, $64.8{\pm}2.7%$ of clathrin, 48.7% of total protein in the plasma membrane (PM) were found insoluble upon extraction with 1% Tx-100. Sodium dodecyl sulfate polyacrylamide gel electrophoresis revealed that the Tx-100 insoluble PM fraction contained about 4 major polypeptides with apparent molecular weight of above 200, 100-120, 80 and 30-35 KDa that were readily removed upon wash with a high pH buffer which is known to remove clathrin and 0.5 M Tris-buffer which is known to remove assembly proteins (AP). Immunoblotting of GLUT4 and clathrin against specific antibodies showed that GLUT-4 and clathrin were co-solubilized up to 84.6% and 82.7% respectively by wash with a high pH buffer and 1% Tx-100. When the membrane was pre-washed with a high pH buffer and 0.5 M Tris solution, GLUT4 and clathrin were not solubilized further suggesting that GLUT4 molecules are in molecular association with clathrin, AP and/or other extrinsic membrane proteins in plasma membrane and the formation of clathrin-coated structures might be involved in insulin stimulated glucose transporter translocation mechanism.
Human mitochondrial aldehyde dehydrogenase(ALDH2) is mainly responsible for the oxidation of acetaldehyde generated during alcohol oxidation in vivo. To investigate the role of ALDH2 in alcohol metabolism, it was needed to get solubilized enzyme. The cDNA of ALDH2 is isolated from cDNA library and ligated to several expression vectors for E. coli. At almost expression system to be constructed, the broad expression band of ALDH2 was detected. But, the large part of the expressed protein consisted as inclusion body, the yield of solubilized enzyme was not more tan 5% of the total expressed amount. Recombinant ALDH2 was verified from the several expression systems.
The matrix metalloproteinases (MMPs) are a family of enzymes responsible for degrading connective tissue. MMPs catalyze the breakdown of collagen from the extracellular matrix, leading to wrinkle formation and accelerated skin aging. Furthermore, ultraviolet irradiation causes increased expression of certain MMPs. In the extracellular matrix turnover, MMPs are interacting with endogenous regulators named tissue inhibitors of metalloproteinases (TIMPs). Using peptide substrate assays, it has been demonstrated that TIMP-MMP complexes interact highly specifically with $K_{i}$ values of 10$^{-9}$ -10$^{-16}$ M. Therefore applications for TIMP as inhibitor of collagen degradation are suggested for cosmetic anti-aging products to prevent wrinkle formation and loss of elasticity. To date four TIMP proteins (TIMP-1, TIMP-2, TIMP-3 and TIMP-4) have been identified which show a high degree in sequence similarity. The production of human TIMP-2, a 194-residue nonglycosylated protein, was performed by fed-batch culture of Escherichia coli. TIMP-2 accumulated in the bacterial cells in an insoluble form as inclusion bodies. The inclusion bodies were solubilized and the protein refolded to yield the native TIMP-2 in the active form. The integrity of the protein was confirmed by mass analysis, Edman sequencing and gel shift experiments with authentic samples. The inhibitory activity of the refolded and purified TIMP-2 was demonstrated with MMP-1 and MMP-2 assays using synthetic fluorogenic peptide substrates.s.
In order to understand the machanism of action and regulation of ${\beta}$-adrenergic receptor in terms of molecular level, the purification of receptor protein has a fundamental importance. Moreover, species differences among avian, amphibian and mammalian ${\beta}$-adrenergic receptors make it more important to purify mammalian ${\beta}$-adrenergic receptor. Because ${\beta}$-adrenergic receptor is an integral membrane protein, it must be solubilized from the membrane for the purification. The purpose of the present study was to solubilize and characterize the mammalian $\beta$-adrenergic receptor from guinea pig lung in quantities by more efficient and practical method eventually to purify receptor. Guinea pig lung membrane preparation was solubilized by sequential treatment of buffers containing low and high concentration of digitonin which are 0.2 and 1.2% respectively. About 50% of the total receptor pool was released by this double extraction procedure. The $\beta$-adrenoceptors in the digitonin extract were identified using the ${\beta}$-adrenergic antagonist, (-)-[$^3H$]-dihydroalprenolol ([$^3H$]DHA). The solubilized receptor retained all of the essential characteristics of membrane-bound receptor, namely saturability; stereoselectivity; high affinity to ${\beta}$-adrenergic drugs. For the measurement of soluble receptor activity, Sephadex G-50 chromatography method has been widely used. Inspite of its accuracy and wide acceptance, this technique employed troublesome column work which required long time to assay the activity of receptor. We employed another methods to measure receptor activity. When using 0.5% polyethylenimine pretreated GF/B glass fiber filter, filtration technique could be used to measure soluble receptor activity. This technique enabled us to reduce the total amount of time to assay by a factor of 4 as well as to detect soluble receptor. In the present study, we could establish more efficient and practical solubilization method of mammalian $\beta$-adrenergic receptor. The rapidity and high yield of this solubilization scheme, together with the favorable recovery of the receptor activity, are significant steps toward the ultimate purification of the mammalian $\beta$-adrenergic receptor. The result of this study together with more convenient purification method could provide large amount of purified receptor with ease for various research purposes.
