Journal of the Korean Applied Science and Technology
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v.14
no.3
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pp.97-101
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1997
An intracellular, soluble 1,4-benzoquinone reductase was purified from Baker's Yeast by ammonium sulfate precipitation, DEAE-Sephacel anion exchange chromatography, and Sephacryl S-200 gel filtration chromatography. 1,4-Benzoquinone reductase was achieved 123.8 fold purification from crude homogenate with a yield of 11.1%.
Extracellular protease, from Aeromonas hydrophila Ni 39, was purified 16.7-fold to electrophoretic homogeneity with an overall yield of 19.9%, through a purification procedure of acetone precipitation, and Q Sepharose and Sephacryl S-200 chromatographies. The isoelectric point of the enzyme was 6.0 and the molecular mass, as determined by Sephacryl S-200 HR chromatography, was found to be about 102 kDa. SDS/PAGE revealed that the enzyme consisted of two subunits, with molecular masses of 65.9 kDa. Under standard assay conditions, the apparent $K_{m}$ value of the enzyme toward casein was 0.32 mg/ml. About 90% of the proteolytic activity remained after heating at 60$^{\circ}C$ for 30 min. The highest rate of azocasein hydrolysis for the enzyme was reached at 60$^{\circ}C$, and the optimum pH of the enzyme was 9.0. The enzyme was inhibited by the serine protease inhibitor, phenylmethylsulfonyl fluoride (PMSF), by about 87.9%, but not by E64, EDTA, pepstatin or 1,10-phenanthroline. The enzyme activity was inhibited slightly by Ca$\^$2+/, Mg$\^$2+/ and Zn/supb 2+/ ions.
Kim, Chun-Seong;Song, Gyu-Yeong;Kim, Seong-Jun;Kim, Ho-Sang;Park, Hyeon-Gyun;Lee, Suk-Yeong;Park, Jong-Pil
KSBB Journal
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v.14
no.5
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pp.528-533
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1999
Membrane-bound alcohol dehydrogenase(ADH) was purified to homogeneity from the acetic acid producing bacteria, Acetobacter sp. CS5. The enzyme was solubilized and extracted with Trition-X and purified using the DEAE-Sephacel chromatography and Sephacryl S-200 chromatography. The enzyme was purified to 14-fold with a yield of 15%. The molecular weight of the purified enzyme was to be 332 KDa. SDS-PAGE of the enzyme showed three subunits with molecular weights of 79 KDa, 49KDa and 46K Da. It indicated that enzyme consisted of three subunits of the 79 KDa, two subunits of the 49 KDa and. 46 KDa, respectively. The apparent Km value for ethanol was 0.77 mM and the optimum pH and temperature was 4.0-5.0 and 35$^{\circ}C$, respectively.
Kim, Byung-su;Kim, Sun-hee;Kim, Jong-suk;Baek, Byeong-kirl
Korean Journal of Veterinary Research
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v.38
no.2
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pp.328-335
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1998
Outer membrane proteins(OMPs) of Brucella abortus 1119-3 strain were extracted by Triton X-100 treatment, and fractionated by DEAE-cellulose column chromatography and Sephacryl S-300 column chromatography. The antigenic proteins in these fractions were identified by Western blot analysis. In Western blot analysis, a single band(38kDa) was observed in the DEAE fractions from 36th fraction to 38th fraction against sera of cattle infected with B abortus. And other fractions have several bands. However, the Sephacryl S-300 fractions exhibited a total of 3 peaks of proteins with a broad range from about 30 to 116kDa. In order to characterize further, the extracted OMPs and the DEAE fractions were analyzed by two dimensional polyacrylamide gel electrophoresis(2-DE) and Western blot using serum from naturally infected cattle with Brucella spp. The 2-DE immunoblots of DEAE fraction showed immunoreactive spots more than twenty two. The major protein spots have ranging from about 32 to 47kDa. The pI values of the spots were detected from pH 4.7 to 5.4. Among the major protein spots, the 38kDa protein which is a specific antigen, located at the point of approximately a pI 4.8.
Kim, Gi-Nahm;Kim, Suk-Ji;Kim, Seok-Hwan;Park, In-Shik
Korean Journal of Food Science and Technology
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v.28
no.4
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pp.663-667
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1996
Acid phosphatase (EC 3.1.3.2) from Welsh onion was partially purified by Sephacryl S-200 gel filtration and CM-Sepharose CL-6B ion exchange chromatography. The optimum pH and temperature of acid phosphatase from green onion were pH 5.5 and $60^{\circ}C$, respectively. The enzyme was the most stable at pH 6.0 and unstable above pH 9.0. The activation energy of the enzyme was determined to be 4.86kcal/mole. The enzyme utilized p-nitrophenyl phosphate most as a best substrate among tested possible substrates, while 5'-GMP and 5'-IMP were poor substrates for the enzyme. $K_{m.app.}$ of the enzyme with p-nitrophenyl phosphate as a substrate was identified as 0.87mM. Among metal ions and inhibitors tested, $Cr^{+++},\;Zn^{++},\;Cu^{++}$, molybdate and metavanadate ions inhibited the enzyme reaction drastically.
