Bacterial soft rot caused by Pectobacterium carotovorum subsp. carotovorum (Pcc) is one of the most severe diseases in radish cultivation. To control this plant disease, the most effective method has been known to cultivate resistant cultivars. Previously, we developed an efficient bioassay method for investigating resistance levels with 21 resistant and moderately resistant cultivars of radish against a strain Pcc KACC 10421. In this study, our research expanded to investigate the resistance of radish cultivars against six Pcc strains, KACC 10225, KACC 10421, ATCC 12312, ATCC 15713, LY34, and ECC 301365. To this end, the virulence of the six Pcc strains was determined based on the development of bacterial soft rot in seedlings of four susceptible radish cultivars. The results showed that the Pcc strains exhibited different virulence in the susceptible cultivars. To explore the race differentiation of Pcc strains corresponding to the resistance in radish cultivars, we investigated the occurrence of bacterial soft rot caused by the six Pcc strains on the 21 resistant and moderate resistant cultivars. Our results showed that the average values of the area under the disease progress curve were positively correlated with the virulence of the strains and the number of resistant cultivars decreased as the virulence of Pcc strains increased. Taken together, our results suggest that the resistance to Pcc of the radish cultivars commercialized in Korea is more likely affected by the virulence of Pcc strains rather than by race differentiation of Pcc.
Bacterial soft rot, caused by Pectobacterium carotovorum subsp. carotovorum (Pcc), is one of the destructive diseases of radish (Raphanus sativus) in Asian countries. The objective of this study was to establish an efficient bioassay method for the evaluation of bacterial soft rot resistance in commercial radish cultivars. First, an efficient bioassay method for examining resistance to bacterial soft rot in commercial radish cultivars was investigated. Six commercial radish cultivars were tested under various conditions: two temperatures (25℃ and 30℃), three inoculations methods (drenching, spraying, and root dipping), and two growth stages (two- and four-leaf stages). The results suggested that spraying with 1×106 cfu/ml of bacterial inoculums during the four-leaf stage and incubating at 30℃ could be the most efficient screening method for bacterial soft rot resistance in commercial radish cultivars. Second, we investigated the degree of resistance of 41 commercial radish cultivars to five Pcc isolates, namely KACC 10225, KACC 10343, KACC 10421, KACC 10458, and KACC 13953. KACC 10421 had the strongest susceptibility in terms of moderately resistant disease response to bacterial soft rot. Out of the 41 radish cultivars, 13 were moderately resistant to this pathogen, whereas 28 were susceptible. The moderately resistant radish cultivars in this investigation could serve as resistance donors in the breeding of soft rot resistance or could be used to determine varietal improvement for direct use by breeders, scientists, farmers, researchers, and end customers.
Sclerotinia rot symptoms were observed in stringy stonecrop (Sedum sarmentosum) plants growing in vinyl greenhouses in Yeoju and Icheon, Gyeonggi Province, Korea, during disease surveys in spring 2019 and 2020. The initial symptoms were soft rot on stems and leaves at or above the soil line. Furthermore, the symptoms progressed upwards, and the infected plant parts exhibited white to grayish-yellow discoloration. The infestation of diseased plants in the vinyl greenhouses was 1-5% at the two locations examined. Eight isolates of Sclerotinia sp. were obtained from lesions of the diseased plants. The isolates were identified as Sclerotinia sclerotiorum based on their morphological and molecular characteristics. In addition, artificial inoculation tested three isolates of S. sclerotiorum for pathogenicity on stringy stonecrop plants. All the tested isolates caused Sclerotinia rot symptoms in the inoculated plants. The symptoms were similar to those observed in plants from the vinyl greenhouses investigated. This study is the first report of S. sclerotiorum causing Sclerotinia rot in stringy stonecrop.
The SS (Bacillus subtilis 10%), WS (Microbial extract 70%), and DS (Sulfur 78%) agents were selected by mycelial growth inhibitory effect test against kiwifruit soft rot pathogen (B. dothidea) with 11 kinds of environment-friendly agricultural materials on PDA medium for 10 days. They showed at 94.2%, 65.2%, 58.9%, respectively. The control value of WS and SS agents were better than DS in storage experiment. It was effective SS and WS single application, DS-WS and WS-SS alternate application in the field trial.
Gamma irradiation was evaluated for its in vitro and in vivo antibacterial activity against a postharvest bacterial pathogen, Erwinia carotovora subsp. carotovora (Ecc). Gamma irradiation in a bacteria cell suspension resulted in a dramatic reduction of the viable counts as well as an increase in the amounts of DNA and protein released from the cells. Gamma irradiation showed complete inactivation of Ecc, especially at a dose of 0.6 kGy. In addition, scanning electron microscopy of irradiated cells revealed severe damage on the surface of most bacterial cells. Along with the morphological changes of cells by gamma irradiation, it also affected the membrane integrity in a dose-dependent manner. The mechanisms by which the gamma irradiation decreased the bacterial soft rot can be directly associated with the disruption of the cell membrane of the bacterial pathogen, along with DNA fragmentation, results in dose-dependent cell inactivation. These findings suggest that gamma irradiation has potential as an antibacterial approach to reduce the severity of the soft rot of paprika.
