The identification and characterization of antigens that elicit human T cell responses is an important step toward understanding of Leishmania major infection and ultimately in the development of a vaccine. Micropreparative SDS-PAGE followed by electro transfer to a PVDF membrane and elution of proteins from the PVDF, was used to separate 2 novel proteins from L. major promastigotes, which can induce antibodies of the IgG2a isotype in mice and also are recognized by antisera of recovered human cutaneous leishmaniasis subjects. Fractionation of the crude extract of L. major revealed that all detectable proteins of interest were present within the soluble Leishmania antigens (SLA). Quantitation of these proteins showed that their expression in promastigotes is relatively very low. Considering the molecular weight, immunoreactivity, chromatographic and electrophoretic behavior in reducing and non-reducing conditions, these proteins are probably 2 isoforms of a single protein. A digest of these proteins was resolved on Tricine-SDS-PAGE and immunoreactive fragments were identified by human sera. Two immunoreactive fragments (36.4 and 34.8 kDa) were only generated by endoproteinase Glu-C treatment. These immunoreactive fragments or their parent molecules may be ideal candidates for incorporation in a cocktail vaccine against cutaneous leishmaniasis.
Journal of the Korea Academia-Industrial cooperation Society
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v.5
no.5
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pp.484-489
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2004
Isolation of phycobiliprotein from S. platensis was performed by using $30-60{\%}$ ammomium sulfate fractionation, Sephadex G-100 gel filtration and DEAE-Sephacel anionic exchange chromatography. Isolated phycobiliprotein was determined to be a c-phycocyanin with a maximum absorption wavelength at 620 nm. This phycobiliprotein consisted of $({\alpha}$ and $({\beta}$ subunit when analyzed through SDS-PAGE. The molecular weights of $({\alpha}$ and $({\beta}$ subunit were 14.5 kDa and 16 kDa, respectively. The native molecular weight of phycobiliprotein through gel filtration was about 100 kDa. These results show that the structure of phycobiliprotein from S. platensis might be aggregated form of $({\alpha}{\beta})_{3}-trimer$.
Vitellogenin (Vg) is the precursor of vitellin (Vn), the major yolk protein of teleost fishes. In this study, Vg and Vn proteins of the Korean bullhead Pseudobagrus fulvidraco were isolated using gel-filtration chromatography (Sephadex-G 200 column) and anion-exchange chromatography (Mono Q HR 5/5 column), respectively. Purified Vn with an estimated molecular mass of 360 kDa by gel filtration chromatography was obtained from ovarian egg, and it was composited to one major subunit with an estimated molecular mass of 107 kDa by SDS-PAGE. In the result of western blotting, one major band was detected using antiserum against Vn (anti-Vn). These results suggested that Vn was composed of three subunits having the same molecular weight in Pseudobagrus fulvidraco. Vg was induced by estradiol-$17{\beta}$ ($E_2$) and purified from $E_2$ treated male serum. The molecular weight of whole Vg was estimated to be 450 kDa by gel filtration chromatography, and it is composed of three subunits with estimated molecular masses of 110 kDa, 125 kDa and 147 kDa as determined by SDS-PAGE. In the Ouchterlony's immunodiffusion test using anti-Vn and antiserum against female and male serum, purified Vg was detected in matured female and Ez treated male serum but not in untreated male. These results can be used in detecting estrogenic contamination of the aquatic environment.
The investigative research on the mammalian milk purely consisted of the physiological quality of lactoferrin was conducted to reveal the antimicrobial ativity of specifically functional foods with antibiotic characteristics as a basic data in food manufacturing. Bovine lactoferrin were isolated from raw milk samples, and was digested with pepsin, trypsin and chymotrypsin. It was necessary then to separate and purify lactoferrin from bovine raw milk, and in order to analyze the antimicrobial activity of the enzyme-treated bovine lactoferrin in their required quantitative fraction. Afterwards Escherichia coli and Staphylococcus aureus was incubated in it. It was that investigated to enzyme-treated fractions molecular weight and the peptide fragment with antimicrobial effect. 1. The purity of enzyme-treated bovine lactoferrin(BLF) was tested by SDS-PAGE. As a results of 12% SDS-PAGE assay, pepsin-treated LF did not exhibited band until if reaches 14 KDa, while trypsin and chymotrypsin treated LF, known to contain the non-digestive lactoferrin exhibited band at a molecular weight of 33 KDa. 2. Bovine lactoferrin was sucessfully purified through the use of Sephadex G-50 Column. In order to assay LF through the Sephadex G-50 column chromatography, the digestive bovine lactoferrin (BLFs) was eluted with a linear gradient of 0.05% Tris-HCl. When the gel-filtration analysis, pepsin, trypsin and chymotrypsin treatments of BLF fragments was showed 2, 3, and 2 peak, respectively. The results of the HPLC analysis confirmed that had a non-digestive lactoferrin receptor, and trypsin and chymotrypsin treated BLFs has an antimicrobial effect. 3. To measure the strength of the antimicrobial effect of enzyme treated lactoferrin it was compared to the antimicrobial activity taking place at the incubated Escherichia coli and Staphylococcus aureus. This might explain the resistance of the microorganisms for peptide fragment. The pepsin-treated of bovine lactoferrin was markedly reduced by incubation of the cells. Trypsin-treated of BLF was similar to chymotrypsin-treated of BLF. However, trypsin and chymotrypsin treatments of BLFs were showed the antimicrobial effect until eight hours incubation for native bovine lactoferrin. Therefore the enzyme-treated lactoferrin have an antimicrobial effect even non-digestive lactoferrin. 4. The digestive bovine lactoferrin fragments assay was carried out by the use of Sephadex G-50 column chromatography and SDS-PAGE. The pepsin and chymotrypsin-treated fragments has a low molecular weight and trypsin-treated lactoferrin was only showed a band. It was described that characteristics of digestive protein. It appeared that there may be a relation between virulence and resistance to enzyme-treated BLF.