The rhamnan sulfat extracted from green algae seaweed, Monostroma nitidum was characterized on sugars, sulfate compositions and molecular structure. Rhamnan sulfate was extracted with boiling water, and purified with two steps of cetylpyridinium chloride and ion exchange chromatography. The yield of crude rhamnan sulfate was about 2% from raw material. Rhamnan sulfate fraction, F-4 was composed of 30% rhamnose, 0.9% arabinose, 2.5% xylose, 2% glucose and 32.6% sulfate. Rhamnan sulfate F-4-3 obtained from F-4 fraction was composed of 36.8% rhamnose, 3.6% xylose, 2.7% glucose, 1.4% galactose and 30.8% sulfate. The molecular weight of F-4-3 fraction was estimated as 10,000-10,300 dalton with Sephacryl S-200 gel filtration chromatography.
Changes in protein content during oocyte development was measured and egg-specific protein was characterized from the eggs in Lucilia illustris. During normal development ovarian protein was rapidly increased at 72hr and reached maximum at 96hr after a protein meal, when the eggs were fully matured. Purified protein from the ovaries by gel filtration of DEAE-cellulose an Sephacryl S-200 was loaded on 7.5% native polyacrylamide gel electrophoresis and identified at ${R}_{f}$ 0.4 as egg-specific protein, which has a mol. wt of 110,000. A total of 13 amino acids in th egg-specific protein was identified and expecially asparagine, glutamic acid, and tyrosine were highly concentrated. Five fatty acids were also identified. It is suggested that there is a specific protein in the eggs of L. illustris except yolk protein synthesized and secreted by fat body.
Peroxidase from Jerusalem artichoke tubers, which might be related to browning reaction, was purified by ammonium sulfate precipitation, DEAE-cellulose and Sephacryl S-200 chromatography. The optimum pH of the purified peroxidase was 5.0 and relatively stable at pH $5.0{\sim}6.0$ using substrate of p-phenylenediamine and $H_2O_2$. D-values for thermal inactivation at 60, 70 and $80^{\circ}C$ were 86, 45 and 33 sec, respectively. Activation energy was 4,111 J/mole. The enzyme showed the most sensitive specificity of substrate for p-phenylenediamine. The compounds such as 1mM potassium cyanide, 10mM sodium diethyldithiocarbamate, L-ascorbic acid, sodium hydrosulfite and L-cysteine inhibited completely while 1mM of $Ca^{2+}\;and\;Cu^{2+}$ activated the purified peroxidase.
A thiol-specific antioxidant protein (TSA or TPx) was purified from Halophilic archeabacteria Halococcus agglomeratus, by DEAE-Cellulose, Phnyl, sepharose, Sephadex G-75, Sephacryl S-100, Sephacryl S-200, and Q-Wepharose FF. This protein exhibited the preventeive effect against the inactivation of glutamine synthehase (GS) activity was support by a thiol-reducing equicalent such as dithiothreitol. TPx activity was maximal at NaCl concentration above 500mM. The molecular mass of the protein was determinated to be 22-kDa by SDS-PAGE. The TPx purified from Halococcus agglomeratus seems to be similar to other TPx family, except for the salt requirement for the maximal antioxidant activity.
The 90 kDa-heat shock protein (HSP90) is one of the major ubiquitous heat shock proteins induced by a vadety of ceilular stresses. HSP90 Is constitutively synthesized even under nonstressed condidons and found In association with several regulatory and structural proteins such as protein kinases and steroid hormone receptors. In the present study, to facilitate its biochemical characterization, HSP90 was pudfied from chick muscle by sequential column chromatography steps including DEAE- cellulose, hydroxyapatite, and Sephacryl S-300 gel filtration and monoclonal antillodies specific to HSP90 were produced by the inurine hybridomal technique. We report the production of 4 posItive hybridoma clones, named as A204, C112, C302 and A204, C112, C302. Among these MoAbs, Cl 12 strongly reconnized chick HSP90 in Western blot and native immunoprocipitation. In addition, C112 showed the crossreactivitles against HSP90 from human, rabbit, mouse, fish and chick but not from Drosophila and E. coil.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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