Identifying the extracellular metabolites of microorganisms in fresh vegetables is industrially useful for assessing the quality of processed foods. Pectobacterium carotovorum subsp. carotovorum (PCC) is a plant pathogenic bacterium that causes soft rot disease in cabbages. This microbial species in plant tissues can emit specific volatile molecules with odors that are characteristic of the host cell tissues and PCC species. In this study, we used headspace solid-phase microextraction followed by gas chromatography coupled with mass spectrometry (HS-SPME-GC-MS) to identify volatile compounds (VCs) in PCC-inoculated cabbage at different storage temperatures. HS-SPME-GC-MS allowed for recognition of extracellular metabolites in PCC-infected cabbages by identifying specific volatile metabolic markers. We identified 4-ethyl-5-methylthiazole and 3-butenyl isothiocyanate as markers of fresh cabbages, whereas 2,3-butanediol and ethyl acetate were identified as markers of soft rot in PCC-infected cabbages. These analytical results demonstrate a suitable approach for establishing non-destructive plant pathogen-diagnosis techniques as alternatives to standard methods, within the framework of developing rapid and efficient analytical techniques for monitoring plant-borne bacterial pathogens. Moreover, our techniques could have promising applications in managing the freshness and quality control of cabbages.
To screen antagonistic fungi against plant pathogens, dual culture assay (DCA) and culture filtrate assay (CFA) were performed with unknown soil-born fungi. Among the different fungi isolated and screened from the soil, fungal isolate ANU-301 successfully inhibited growth of different plant pathogenic fungi, Colletotrichum acutatum, Alternaria alternata, and Fusarium oxysporum, in DCA and CFA. Morphological characteristics and rDNA internal transcribed spacer sequence analysis identified ANU-301 as Aspergillus terreus. Inoculation of tomato plants with Fusarium oxysporum f. sp. lycopersici (FOL) induced severe wilting symptom; however, co-inoculation with ANU-301 significantly enhanced resistance of tomato plants against FOL. In addition, culture filtrate (CF) of ANU-301 not only showed bacterial growth inhibition activity against Dickeya chrysanthemi (Dc), but also demonstrated protective effect in potato tuber against soft rot disease. Gas chromatography-tandem mass spectrometry analysis of CF of ANU-301 identified 2,4-bis(1-methyl-1-phenylethyl)-phenol (MPP) as the most abundant compound. MPP inhibited growth of Dc, but not of FOL, in a dose-dependent manner, and protected potato tuber from the soft rot disease induced by Dc. In conclusion, Aspergillus terreus ANU-301 could be used and further tested as a potential biological control agent.
Soo-Min Hong;Kyoung-Taek Park;Leonid N. Ten;Chang-Gi Back;In-Kyu Kang;Seung-Yeol Lee;Hee-Young Jung
Research in Plant Disease
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v.29
no.3
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pp.304-309
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2023
Wilted and water-soaked lesion symptoms were observed on cucumbers in greenhouses located in Daejeon, Chungcheongnam-do, Korea, in June 2021. A bacterial strain, designated KNUB-04-21, was isolated from the cucumbers, which was subsequently identified as Pectobacterium brasiliense through a phylogenetic analysis based on sequences of the 16S rRNA region, dnaX, leuS, and recA genes. The biochemical characteristics of KNUB-04-21 were also similar to those of P. brasiliense through investigation using the API ID 32 GN system. The pathogenicity of KNUB-04-21 was confirmed by inoculating it into healthy cucumber plants. The reisolated strains were also found to be same to the original strain. To our knowledge, this is the first report of P. brasiliense being identified as the causative agent of cucumber soft rot in Korea.
Ismaila Yakubu;Ji Ho Song;Yun Ju Lee;Min A Son;Su Hyeon Han;Hyun Gi Kong
Research in Plant Disease
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v.30
no.1
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pp.95-98
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2024
In a survey conducted in March 2023, Euphorbia hypogaea plants cultivated within greenhouses in Yongin, Korea exhibited water-soaked areas near the stem base, close to the soil. Subsequent isolation from diseased E. hypogaea led to the identification of a bacterial strain, designated as CBNUMPBL-103. The isolate was identified as Dickeya dadantii through sequencing of the 16s rRNA and phylogenetic analysis. The pathogenicity of the isolate was confirmed by inoculating it into healthy E. hypogaea, resulting in the manifestation of similar symptoms observed during the survey. The re-isolated strain recovered from inoculated plants showed a similar morphology with the inoculated strain. This is the first documentation of D. dadantii causing soft rot of E. hypogaea in Korea.
Post-harvest diseases of kiwifruit caused severe damages on the fruits during storage, transportation, marketing and consumption. Phomopsis sp. was reported to be one of the major causal organisms of post-harvest fruit rots of kiwifruit. Symptoms of stem-end rot caused by Phomopsis sp. appeared at the stem-end area of the fruit as it ripened. The brown pubescent skin at the area became soft and lighter in color than the adjacent firm healthy tissues. A watery exudate and white mycelial mats were frequently visible at the stem-end area forming a water-drop stain down the sides on the dry brown healthy skin. When the skin was peeled back, the affected flesh tissue was usually watersoaked, disorganized, soft and lighter green than the healthy tissue. Phomopsis sp. was consistently isolated from the diseased fruits, and its pathogenicity was confirmed by an artificial inoculation test on healthy fruit of kiwifruits. The mycological characteristics of the telemorph state of the fungus produced on potato-dextrose agar were in accordance with those of Diaporthe actinidiae. This is the first report on the occurrence of a telemorph state of D. actinidiae as the causal organism of stem-end rot of kiwifruit in Korea.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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