A modified actinomycin D was prepared with a hydroxyl group that replaced the amino group at the chromophore 2-position, a substitution known to strongly reduce affinity for double-stranded DNA. Interactions of the modified drug on single-stranded DNAs of the defined sequence were investigated. Competition assays showed that 2-hydroxyactinomycin D has low affinity for two oligonucleotides that have high affinities ($K_a\;=\;5-10{\times}10^6\;M^{-1}$ oligomer) for 7-aminoactinomycin D and actinomycin D. Primer extension inhibition assays performed on several single-stranded DNA templates totaling around 1000 nt in length detected a single high affinity site for 2-hydroxyactinomycin D, while many high affinity binding sites of unmodified actinomycin D were found on the same templates. The sequence selectivity of 2-hydroxyactinomycin D binding is unusually high and approximates the selectivity of restriction endonucleases. Binding appears to require a complex structure, including residues well removed from the polymerase pause site.
The spectral properties, namely the circular dichroism, electric absorption and luminescence properties, of Λ- and Δ-[Ru(II)(1,10-phenanthroline)2benzodipyrido[b:3,2-h:2',3'-j]phenazine]2+ ([Ru(phen)2BDPPZ]2+) in the presence and absence of single stranded poly(dA) and poly(dT) were compared in this work. In the presence of single stranded DNAs, hypochromism in the absorption spectrum and significant changes in the circular dichroism spectrum in the ligand absorption band were apparent, indicating the strong interaction of the [Ru(phen)2BDPPZ]2+ complex with the single stranded DNAs. The luminescence intensity of the Ru(II) complex decreased stoichiometrically with increasing concentrations of the single stranded DNAs. All of these spectral changes were independent of the configuration of the Ru(II) complex and the nature of the DNA bases. Therefore, it is conceivable that both enantiomers of the [Ru(phen)2BDPPZ]2+ complex interact electrostatically with the negatively charged phosphate groups of DNA. However, the spectral properties of [Ru(II)(1,10-phenanthroline)3]2+ were not altered even in the presence of single stranded DNAs. Therefore, the size of the ligand involved in the interaction of the metal complex with the phosphate group of DNA may play an important role, even when the nature of the interaction is electrostatic.
I report that single-stranded antisense as a part of large circular (LC-) genomic DNA of recombinant M13 phage exhibits enhanced stability, sequence specific antisense activity, and no need for target site search. A cDNA fragment (708 bp) of rat TNF-$\alpha$ was inserted into a phagemid vector, and TNF-$\alpha$ antisense molecules (TNF$\alpha$-LCAS) were produced as single-stranded circular DNA. When introduced into a rat monocyte/macrophage cell line, WRT7/P2, TNF$\alpha$-LCAS was able to ablate LPS-induced TNF-$\alpha$ mRNA to completion. The antisense effect of TNF$\alpha$-LCAS was shown to be sequence-specific because expressions of three control genes ($\beta$-actin, GAPDH and IL-1$\beta$) were not significantly altered by the antisense treatment. Further, TNF$\alpha$-LCAS was found to be highly efficacious as only 0.1 $\mu$g (0.24 nM) of TNF$\alpha$-LCAS was sufficient to block TNF-$\alpha$ expression in 1$\times10^5$ WRT7/P2 cells. I have also observed specific antisense activity in reduction of NF-$\kappa$B gene expression. The results suggest that an antisense sequence as a part of single-stranded circular genomic DNA has a specific antisense activity.
One of the important roles of a DNA chip is the capability of detecting genetic diseases and mutations by analyzing DNA sequence. For a successful electrochemical genotyping, several aspects should be considered including the chemical treatment of electrode surface, DNA immobilization on electrode, hybridization, choice of an intercalator to be selectively bound to double standee DNA, and an equipment for detecting and analyzing the output signal. Au was used as the electrode material, 2-mercaptoethanol was used for linking DNA to Au electrode, and methylene blue was used as an indicator that can be bound to a double stranded DNA selectively. From the analysis of reductive current of this indicator that was bound to a double stranded DNA on an electrode, a normal double stranded DNA was able to be distinguished from a single stranded DNA in just a few seconds. Also, it was found that the peak reduction current of indicator is proportional to the concentration of target DNA to be hybridized with probe DNA. Therefore, it is possible to realize a sim71e and cheats DNA sensor using the electrochemical measurement for genotyping.
