Journal of Korean Society of Environmental Engineers
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v.29
no.6
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pp.689-698
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2007
A new technique was proposed for the determination of alkylphenols, chlorophenols and bisphenol A in korean aquatic biological samples. The alkylphenols, chlorophenols and bisphenol A in korean aquatic biological samples were extracted with acetonitrile and then acetonitrile layer was refrigerated at $-60^{\circ}C$ for 2 hours(freezing filtration method). Also, solid-phase extraction(SPE) was used to XAD-4 and subsequent conversion to isobutoxycarbonyl(isoBOC) or tert-butyldimethylsilyl(TBDMS) derivatives for sensitive analysis with gas chromatography/mass spectrometry-selected ion monitoring(GC/MS-SIM) mode. For isoBOC derivatization and TBDMS derivatization the recoveries were $70.1\sim150.6%$ and $93.8\sim108.3%$, the method detection limit(MDLs) of bisphenol A for SIM were $0.062{\mu}g/kg$ and $0.010{\mu}g/kg$, and the SIM respectively. When these methods were applied to korean aquatic biological samples, the concentrations of the 11 phenolic EDCs were $0.675\sim1.970{\mu}g/kg$.
For the identification of unknown drugs in biological samples, we attempted rapid high performance thin layer chromatographic method which is sensitive and selective chromatographic analysis of high performance thin layer chromatography (HPTLC) with automated TLC sampler and ultra-violet (UV) scanner. We constructed HPTLC database (DB) on two hundred five drugs by using the data of Rf values and UV spectra (scan 200-360 nm) as well as gas chromatography/mass spectrometry (GC/MS) DB on ninety six drugs by using the data of relative retention time (RRT) on lidocain and mass spectra. After extracting drugs in biological sample by solid phase extraction (Clean Screen ZSDAU020), we applied them to HPTLC and GC/MS DB. Drugs, especially extracted from biological samples, showed good matching ratio to HPTLC DB and these drugs were confirmed by GC/MS. In conclusion, this DB system is thought to be very useful method for the screening of unknown drugs in biological samples.
The aim of this study was to develop an analytical method for sulfonamide antibiotics (sulfadiazine, sulfamerazine, sulfamethazine, sulfamethoxazole, sulfathiazole) and their metabolites ($N^4$-acetylsulfadiazine, $N^4$-acetylsulfamerazine, $N^4$-acetylsulfamethazine, $N^4$-acetylsulfamethoxazole, sulfamethoxazole-$N^1$-glucuronide) in environmental samples. The solid phase extraction (SPE) with LC/ESI-MS/MS have been used for the analysis of target compounds, and the recoveries of SPE clean-up were at the range of 12-94% for C18 cartridge, 60-95% for HLB cartridge, 25-123% for MCX cartridge, and 70-90% for tandem HLB/MCX. By established method, detection limit, recovery, and relative standard deviation were 0.001~0.187 ng/mL, 66~115%, and 5~17%, respectively. This method was effective and sensitive to use for the simultaneous determination of sulfonamide antibiotics and their metabolites in environmental samples. Four sulfonamide antibiotics were detected at the range of 0.008~2.153 ng/mL. For metabolites, only $N^4$-acetylsulfamethoxazole was detected, but the concentration was under the MDL level.
Anatoxin-a is a cyanobacterial neurotoxin with a high toxicity produced by Anabaena, Aphanizomenon and Oscillatoria. Water bloom, formed by Anabaena has been occurring frequently in Lake Yeongchun. It is need to develop a sensitive method for determination of anatoxin-a to control potential hazard in raw water resources. In this study, we developed a highly sensitive analytical method of anatoxin-a using solid phase extraction (SPE) and high performance liquid chromatography (HPLC) with fluorescence detection. Anatoxin-a was converted into a highly fluorescent derivative using 4-fuoro-7-nitro-2,1,3-benzoxadiazole (NBF-F). The method was evaluated in terms of linearity of calibration curve, recovery and repeatability, and the adequate values were obtained. The method detection limit was $0.034\;{\mu}g/g$ and $0.022\;{\mu}g/L$ for algal and water samples, respectively. The concentrations of anatoxin-a were measured in algal and water samples from Lake Andong, Yeongchun and Daechung and ranged from $0.135\;{\mu}g/g$ to $10.979\;{\mu}g/g$ in algal samples and not detected in water samples.
