A continuous fermentation system employing immobilized cells of Zymomonas mobilis and Saccharomyces cerevisiae was studied for the mass production of ethanol. Ethanol production by cells immobilized with Ca-alginate was better than those by cells immobilized with K-carrageenan. Maximum ethanol production employing a continuous system by cells immobilized with Ca-alginate was 77.5 $g.l^{-1}h^{-1}$ at a dilution rate of 1.85 $h^{-1}$ with 82% conversion rate for Z. mobilis while that was 40.2 $g.l^{-1}h^{-1}$ at a dilution rate of 0.92 $h^{-1}$ with 85% conversion rate for S. cerevisiae. These results suggest that Ca-alginate is a better cell immobilization matrix than K-carrageenan and that immobilized cells of Z. mobilis are more efficient than S. cerevisiae for ethanol production.
Raihan Hadi Julio;Muhammad Soban Khan;Mushtaq Ali;Ghulam Destgeer;Jinsoo Park
Journal of the Korean Society of Visualization
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v.21
no.3
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pp.93-100
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2023
The yeast Saccharomyces cerevisiae (S. cerevisiae) is considered an ideal eukaryotic model and has long been recognized for its pivotal role in numerous industrial production processes. Depending on the cell cycle phases, microenvironment, and species, S. cerevisiae varies in shape and has different sizes of each shape such as singlets, doublets, and clusters. Obtaining high-purity populations of uniformly shaped S. cerevisiae cells is crucial in fundamental biological research and industrial operations. In this study, we propose an acoustofluidic method for separating S. cerevisiae cells based on their size using surface acoustic wave (SAW)-induced acoustic radiation force (ARF). The SAW-induced ARF increased with cell diameter, which enabled a successful size-based separation of S. cerevisiae cells using an acoustofluidics device. We anticipate that the proposed acoustofluidics approach for yeast cell separation will provide new opportunities in industrial applications.
Kim, Seung-Hwan;Chung, Oon-Chan;Woo, Im-Sun;Shin, Jae-Ho;Rho, Dong-Hyun;Rhee, In-Koo;Park, Heui-Dong
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.10
no.6
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pp.776-783
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2000
Various alcohol yeast strains have been isolated from main mashes of Korean traditional liquors, and their genetic diversities were previously reported [23]. In this study, the strain SHY111, showing the highest alcohol production, was tested for its fermentation and sporulation characteristics. Additionally, its haploid cells were isolated and tested for their growth and fermentation patterns. The strain was identified as Saccharomyces cerevisiae based on its morphological and physiological characteristics. The sequences of the ITS(internal transcribed spacer) and 5.8S rDNA regions of S. cerevisiae SHY111 were found to be identical to those of S. cerevisiae that was obtained from through the yeast genome project. The maximum fermentation ratio obtained by the strain SHY111 (96.7%) was almost the same as that by S. cerevisiae Balyun No. 1 (96.5%) that was a little higher than that by S. cerevisiae KCCM11215(95.8%). The strain was induced for sporulation in a sporulation liquid medium using log phase cells grown in different types of pre-sporulation media, and its haploid cells were obtained by spore dissection using a micromanipulator. The majority of the spores formed a small colony on a YPD agar plate, and the haploid yeast cells derived from the strain SHY111 showed a variety of growth and alcohol fermentation patterns. It was proposed that the fermentation patterns were related to their growth phenotypes in the most haploid strains, but possible not in some strains.
To enhance the hyperproductive and low energy-consuming ethanol fermentation rate, the thermotolerant yeast S. cerevisiae RA-74-2 cells were immobilized. An efficient immobilization condition was proved to be $1.5{\%}$ (w/v) alginate solution, neutral pH and 20 h activation of beads. The fermentation characteristics and stability at various temperatures were examined as compared with free S. cerevisiae RA-74-2 cells. The immobilized cells had excellent fermentation rate at the range of pH 3-7 at 30-$42^{\circ}C$ in 15-$20{\%}$ glucose media. When the seed volume was adjusted to 0.12 (v/v) (6ml bead/50 ml medium), $11{\%}$ (w/v) ethanol was produced during the first 34 hand $12.15{\%}$ (w/v) ethanol [$95{\%}$ (w/v) of theoretical yield] during the first 60 h in $25{\%}$ glucose medium. In repetitive fermentation using a 2 litre fermentor, 5.79-$7.27{\%}$ (w/v) ethanol [76-$95{\%}$ (w/v) of theoretical yield] was produced during the 40-55 h in $15{\%}$ glucose media. These data suggested the fact that alginate beads of thermotolerant S. cerevisiae RA-74-2 cells would contribute to economic and hyperproductive ethanol fermentation at high temperature.
We prepared capsules containing Saccharomyces cerevisiae and Zoogloea ramigera cells for the removal of lead(II) and cadmium ions. Microbial cells were encapsulated and cultured in the growth medium. The S.cerevisiae cells grown in the capule did not leak through the capsule membrane. The dried cell density reached to 250 g/l on the basis of the inner volume of the 2.0 mm diameter capsule after 36 hour cultivation. The dry whole cell expolymer density of encapsulated Z.ramigera reached to 200 g/L. The capsule was crosslinked with triethylene tetramine and glutaric dialdehyde solutions. The cadmium uptake of encapsulated whole cell expolymer of Z.ramigera was 55mg Cd/g biosorbent. The adsorption line followed well Langmuir isotherm. The lead uptake of the encapsulated S. cerevisiae was about 30 mg Pb/g biomass. The optimum pH of the lead uptake using encapsulated S. cerevisiae was found to be 6. Freundlich model showed a little better fit to the adsorption data than Langmuir model 95 percent of the lead adsorbed on the encapsulated biosorbents was desorbed by the 1 M HCl solution. The capsule was reused 50 batches without loosing the metal uptake capacity. And the mechanical strength of the crosslinked capsule was retained after 50 trials.