T7박테리오파지 gp4는 dTTP 가수분해에너지를 이용하여 DNA복제시 이중 나선 DNA를 단일가닥 DNA로 풀어내는 나선효소(helicase)이다. T7 나선효소의 활성형의 4차구조는 한가운데 구멍을 지닌 육량체 고리모양이다. 단일가닥 DNA는 나선효소가 $5'\rightarrow3'$방향으로 이동할 때 육량체 고리의 구멍으로 빠져나간다. 이러한 DNA의 이중나선 풀어헤침을 빠른 효소반응속도 측정법을 이용하여 정량적으로 측정하였으며, 그 결과 단일가닥 DNA 산물들이 생성되기 전에 지연상태(lag phase)가 존재함을 관찰하였다. 이러한 지연상태를 나선효소에 의한 이중나선 DNA의 풀어헤침이 속도론적 단계과정(kinetic stepping)을 거친다는 모델로써 분석하였다. 예상대로 이중나선의 길이가 클수록 지연상태의 지속시간이 늘어났다. $\tau7$ 나선효소가 이중나선 DNA를 풀어내는 과정에서 넣어준 trap DNA는 풀어내는 이중나선 DNA의 양을 변화시키지 못하여서, $\tau7$ 나선효소가 매우 큰 공정성을 지닌 효소임을 알 수 있었다. 이러한 속도론적 data를 global fitting법을 써서 kinetic stepping 모델에 적용한 결과 매 단계(step)마다 10∼l개의 염기쌍이 풀려지고 1초당 3.7번의 step이 일어난다는 것을 알 수 있었다. DNA 풀어헤침과 dTTP가수분해의 메커니즘과 이들의 연계성은 $4∼37^{\circ}C$사이의 온도범위에서 영향을 받지 않았다. 이상을 종합할 때, T7나선효소의 이중나선 DNA의 풀어헤침 시 나타나는 속도론적 단계과정은 DNA복제 시 이용되는 나선효소의 내재적 속성임을 알 수 있다.
Esherichia coli(E. coli) K12 균주를 숙주세포로 삼는 박테리오파아지인 N4는 single-stranded DNA에 결합하는 단백질인 N4SSB(bacteriophage N4-coded single-stranded DNA-binding protein) 단백질을 만든다. N4SSB 단백질은 N4 DNA replication 뿐만 아니라 late transcription과 N4 DNA recombination에도 필요한 여러 가지 기능을 가진 단백질이다. N4 late transcription은 숙주세포인 E. coli의 $E{\sigma}^{70}$ RNA polymerase에 의해서 수행이 되나 N4SSB 단백질을 반드시 필요로 하기 때문에 N4SSB 단백질이 생성될 때까지는 N4 late promoter로부터 RNA 합성이 일어나지 않는다. 본 연구에서는 N4SSB의 N4 DNA replication과 late transcription, 그리고 N4 DNA recombination에 필요한 영역(domain)을 알아내기 위해서 여러 가지 돌연변이형 N4SSB 단백질을 만들어 N4 DNA replication과 late transcription, 그리고 N4 DNA recombination의 3가지 작용에 대한 in vivo 활성을 조사 분석하였다. 그 결과 N4SSB 단백질의 C-말단기에 있는 7개의 아미노산이 N4SSB 단백질의 활성에 중요하다는 것을 알 수 있었다. 특히 C-말단기의 7개의 아미노산에는 세 개의 lysine이 포함되어 있는데 이 lysine이 N4SSB 단백질의 활성에 중요한 역할을 한다는 것이 제시되었다.