A rapid and simple analytical method for the determination of 9 isomaltooligosaccharides (IMO) species in yoghurts was developed using dispersive solid phase extraction (dSPE) clean-up technic and high performance liquid chromatography with evaporative light-scattering detector (HPLC-ELSD). In this study, 9 IMO were extracted from samples simply with chemical reagent using ISO22662 IDF198 method and additional dSPE clean-up. The optimum instrument conditions for the determination were used carbohydrate ES $5{\mu}$ column with gradient elution of water and acetonitrile and ELS detector. The linearity of this method was expressed as the correlation coefficient ($r^2$), the results of IMO 9 species were shown in 0.9999. LOD and LOQ were respectively 7.9-22.1 mg/kg, 25.9-72.8 mg/kg. The accuracy of intra- and inter-day measurements were in the range from $84.3{\pm}4.5$ to $104.9{\pm}6.5%$, and the preceision of the intra- and inter-day measurements were in the range from 0.8 to 7.7%. The recoveries were from $84.3{\pm}4.5$ to $104.9{\pm}6.5%$. The determination results of IMO 9 species for the 9 yoghurts circulated in the market were in the range from $0.317{\pm}0.007$ to $1.624{\pm}0.050$ g/100 g. The newly developed method is appropriate for the determination of IMO in yoghurts, is a rapid and simple method with excellent resolution in compared with previous method.
Lee, Han Sol;Park, Ji-Su;Lee, Su Jung;Shin, Hye-Sun;Kim, Ji-Young;Yun, Sang Soon;Jung, Yong-hyun;Oh, Jae-Ho
Korean Journal of Environmental Agriculture
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v.39
no.3
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pp.246-252
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2020
BACKGROUND: Pesticides are broadly used to control weeds and pests, and the residues remaining in crops are managed in accordance with the MRLs (maximum residue limits). Therefore, an analytical method is required to quantify the residues, and we conducted a series of analyses to select and validate the quick and simple analytical method for tolpyralate in five agricultural products using QuEChERS (quick, easy, cheap, effective, rugged and safe) method and LC-MS/MS (liquid chromatography-tandem mass spectrometry). METHODS AND RESULTS: The agricultural samples were extracted with acetonitrile followed by addition of anhydrous magnesium sulfate, sodium chloride, disodium hydrogencitrate sesquihydrate and trisodium citrate dihydrate. After shaking and centrifugation, purification was performed with d-SPE (dispersive-solid phase extraction) sorbents. To validate the optimized method, its selectivity, linearity, LOD (limit of detection), LOQ (limit of quantitation), accuracy, repeatability, and reproducibility from the inter-laboratory analyses were considered. LOQ of the analytical method was 0.01 mg/kg at five agricultural products and the linearity of matrix-matched calibration were good at seven concentration levels, from 0.0025 to 0.25 mg/L (R2≥0.9980). Mean recoveries at three spiking levels (n=5) were in the range of 85.2~112.4% with associated relative standard deviation values less than 6.2%, and the coefficient of variation between the two laboratories was also below 13%. All optimized results were validated according to the criteria ranges requested in the Codex Alimentarius Commission (CAC) and Ministry of Food and Drug Safety (MFDS) guidelines. CONCLUSION: In conclusion, we suggest that the selected and validated method could serve as a basic data for detecting tolpyralate residue in imported and domestic agricultural products.
Proceedings of the Korean Society of Toxicology Conference
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2006.11a
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pp.65-74
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2006
Modem drug discovery requires rapid pharmacokinetic evaluation of chemically diverse compounds for early candidate selection. This demands the development of analytical methods that offer high-throughput of samples. Naturally, liquid chromatography / tandem mass spectrometry (LC-MS/MS) is choice of the analytical method because of its superior sensitivity and selectivity. As a result of the short analysis time(typically 3-5min) by LC-MS/MS, sample preparation has become the rate- determining step in the whole analytical cycle. Consequently tremendous efforts are being made to speed up and automate this step. In a typical automated 96-well SPE(solid-phase extraction) procedure, plasma samples are transferred to the 96-well SPE plate, internal standard and aqueous buffer solutions are added and then vacuum is applied using the robotic liquid handling system. It takes only 20-90 min to process 96 samples by automated SPE and the analyst is physically occupied for only approximately 10 min. Recently, the ultra-high flow rate liquid chromatography (turbulent-flow chromatography)has sparked a huge interest for rapid and direct quantitation of drugs in plasma. There is no sample preparation except for sample aliquotting, internal standard addition and centrifugation. This type of analysis is achieved by using a small diameter column with a large particle size(30-5O ${\mu}$m) and a high flow rate, typically between 3-5 ml/min. Silica-based monolithic HPLC columns contain a novel chromatographic support in which the traditional particulate packing has been replaced with a single, continuous network (monolith) of pcrous silica. The main advantage of such a network is decreased backpressure due to macropores (2 ${\mu}$m) throughout the network. This allows high flow rates, and hence fast analyses that are unattainable with traditional particulate columns. The reduction of particle diameter in HPLC results in increased column efficiency. use of small particles (<2 urn), however, requires p.essu.es beyond the traditional 6,000 psi of conventional pumping devices. Instrumental development in recent years has resulted in pumping devices capable of handling the requirements of columns packed with small particles. The staggered parallel HPLC system consists of four fully independent binary HPLC pumps, a modified auto sampler, and a series of switching and selector valves all controlled by a single computer program. The system improves sample throughput without sacrificing chromatographic separation or data quality. Sample throughput can be increased nearly four-fold without requiring significant changes in current analytical procedures. The process of Bioanalytical Method Validation is required by the FDA to assess and verify the performance of a chronlatographic method prior to its application in sample analysis. The validation should address the selectivity, linearity, accuracy, precision and stability of the method. This presentation will provide all overview of the work required to accomplish a full validation and show how a chromatographic method is suitable for toxirokinetic sample analysis. A liquid chromatography/tandem mass spectrometry (LC-MS/MS) method developed to quantitate drug levels in dog plasma will be used as an example of tile process.
