On the development of hirame(Paratichtys olivaceus) culture, outbreak of scuticociliata infection was reported to cause severe damage in Japan. To establish effective measures for isolation and cultivation of this ciliate, we tried to culture this pathogenic ciliate using medium for bacteria and fish cell lines in vitro. Scuticociliata from the brain tissues of infected fish was aseptically inoculated to CHSE-214 cells cultured in MEM-10 without antibiotic. Scuticociliata grew well and the number of ciliate reached $10^6\;cells/ml$ at temperatures of $15^{\circ}C$ to $20^{\circ}C$ for 10d. The number of ciliate cultured in the cell lines is 10 times higher than the numbers cultured in the liquid medium alone. This ciliata could be cloned by dilution method. Scuticociliata isolated could grow well on 42 different cell lines that were established from marine fish, warm freshwater fish, and salmonids. This ciliate could be preserved in liquid nitrogen for more than 6 months. Subsequently, we observed the optimal temperature and salinity for growth, and tested the sensitivities of this organism to formaldehyde, flagyl(Metronidazole), Ekuteshin(Combination compound of sulfamonometoxin and ormethoprim), and ozonixation. Optimal temperature for growth was $25^{\circ}C$ and salinity was 1.0 to 1.5%. Washed scuticociliata was killed by formaldehyde at the concentration of 50ppm for 10min, but was not completely killed even at a high concentration of 400ppm for 20min in MEM-5. Flagyl and Ekuteshin can inhibit the growth of scuticociliata at the concentration of 1,000 and $100{\mu}g/ml$ in MEM-10, respectively. More than 99% of this scuticociliata could be killed by ozonization at a dose equivalent to $1.0mg/\ell$ oxidant for 30sec in sea water. Isolated scuticociliata showed the pathogenicity to the cultured hirame by artificial infection(I. P. injection, $10^5\;cells$/fish). The number of scuticociliata in the water could be counted by most probable number(MPN) method using tissue culture, and the minimum detectable number was $1.8\;cells/\ell$. The number in the reservoir tank for water supply to the culture tank was 110 cells/l. After cleaning by elimination of the sediments from of the reservoir tank and disinfected with formaldehyde, number of scuticociliata decreased and was counted less than $1.8\;cells/\ell$ and infection rate of cultured hirame was decreased.
To establish effectively for isolation and cultivation and cultivation of scuticociliata, we tried to culture scuticociliata using culture medium(P2Y1-DW medium). The number of scuticociliata reached $1.50{\times}10^3$ cells/ml at the temperature of $25^{\circ}C$ in 3 days, but $1.03{\times}10^2$ cells/ml at $15^{\circ}C$. In P1Y1-S medium growth reached $2.6{\times}10^4$cells/ml in 3 days, but the number in DW medium was the lowest with $2.0{\times}10^2$cells/ml. In all these media, the number decreased after 5 days. As the method of the parasite`s division, after attaching the anterior part of the body, its shape gradualy changed to a western pear-like appearance. The parasite completely divided into two cells, then freely swam and became an adult cell, size of $40{\mu}m$ in size within about 3 hours from attaching.
A subtracted cDNA library of a marine scuticociliate, Philasterides dicentrarchii, in response to 17β-estradiol exposure was constructed using suppression subtractive hybridization (SSH). As a result of SSH, 275 clones were isolated, and among them, only glutathione peroxidase (GPX) gene was isolated as an antioxidative enzyme responding to 17β-estradiol. The semi-quantitative reverse-transcriptase polymerase chain reaction (RT-PCR) analysis revealed that the transcription of GPX gene of P. dicentrarchii was clearly increased by exposure to 17β-estradiol. The GPX transcription was also clearly increased by exposure to xenoestrogens such as bisphenol A (BPA) and genistein.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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