We have studied the migration behavior of single-stranded DNA using capillary gel electrophoresis under various conditions. It was found that optimum electric fields should be less than 150 V/cm for the good tradeoff between the separation time and the resolution. It seems that the gel matrix with the combination of different polymer average molecular weights is important to extend the maximum readable DNA bases. The total gel concentration less than 3.1% in the mixed gel system showed good separation efficiency up to 600 bases. The best result was obtained with the poy(ethylene)oxide (PEO) gel concentration of 1.2% of Mr 8,000,000 and 1.8% of Mr 600,000. We observed that the capillary length between 50 cm to 100 cm (effective length) should be employed for the optimization between the total DNA migration time and the maximum readable length. A trizma base-boric acid-ethlyenediaminetetraacetic acid (EDTA) (TBE) buffer was commonly used for DNA sequencing, but we found that 3-[tris(hydroxymethyl)methyl amino]-1-propane sulfonic acid (TAPS) buffer worked as well for the single-stranded DNA separation. Especially, TAPS buffer showed a good resolution for very short DNA bases (1 to 30 bases).
Single-stranded DNA binding protein (SSB) is well-characterized as having a helix-destabilizing activity. The helix-destabilizing capability of SSB has been re-examined in this study. The results of restriction endonuclease protection assays and titration experiments suggest that the stimulatory effect of SSB on strand exchange acts by melting out the secondary structure which is inaccessible to RecA protein binding; however, SSB is excluded from regions of secondary structure present in native single-stranded DNA. Complexes of SSB and RecA protein are required for eliminating the secondary structure barriers under optimal conditions for strand exchange.
Gopal, Dhayaalini Bala;Lim, Chua Ang;Khaithir, Tzar Mohd Nizam;Santhanam, Jacinta
한국미생물·생명공학회지
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제45권4호
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pp.358-364
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2017
Asymmetric PCR preferentially amplifies one DNA strand for use in DNA hybridization studies. Linear-After-The-Exponential-PCR (LATE-PCR) is an advanced asymmetric PCR method which uses innovatively designed primers at different concentrations. This study aimed to optimise LATE-PCR parameters to produce single-stranded DNA of Candida spp. and Aspergillus spp. for detection via probe hybridisation. The internal transcribed spacer (ITS) region was used to design limiting primer and excess primer for LATE-PCR. Primer annealing and melting temperature, difference of melting temperature between limiting and excess primer and concentration of primers were optimized. In order to confirm the presence of single-stranded DNA, the LATE-PCR product was hybridised with digoxigenin labeled complementary oligonucleotide probe specific for each fungal genus and detected using anti-digoxigenin antibody by dot blotting. Important parameters that determine the production of single-stranded DNA in a LATE-PCR reaction are difference of melting temperature between the limiting and excess primer of at least $5^{\circ}C$ and primer concentration ratio of excess primer to limiting primer at 20:1. LATE-PCR products of Candida albicans, Candida parapsilosis, Candida tropicalis and Aspergillus terreus at up to 1:100 dilution and after 1 h hybridization time, successfully hybridised to respective oligonucleotide probes with no cross reactivity observed between each fungal genus probe and non-target products. For Aspergillus fumigatus, LATE-PCR products were detected at 1:10 dilution and after overnight hybridisation. These results indicate high detection sensitivity for single-stranded DNA produced by LATE-PCR. In conclusion, this advancement of PCR may be utilised to detect fungal pathogens which can aid the diagnosis of invasive fungal disease.
Kim, Min-Gyu;Shin, Tae-Hoan;Choi, Seo-Ree;Choi, Jae-Gyu;Lee, Joon-Hwa
한국자기공명학회논문지
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제20권3호
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pp.66-70
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2016
The replication protein A (RPA), is a heterotrimer with 70, 32 and 14 kDa subunits and plays a crucial role in DNA replication, recombination, and repair. The largest subunit, RPA70, binds to single-stranded DNA (ssDNA) and mediates interactions with many cellular and viral proteins. In this study, we performed nuclear magnetic resonance experiments on the complex of the DNA binding domain A of human RPA70 (RPA70A) with ssDNA, d(CCCCC), at various temperatures, to understand the temperature dependency of ssDNA binding affinity of RPA70A. Essential residues for ssDNA binding were conserved while less essential parts were changed with the temperature. Our results provide valuable insights into the molecular mechanism of the ssDNA binding of human RPA.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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