지지벡터기계는 자료간의 유사도를 커널함수를 사용하여 계산하고, 이러한 유사도를 이용하여 패턴을 분류하는 최적인 초평면을 구한다. 따라서 자료의 특성을 효과적으로 반영할 수 있는 유사도의 사용이 중요하다. 본 연구에서는 아미노산 서열간의 최적의 유사도를 얻기 위해서, 아미노산의 진화적인 관계와 소수성으로부터 유도된 메트릭을 실수 지수를 가지는 형태로 일반화하였다. 제안한 메트릭이 메트릭의 조건을 만족하고, 아미노산 서열과 DNA 서열의 유사도를 계산하기 위해서 널리 사용되는 스트링 커널내에서 이용되는 메트릭파의 관련성을 알아본다. 또한, 적용하려는 문제에 보다 효과적인 메트릭을 일반화 메트릭에서 찾을 수 있음을 신호펩티드의 절단위치 예측실험을 통하여 알아본다.
본 논문에서는 미지의 아미노산 서열이 신호 펩티다제 I에 의해 절단되는 분비성 단백질인지를 판별하고, 분비성 단백질일 경우에는 절단 위치를 예측하는 방법을 제안한다. 아미노산의 소수성을 이용한 전처리를 수행하여 분비성 단백질의 선도서열인 신호서열의 존재와 절단 위치를 추정한다. 전처리를 통해서 신호서열 아닌 서열을 초기에 제외함으로써 신호서열 예측의 정확도를 높인다. 지지벡터기계를 신호서열의 예측에 효과적으로 적용하기 위해서, 생물학적 정보와 관련된 아미노산 서열간의 거리를 제안한다. 아미노산의 세포내 위치를 예측할 수 있는 소수성 척도와 아미노산의 진화적인 관계를 나타낼 수 있는 치환행렬을 이용하여 아미노산 서열간의 거리를 정의한다. Swiss-Prot release 50 단백질 자료에 대하여 교차타당성 기법을 사용하여 실험한 결과 제안한 방법은 신호서열중에 98.9%를 신호서열로 판별하였고, 88%의 절단위치 예측정확도를 보였다. 기존의 방법과의 비교실험을 통해서 제안한 방법이 신호서열의 예측에 더욱 효과적임을 확인하였다.
The secretion efficiency of a protein in a Sec-type secretion system is mainly determined by an N-terminal signal peptide and its combination with its cognate protein. Five signal peptides, namely, two synthetic Sec-type and three Bacillus licheniformis alpha-amylase-derived signal peptides, were compared for periplasmic expression of the human growth hormone (hGH) in E. coli. Based on in silico predictions on the signal peptides' cleavage efficiencies and their corresponding mRNA secondary structures, a number of amino acid substitutions and silent mutations were considered in the modified signal sequences. The two synthetic signal peptides, specifically designed for hGH secretion in E. coli, differ in their N-terminal positively charged residues and hydrophobic region lengths. According to the mRNA secondary structure predictions, combinations of the protein and each of the five signal sequences could lead to different outcomes, especially when accessibility of the initiator ATG and ribosome binding sites were considered. In the experimental stage, the two synthetic signal peptides displayed complete processing and resulted in efficient secretion of the mature hGH in periplasmic regions, as was demonstrated by protein analysis. The three alpha-amylase-derived signal peptides, however, were processed partially from their precursors. Therefore, to achieve efficient secretion of a protein in a heterologous system, designing a specific signal peptide by using a combined approach of optimizations of the mRNA secondary structure and the signal peptide H-domain and cleavage site is recommended.
The complete nucleotide sequence of the Bacillus circulans F-2 RSDA gene, coding for raw starch digesting a-amylase (RSDA), has been determined. The RSDA structure gene consists of an open reading frame of 2508 bp. Six bp upstream of the translational start codon of the RSDA is a typical gram-positive Shine-Dalgarno sequence and the RSDA encodes a preprotein of 836 amino acids with an Mr of 96, 727. The gene was expressed from its own regulatory region in E. coli and two putative consensus promoter sequences were identified upstream of a ribosome binding site and an ATG start codon. Confirmation of the nucleotide sequence was obtained and the signal peptide cleavage site was identified by comparing the predicted amino acid sequence with that derived by N-terminal analysis of the purified RSDA. The deduced N-terminal region of the RSDA conforms to the general pattern for the signal peptides of secreted prokaryotic proteins. The complete amino acid sequence was deduced and homology with other enzymes was compared. The results suggested that the Thr-Ser-rich hinge region and the non-catalytic domain are necessary for efficient adsorption onto raw substrates, and the catalytic domain (60 kDa) is necessary for the hydrolysis of substrates, as suggested in previous studies (8, 9).
Lee, Sang Jun;Park, In Suk;Han, Yun Hee;Kim, Young Ok;Reeves, Peter R.
Molecules and Cells
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제26권2호
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pp.140-145
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2008
Expression of olive flounder hepcidin I (HepI) fused with truncated OmpA signal peptides ($OmpASP_{tr}$) as directional signals does not produce soluble fusion proteins. However, by inserting amino acid segments (xxx) varying in pI and hydrophobicity/hydrophilicity into a leader sequence containing a truncated OmpASP ($OmpASP_{tr}$) and a factor Xa cleavage site (Xa) [$OmpASP_{tr}{\mid}(xxx){\mid}Xa$], we were able in some cases to express soluble recombinant HepI. Soluble expression of the recombinant protein strongly correlated with (xxx) insertions of high pI and hydrophilicity. Therefore, we modified the $OmpASP_{tr}{\mid}(xxx){\mid}Xa$ sequence by inserting Arg and Lys into (xxx) to increase the hydrophilicity of the signal peptide region. These modifications enhanced the expression of soluble recombinant HepI. Hydropathic profile analysis of the $OmpASP_{tr}{\mid}(xxx){\mid}Xa$ HepI fusion proteins revealed that the transmembrane-like domains derived from the $OmpASP_{tr}{\mid}(xxx){\mid}Xa$ sequence were larger than the internal positively charged domain native to HepI. It should therefore be possible to overcome the obstacle of internal positively charged domains to obtain soluble expression of recombinant proteins by monitoring the hydrophilicity and hydropathic profile of the signal peptide region using a computer program.