Among signal transduction systems by protein phosphorylation Akt/PKB protein kinase which is one of serine/threonine kinases, is known to regulate the survival and death of the cell and glucose metabolism. Thus, Akt/PKB protein kinase has been used as one of the target proteins to find anti-cancer agents from natural products. In this study, human Akt/PKB protein kinase was expressed in Escherichia coli expression system for the mass production. Human Akt/PKB protein kinase expressed in E. coli formed inclusion body under the general condition. However, most of the expressed protein was solubilized under the culture temperature at $27^{\circ}C$ and 0.01-0.09 mM of IPTG for induction of the protein expression. The expressed protein was purified using $Ni^{2+}$-NTA agarose column and confirmed by using anti-Akt antibody. Subsequently, the purified human Akt/PKB protein kinase was activated by in vitro phosphorylation using cellular extract containing kinases. The activated protein was confirmed to phosphorylate the specific fluorescent peptide specially designed as the artificial substrate for Akt/PKB protein kinase.
Kim, Sun-Ok;Sohn, Mi-Jin;Jeong, Soon-Seog;Shin, Jeh-Hoon;Lee, Young-Ik
BMB Reports
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v.32
no.6
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pp.521-528
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1999
The folding of recombinant hepatitis B virus X-protein (rHBx) solubilized from Escherichia coli inclusion bodies was investigated. By sequential dialysis of urea, rHBx was folded into its native structure, which was demonstrated by the efficacy of its transcriptional activation of the adenovirus major late promoter (MLP), fluorescence spectroscopy, and circular dichroism (CD) analysis. The decrease in CD values at 220 nm and a corresponding blue shift of the intrinsic fluorescence emission confirmed the ability of rHBx to refold in lower concentrations of urea, yielding the active protein. Equilibrium and kinetic studies of the refolding of rHBx were carried out by tryptophan fluorescence measurements. From the biphasic nature of the fluorescence curves, the existence of stable intermediate states in the renaturation process was inferred. Reverse phase-high performance liquid chromatography (RP-HPLC) analysis further demonstrated the existence of these intermediates and their apparent compactness.
The ryanodine-receptor $Ca^{2+}$ release channel protein in the sarcoplasmic reticulum membrane of rabbit skeletal muscle plays an important role in muscle exitation-contraction (E-C) coupling. Various types of detergents were tested, including Chaps, cholate, octylglucoside, Zwittergents, Mega-9, Lubrol PX, and Triton X-100 for solubilization of this protein. Among these, Chaps and Triton X-100 were found to optionally solubilize the channel complex. Optimum conditions for this solubilization were pH 7.4 with a salt concentration of 1 M. The addition of phospholipid in the solubilization step helped in stabilizing the protein. The purification of the receptor was performed using sucrose density gradient centrifugation. Various methods [dilution, freeze-thaw, adsorption (Biobeads), and dialysis] were investigated to incorporate the Chaps-solubilized and purified $Ca^{2+}$ release channel protein into liposomes made from different types of phospholipids. Of these, a combined method consisting of a dialysis, freeze-thaw and sonication steps yielded the best results. Reconstituted vesicles produced by this method with 95% phosphatidylcholine (from soybean extract) had good function.
A size exclusion chromatography (SEC) process, in the presence of denaturant in the refolding buffer was developed to refold recombinant human $interferon-\gamma$ ($rhIFN-\gamma$) at a high concentration. The $rhlFN-\gamma$ was overexpressed in E. coli resulting in the formation of inactive inclusion bodies (IBs). The IBs were first solubilized in 8 M urea as the denaturant, and then the refolding process performed by decreasing the urea concentration on the SEC column to suppress protein aggregation. The effects of the urea concentration, protein loading mode and column height during the refolding step were investigated. The combination of the buffer-exchange effect of SEC and a moderate urea concentration in the refolding buffer resulted in an efficient route for producing correctly folded $rhIFN-\gamma$, with protein recovery of $67.1\%$ and specific activity up to $1.2\times10^7\;IU/mg$.
Protein content of okara and soybean were found to be 37.3% and 42.5%, respectively by micro-Kjeldahl analysis. Solubility of okara protein in phosphate buffer (pH 8) was 10% versus soy protein of 68.4%. Insolubilization of okara protein was mostly due to disulfide bonding between cysteine residues caused by excessive heat treatment during soymilk processing: hydrophobic interactions and hydrogen bondings were involved to lesser extent. Optimum extraction temperature and time were $60^{\circ}C$ and 40 min. Typical solubility profile of soy protein disappeared for okara protein though minimum solubility of the protein was around pH 3.0. Treating okara with protease was effective in solubilizing okara protein and solubility increased to 19.2%. Optimum reaction temperature and time were $80^{\circ}C$ and 50 min, respectively. Cell wall degrading enzyme did not increase solubility of the protein, however. Through enzymatic reaction okara protein could be effectively solubilized for uses as food ingredient.
AHN SUN HEE;JEONG SEUNG HA;KIM JIN MAN;KIM YOUNG OK;LEE SANG JUN;KONG IN SOO
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.15
no.2
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pp.354-361
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2005
Vibrio fluvialis, an enteropathogenic bacterium, produces a phospholipase which is thought to be an important factor in the pathogenesis of disease. In this study, the phospholipase gene (vfp) was identified from V fluvialis (KCTC 2473) and its sequence was determined. The entire open reading frame was composed of 1,689 nuc1eotides and 563 amino acids. The phospholipase gene (vfp) was overexpressed in Escherichia coli as a his-tag fused protein. This recombinant protein (rVFP58) was solubilized with 6 M urea and purified by Ni-NTA affinity chromatography. The action mode of rVFP58 was determined by TLC and GC-MS, and it showed phospholipase B activity, which had both phospholipase A and lysophospholipase activities. The rVFP58 showed a maximum activity at pH around 9- 10 and temperature of about 40OC, and it was stable under alkaline condition over pH 9. The cytotoxicity of rVFP58 was evaluated, using a fish cell line, CHSE-2l4, and was found to cause significant cell death after 14 h of exposure to 250 $\mu$g of the protein.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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