These experiments were carried out to isolate SIgA from human and bovine milk. The immunochemical properties of SIgA from human and bovine milk were examined by Gel filtration, DEAE and SDS-PAGE. Double Immunodiffusion, and Immunoelectrophoresis. The results obtained are as follows: 1. Human SIgA was purified from colostrum of Korean women by repeated gel filtration on Sephadex G-200 and Sepharose 6B, but bovine SigA was not cleary purified from bovine colostrum of Holstein cows by anion exchange chromatography using DEAE-Sephadex A-50 and gel filtration on Sephadex G-200 and Sepharose 6B. 2. The immunochemical properties of fractions from gel filtration on the Sephadex G-200 and Sepharose 6B column as assessed by Immunoelectrophoresis and double Immunodiffusion to identify the presence of IgM in first peak fraction, and the presence of pure SIgA in second peak fraction. However, Bovine SigA rich fraction from bovine colostrum of Holstein cows contained a large amount of $IgG_1$-dimer in addition to SIgA. 3. The fragments of reduced bovine colostrum SIgA rich fraction were estimated to have molecular weights of secretory component, heavy chain and light chain (75,000-80,000, 50,000-60,000, 25,000-27,000 daltons) by SDS-PAGE, respectively. Those were similar to the molecular weight of reduced SIgA from human milk.
International Journal of Industrial Entomology and Biomaterials
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v.23
no.1
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pp.147-153
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2011
The Pseudorabies (PR), also called Aujeszky's disease (AD), is an infectious viral disease caused by an alpha herpes virus and has domestic and wild pigs, as well as a wide range of domestic and wild animals, as the natural host. Pseudorabies virus (PRV) virions contain several envelope glycoproteins. Among them, gB, gC and gD are regarded as the major immunogenic proteins. We expressed these glycoproteins using the bacterial expression system and analyzed recombinant proteins. Expression of glycoproteins gC and gD were observed on SDS-PAGE or Western blot analysis, but gB was not. Optimal concentration of IPTG and inducing time were determined as 1.0 mM and 4 h, respectively, for the expression of both gC and gD in E. coli. A sodium dodecyl sulfate (SDS) was the most efficient detergent in solubilizing insoluble recombinant protein.
The vancomycin, one of the family of glycopeptide antibiotics, inhibits the synthesis of bacterial cell wall peptidoglycan and has been widely used against gram-positive bacterial infections, especially for a treatment of methicillin resistant S. aureus infection. However, clinical isolate which was intermediately resistant to vancomycin (Mu50: MIC 8 $\mu\textrm{g}$/ml) was isolated in recent years. In this study we performed vancomycin susceptibility test with the increment method and population analysis with clinical isolates S. aureus. Also we did several kinds of tests with three selected isolates (s129: MIC 7 $\mu\textrm{g}$/ml, s134: MIC 7 $\mu\textrm{g}$/ml, s135: MIC 8 $\mu\textrm{g}$/ml) to find out possible mechanism of vancomycin resistance. As a result, the prevalence of vancomycin resistant S. aureus isolates among S. aureus strains resistant to methicillin was 23.3% (25/107). The vancomycin resistances of isolated strains of S. aureus were between those of Mu5O and Mu3 strains. By PCR analysis, none of the isolates with decreased vancomycin susceptibility contained known vancomycin resistant genes such as vanA, vanB, vanC1, vanC2, and vanH. Major bands of 81 kDa, 58 kDa, 33 kDa, 28 kDa were demonstrable in whole cell lysates by SDS-PAGE from all three isolates as well as reference strains. And especially,45 kDa protein was overproduced in Mu50 strains. Among them increased production of NAD$^{+}$-linked-$_{D}$-lactate dehydrogenase (dnLDH) were detected from one clinical strain (s135) and Mu5O strain. From these data, we suggest that the mechanism of vancomycin resistance in these isolates are distinct from that in enterococci.