Kim, Hyub;Hong, Jong-Ki;Kim, Yong-Hwa;Kim, Kyoung-Rae
Analytical Science and Technology
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v.15
no.3
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pp.196-213
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2002
The alkylphenols, chlorophenols and bisphenol A were determined by gas chromatography/mass spectrometry-selected ion monitoring mode followed by three work-up methods for comparison; EPA method, isoBOC derivatization method and TBDMS derivatization method. Eleven phenols in water samples were extracted with dichloromethane. Also, solid-phase extraction (SPE) with XAD-4 and subsequent conversion to isobutoxycarbonyl derivatives or tert.-butyldimethylsilyl derivatives for sensitive analysis with the selected ion-monitoring (SIM) mode. The recoveries were 85.1~109.9% (EPA method) and 90.3~126.6% (isoBOC derivatization and TBDMS derivatization), respectively. The method detection limit of bisphenol A for SIM were 0.732 ${\mu}g/{\ell}$ (EPA method), 0.002 ${\mu}g/{\ell}$ (isoBOC derivatization) and 0.021 ${\mu}g/{\ell}$ (TBDMS derivatization). The SIM responses were linear with the correlation coefficient varying 0.9755~0.9981 (isoBOC derivatization), and 0.9908~0.9996 (TBDMS derivatization). When these methods were applied to treated wastewater sample from a polyethylene plant, the concentrations of 11 phenols were below the method detection limit.
Park, Ji-Su;Lee, Han Sol;Lee, Su Jung;Shin, Hye-Sun;Shim, Jae-Han;Yun, Sang Soon;Jung, Yong-hyun;Oh, Jae-Ho
Korean Journal of Environmental Agriculture
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v.39
no.2
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pp.130-137
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2020
BACKGROUND: Mefentrifluconazole and triticonazole are the triazole fungicides. The maximum residue levels for agricultural products need to be set up. Therefore, development of the official analytical method for determination of mefentrifluconazole and triticonazole residues from agricultural crops was necessary due to safety management, and then a simultaneous analytical method was developed for the determination of mefentrifluconazole and triticonazole in agricultural crops. METHODS AND RESULTS: Samples were extracted using acetonitrile and purified using dispersive solid phase extraction, and then detected with liquid chromatograph-tandem mass spectrometry (LC-MS/MS). Matrix-matched calibration curves (0.0025-0.25 ㎍/mL) were linear into a sample extract with r2>0.99. For validation, the recovery test was carried out at three fortification levels (LOQ, 10 LOQ and 50 LOQ) from agricultural samples. The results for mefentrifluconazole and triticonazole ranged between 92.3 to 115.3% and 91.4 to 108.5%, respectively and RSD (relative standard deviation) values were also below 6.0%. Furthermore, inter-laboratory was conducted to validate the method. CONCLUSION: All values were corresponded with the criteria ranges requested by both the CODEX (CAC/GL 40-1993, 2003) and MFDS guidelines (2016). Therefore, the proposed method can be used as an official analytical method for determination of mefentrifluconazole and triticonazole (triazole fungicides) in the Republic of Korea.
A method using liquid chromatography-tandem mass spectrometry (LC-MS/MS) was developed for neonicotinoid pesticide analysis in agricultural products. Four compounds (imidacloprid, clothianidin, acetamiprid, thiacloprid) were extracted with acetonitrile from agricultural products and cleaned up by NH2 solid-phase extraction procedure, and eluted with 0.1% formic acid in methanol/dichloromethane (5/95, v/v). The limit of detection and quantification were 0.0001-0.0005 mg/kg and 0.001 mg/kg, respectively. The mean recoveries of neonicotinoid pesticide from agricultural products were in the range of 90.7-100.9% and 94.4-99.8%, as spiked at 0.2 mg/kg and 0.02 mg/kg, respectively. This validation satisfied the national criteria for pesticide analytical methods. In summary, The present method is fast, precise and sensitive enough for the Positive List System (PLS), and we conclude that the method is also suitable for neonicotinoid pesticide determination in a wide range of agricultural products.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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