Kim, Hyun-Kyung;Hong, Yong-Kil;Park, Hyo-Eun;Hong, Sung-Hee;Joe, Young-Ae
Journal of Microbiology and Biotechnology
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제13권4호
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pp.591-597
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2003
Human urokinase kringle domain, sharing homology with angiostatin kringles, has been shown to be an inhibitor of angiogenesis, which can be used for the treatment of cancer, rheumatoid arthritis, psoriasis, and retinopathy. Here, the expression of the kringle domain of urokinase (UK1) as a secreted protein in high levels is reported. UK1 was expressed in the methylotrophic yeast Pichia pastoris GS115 by fusion of the cDNA spanning from Ser47 to Lys135 to the secretion signal sequence of ${\alpha}-factor$ prepro-peptide. In a flask culture, the secreted UK1 reached about 1 g/l level after 120h of methanol induction and was purified to homogeneity by ion-exchange chromatography. Amino-terminal sequencing of the purified UK1 revealed that it was cleaved at the Ste13 signal cleavage site. The molecular mass of UK1 was determined to be 10,297.01 Da. It was also confirmed that the purified UK1 inhibited endothelial cell proliferation stimulated by basic fibroblast growth factor, vascular endothelial growth factor, or epidermal growth factor, in a dose-dependent manner. These results suggest that a P. pastoris sytem can be employed to obtain large amounts of soluble and active UK1.
Pichia pastoris is one of the most widely used expression systems for the secretory expression of recombinant proteins. The secretory expression in P. pastoris usually makes use of the prepro $MAT{\alpha}$ sequence from Saccharomyces cerevisiae, which has a dibasic amino acid cleavage site at the end of the signal sequence. This is efficiently processed by Kex2 protease, resulting in the secretion of high levels of proteins to the medium. However, the proteins that are having the internal accessible dibasic amino acids such as KR and RR in the coding region cannot be expressed using this signal sequence, as the protein will be fragmented. We have identified a new signal sequence of 18 amino acids from a P. pastoris protein that can secrete proteins to the medium efficiently. The PMT1-gene-inactivated P. pastoris strain secretes a ~30 kDa protein into the extracellular medium. We have identified this protein by determining its N-terminal amino acid sequence. The protein secreted has four DDDK concatameric internal repeats. This protein was not secreted in the wild-type P. pastoris under normal culture conditions. We show that the 18-amino-acid signal peptide at the N-terminal of this protein is useful for secretion of heterologous proteins in Pichia.
International Journal of Industrial Entomology and Biomaterials
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제15권1호
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pp.83-85
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2007
A glycine and proline-rich antibacterial protein was cloned from larvae of a beetle, Protaetia brevitarsis. The DNAs encoded a deduced propeptide of 127 amino acid residues with predicted molecular weight of 14.0 kDa and PI of 7.89. Structural analysis of this protein indicated the presence of a recognition sequence for the cleavage site within the constitutive secretory pathway(Arg-Xaa-Lys/Arg-Arg), suggesting that mature portion(72 amino acid residues) is produced by cleavage of signal peptide and propeptide from 127 amino-acid-long precursor protein. Mature portion sequence of this protein showed 72% similarity to that of Oryctes rhinoceros Rhinocerosin and 91% to that of Holotrichia diomphalia holotricin 2. The mRNA expression was reached the highest level at 4 hrs after E. coli injection and then declined gradually.
본 연구에서는 Flammulina velutipes var. lupinicola의 laccase 유전자를 동정하고 최적 활성 pH, 온도, 시간을 분석하고 하였다. F. velutipes var. lupinicola 유전체에서 선별된 laccase 유전자 서열을 바탕으로 구리 결합 부위 및 신호 펩타이드 분석을 수행한 결과 5종의 laccase 유전자(g1934, g1937, g2415, g2539, g5858)를 동정하였다. 5종의 선별된 laccase 유전자 크기는 1,488~1,662 bp로 확인되었고, cDNA 염기서열 분석 결과 14~17개의 인트론이 확인되었다. Laccase 유전자의 신호펩타이드로 예측된 절단 부위는 N-말단으로부터 20~34 bp 사이에 위치하는 것으로 확인되었다. F. velutipes var. lupinicola laccase의 활성 특성을 규명하기 위해 분리 정제를 수행하였으며, Zymogram을 수행하여 0.2 M 및 0.3 M NaCl과 1.6 M 및 1.7 M의 ammonium sulfate로 정제된 단백질에서 5개의 laccsae 활성 밴드를 확인하였다. pH, 온도 및 시간별로 분리 정제된 단백질의 최적 활성을 분석한 결과, 반응의 최적 pH는 5.5이고 최적 온도는 40℃로 확인되었다. 따라서 본 연구를 통하여 확인된 F. velutipes var. lupinicola 유전체의 laccase 유전자 구조 및 활성에 대한 특성은 laccase를 이해하는 데 도움이 될 것이며 추가 연구를 통하여 향후 다양한 산업적 활용이 가능할 것으로 사료된다.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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