Bacteria have been regarded as a one of major etiologic factors in root canal infections. In endodontic treatment the effective removal of pathogenic microorganisms in the root canal is the key to successful outcome. Bacterial cell wall components may play an important role in the development of pulpal and periapical disease. The purpose of this study was to evaluate the effect of sonic extracts of Streptococcus spp. on cultured L929 cells and to characterize cell wall protein profiles of Streptococcus spp. Streptococcus spp. were isolated from infected root canals and identified with Vitek Systems(Biomeriux, USA). Five streptococci, namely S. sanguis, S. mitis, S uberis, S. mutans (ATCC 10449) and S. faecalis (ATCC 19433) weere enriched in brain heart infusion broth. Cell pellets were sonicated and cell wall extracts were dialyzed and membrane filtered. Prepared cell wall proteins were applied to cultured L929 cell. The cell reaction were evaluated by monitoring DNA synthesis, cell numbers and the change of cell morphology. The total cell wall protein profiles of microorganisms were characterized by sodium dodecyl sulfate polyacrylamide-gel eledruphoresis(SDS-PAGE). DNA synthesis of L929 cells were reduced by the increasing concentration of sonic extracts. DNA synthesis was significantly suppressed in more than $50{\mu}g$/ml of sonic extract conentration in five streptococci. S. nutans (ATCC 10449) showed stronger suppression on DNA synthesis than remaining four streptococci, which had the similar effect on DNA synthesis. Analysis of DNA synthesis measured by [$^3H$]-thymidine uptake was more sensitvie method than cell counting. Sonic extracts affected the microscopic findings of L929 cells. The protein profiles indicated that all five strains shared two major proteins with molecular masses of 70.8 and 57.5 kD respectively. S. uberis and S. mutans shared common minor proteins of which molecular weights were 147.9 and 112.2 kD respectively. However some minor proteins were unique for S. mitis, S. uberis and S. faecalis.
In this study, the characteristic qualities of whole soymilk were examined based on differing hydrolysis condition. The results showed that as the concentration of enzyme preparation(KMF-G) increase, $^{\circ}Brix$, calcium-binding capacity, and the content of free amino acid components also increased. Additionally SDS-PAGE analysis revealed a similar pattern of in the molecular weight of proteins at enzyme preparation concentration 0.20 and 0.35%(w/w). The quality of whole soymilk hydrolysate was shown to be best at a enzyme preparation(KMF-G) concentration of 0.20%(w/w) and hydrolysis time of 60 min. When sterilized at 115, 130 and $145\;^{\circ}C$ for 15 sec each the change in whole soymilk quality was not substantial. Based on the above results, a 0.20%(w/w) enzyme preparation(KMF-G) concentration and 60 mim hydrolysis time was determined to be the optimal hydrolysis condition for whole soymilk. It is anticipated that soymilk hydrolysis will a food material that is diverse in its application and uses.
Deer antler tissue contains the most rapidly growing bone in the animal kingdom. Thus, it is likely that growing antler tissue is a rich source of local paracrine bone-stimulating factors. Growth factors, at least the insulin-like growth factor (IGF), control the bone-remodelling process. In this study, we tried to isolate and purify IGF-I from fresh antler tissue by the routine isolation and purification of protein. The purification involved ammonium sulfate precipitation, DEAE-Sepharose CL-60 ion-exchange chromatography, CM-Sepharose CL-6B ion-exchange chromatography, and Sephadex G-50 chromatography. Purified fractions from each step were analyzed by high-performance liquid chromatography (HPLC), SDS polyacrylamide gel electrophoresis (SDS-PACE), Dot-blot, and Western-blot methods. Furthermore, the quantification of partially purified IGF-I was calculated by enzyme-linked immunosorbent assays (ELISA) using antibody to human recombinant IGF-1. SDS-PAGE analysis of the final fraction yielded two molecular bands and the signal band was at 12 kDa on the Western-blot film. This purified IGF-I fraction showed a peak at retention time of eight min. The quantity of IGF-I in 20 g deer antler tissue as starting weight was calculated using a standard curve to be 2910 ng/ml, and total IGF-I amount is 0.291 g. The results show that IGF-I, which can be found in deer antler, can be partially purified and quantified by classic protein isolation methods.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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