Comparison of lead removal characteristics between two strains, Aureobasidium pullulans and Saccharomyces cerevisiae, and effects of extracellular polymeric substances(EPS) excreted by microorganisms on the removal of lead were investigated. The capacity of lead biosorption to A. pullulans which had EPS was increased as the storage time of the cells increased, due to the increased amounts of excreted EPS. When the EPS were removed from A. pullulans cells, the amounts of adsorbed lead were very small(10% of the cell with EPS). In the case of s. cerevisiae which had no EPS, the lead removal capacity was nearly constant with storage time except early stage, but the spending time to reach an equilibrium state decreased with increasing storage time because of lowering the function of cell membrane. Therefore, it seems that the phenomena of lead biosorption were remarkably affected by the presence of extracellular polymeric substances.
Canetta, Elisabetta;Walker, Graeme M.;Adya, Ashok K.
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.19
no.6
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pp.547-555
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2009
Nanoscopic changes in the cell surface morphology of the yeasts Saccharomyces cerevisiae (strain NCYC 1681) and Schizosaccharomyces pombe (strain DVPB 1354), due to their exposure to varying concentrations of hydrogen peroxide (oxidative stress), were investigated using an atomic force microscope (AFM). Increasing hydrogen peroxide concentration led to a decrease in cell viabilities and mean cell volumes, and an increase in the surface roughness of the yeasts. In addition, AFM studies revealed that oxidative stress caused cell compression in both S. cerevisiae and Schiz. pombe cells and an increase in the number of aged yeasts. These results confirmed the importance and usefulness of AFM in investigating the morphology of stressed microbial cells at the nanoscale. The results also provided novel information on the relative oxidative stress tolerance of S. cerevisiae and Schizo pombe.
DNA's were extracted from Saccharomyces cerevisiae and Mycobacterium phlei and the damaging cell walls of these microoragnisms were examined under an electron microscope in the extraction process in which a number of physico-chemical tratments of cells was involved. While the DNA was easily extracted from S. cerevisiae using conventional meylelded very little DNA, of M. phlei was extremely difficult to isolate and yielded very little DNA, applying various methods of isolation published earlier. When the cell walls of S. cerevisiae were examined with the electron microscope, they were not yet damaged even after the cells were treated with sodium lauryl sulfate(SLS) and ethylene diamine tetracetic acid(EDTA), but they were completely destroyed by the treatment of sodium perchlorate followed by the addition of chloroform and a vigorous agitation. Oozing cytoplasm through the broken cell walls was also observed. In the extraction of DNA from M.phlei, the pronase was not effective at the aerobic environment of the sample. When phenol was applied at the last step of DNA isolation, an extreme damage mass yielding little DNA into the solution. Unlike the cells of S.cerevisiae.M.phlei cells showed a tendency of aggregation, thus the destruction of cell walls by sodium hydroxide was seen only on the walls of peripheral cells in the aggregated mass, leaving the walls of the inner cells undamaged.
Cultures of Saccharomyces cerevisiae were subjected to the effect of PEF (pulse electric field) and a source of selenium. The culture period after which yeast cells were subjected to PEF treatment was optimized, as was the duration of the exposure. Optimization of the nutrient medium composition in S. cerevisiae cultures resulted in an over 1.8-fold increase in selenium accumulation with relation to cultures on the initial substrate. Optimization of the pH value and of culture duration resulted in selenium accumulation increase by approximately 78%. A significant correlation was found between the accumulation of selenium in yeast cells and its concentration in the culture substrate. The highest accumulation of selenium in the biomass of yeast, approx. $240\;{\mu}g/g$ d.m., was obtained after 15-min exposure to PEF on a 20-h culture. An approx. 50% higher content of selenium in cells was recorded, as compared with the control culture without the application of PEF.
Formic acid is a representative carboxylic acid that inhibits bacterial cell growth, and thus it is generally considered to constitute an obstacle to the reuse of renewable biomass. In this study, Saccharomyces cerevisiae was used to elucidate changes in protein levels in response to formic acid. Fifty-seven differentially expressed proteins in response to formic acid toxicity in S. cerevisiae were identified by 1D-PAGE and nano-liquid chromatography-tandem mass spectrometry (nano-LC-MS/MS) analyses. Among the 28 proteins increased in expression, four were involved in the MAP kinase signal transduction pathway and one in the oxidative stress-induced pathway. A dramatic increase was observed in the number of ion transporters related to maintenance of acid-base balance. Regarding the 29 proteins decreased in expression, they were found to participate in transcription during cell division. Heat shock protein 70, glutathione reductase, and cytochrome c oxidase were measured by LC-MS/MS analysis. Taken together, the inhibitory action of formic acid on S. cerevisiae cells might disrupt the acidbase balance across the cell membrane and generate oxidative stress, leading to repressed cell division and death. S. cerevisiae also induced expression of ion transporters, which may be required to maintain the acid-base balance when yeast cells are exposed to high concentrations of formic acid in growth medium.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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