This study was carried out 1) to investigate the pH effect on solubilization of phenanthrene by biosurfactant in aqueous system and 2) to evaluate the pH effect on the biodegradation rate of phenanthrene in the presence and the absence of the biosurfactant by phenanthrene degraders. Tween 80, which is a chemically synthesized surfactant, showed greater solubilizing capacity than rhamnolipid. The solubilization capacity can be expressed as a MSR(molar solubilization ratio=moles of organic compounds solubilized per mole of surfactant). The calculated MSR of Tween 80 and rhamnolipid were 0.1449 and 0.0425 respectively. The kinetic study of phenanthrene solubilization by rhamnolipid showed that solubilization mechanism could reach equilibrium within 24 hours. Addition of 240 ppm rhamnolipid solution, which concentration is 4.3 times of Critical Micelle Concentration(CMC), caused 9 times solubility enhancement compared to water solubility. The highest solubilities were detected around a pH range of 4.5-5.5. Changes in apparent solubility with the changes in pH are possibly related to the fact that the rhamnolipid, an anionic surfactant, can form different structures depending on the pH. Two biodegradation experiments were performed in the absence and the presence of rhamnolipid, with the cell growth investigated using a spread plate method. The specific growth rates at pH 6 and 7 were higher than at the other pH, and the HPLC analysis data, for the total phenanthrene loss, confirmed the trends in the $\mu$(specific growth rate) values. In presence of rhamnolipid, maximum $\mu$ values shifted from around pH 5 which showed maximum enhancement of solubility in the abiotic experiment, compared to the $\mu$ values obtained without the biosurfactant. In this study, the increase in the observed specific grow rate(1.44 times) was not as high as the increase in solubilization(5 times). This was supported by the fact all the solubilized phenanthrene is not bioavailable to microorganisms.
For prevention of atrophic rhinitis of swine by Bordetella bronchiseptica and fowl typhoid by Salmonella gallinarum, bacterial strains showing antimicrobial activity against those pathogenic bacteria were isolated from various samples collected at animal farms. Among 372 bacterial isolates strain TK3 showed the highest antibacterial activity against both pathogens, and was identified as Bacillus amyloliquefaciens by 16S rRNA gene sequence analysis. B. amyloliquefaciens TK3 could inhibit growth of both pathogens by secretion of antibacterial compounds such as siderophore, rhamnolipid and antimicrobial peptide. Production radius of siderophore on Chrome azurol S agar plate by strain TK3 was 0.53 cm after 14 days of incubation, and concentration of siderophore in King's B medium was 1.06 mmol/ml. It also secreted 82.4 mg/L of rhamnolipid, and antimicrobial peptide that completely inhibited growth of both pathogens at concentration of $30{\mu}l/ml$ in LB medium.
In this paper, an air isolate (NITT6L) has been screened based on hemolytic activity, emulsification activity, drop collapsing test, and oil displacement test, as well as lipase activity. It was found that strain NITT6L was able to reduce the surface tension of the medium from 61.5 to 39.83 mN/m and could form stable emulsions with tested vegetable oils. Morphological, biochemical, 16S rRNA sequencing analyses, and fatty acid methyl ester analysis using gas chromatography confirmed that the air isolate under study was Pseudomonas aeruginosa. Characterization of the biosurfactant using agar double diffusion assay revealed that the biosurfactant was anionic in nature, and CTAB-methylene blue assay and Molisch test revealed its glycolipid nature. The FT-IR spectrum confirmed that the crude biosurfactant was a rhamnolipid. Using unoptimized medium containing sucrose as the carbon source, the isolate was found to produce 0.3 mg/ml of rhamnolipid in batch cultivation (shake flask) at $37^{\circ}C$ and pH 7. Optimization of the medium components was carried out using design of experiments and the yield of rhamnolipid has been enhanced to 4.6 mg/ml in 72 h of fermentation.
A biosurfactant producing bacteria strain, D2D2 was selected from diesel-contaminated soil, and identified as Pseudomonas aeroginosa. A glycolipid produced by P. aeroginosa D2D2 was purified by ethyl acetate extraction and adsorption chromatography. The biosurfactant was Identified as glycolipid which has two types of biosurfactants as a results of TLC analysis. The purified glycolipid biosurfactant reduced the surface tension of water to 27 dyne/cm. In time course studies of growth and rhamnolipid production in a minimal salts medium containing 1.5% glucose and 1.5% olive oil, a maximum rhamnolipid yield of $11.45gL^{-1}$ was obtained after 5 days.
Rescently we are interested in the biosurfactant. Biosurfactant have a low toxcity and easily biodegradable compound. Pseudomonas sp. 13 was isolated from soil. This microorganism produced biosurfactant that consists of glycolipid R-1 and R-2. A time course study of fermentation indicated that the appearance of glycolipid in the fermentation broth the commencement of the stationary phase with the respect to biomass. The effect of variation of the media components such as amount of glucose, nitrogen, phosphate and metal ions has been investigated. The following values found to be optimum for biosurfactant production (glucose, $20g/{\ell}$; carbon to nitrogen ratio, 40; carbon to phosphate, 18; $FeSO_4{\cdot}7H_2O\;20mg/{\ell}$).
Surface activities including CMC, surface tension, foaming power etc. of the rhamnolipid (RL), a biosurfactant fermented by microorganism were investigated. Both the RL and liquid detergent contained RL showed a good surface activity. For the detergency test, the liquid detergent with RL showed a slightly better performance than that of using an fatty acid. However for the foaming profile, the liquid detergent with RL exhibited a lot of foam volume and the suppression of the rinsing and foaming during rinsing cycles with the RL was not seen. Therefore it can be concluded that RL can be used as a main surfactant or co-surfactant in liquid detergents without functions of foaming suppression or rinse-aid.
Fatini Mat Arisah;Norhayati Ramli;Hidayah Ariffin;Toshinari Maeda;Mohammed Abdillah Ahmad Farid;Mohd Zulkhairi Mohd Yusoff
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.34
no.9
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pp.1877-1889
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2024
Rhamnolipid (RL) is renowned for its efficacy in bioremediating several types of organic and metal contaminants. Nevertheless, there has been a scarcity of studies specifically examining the relationship between this substance and metals, especially in terms of their impact on RL formation and the underlying interaction processes. This study addresses this gap by investigating the RL mechanism in Cr (VI) remediation and evaluating its effect on RL production in Pseudomonas aeruginosa RW9. In this study, P. aeruginosa RW9 was grown in the presence of 10 mg l-1 Cr (VI). We monitored RL yield, congeners distribution, and their ratios, as well as the transcriptional expression of the RL-encoded genes: rhlA, rhlB, and rhlC. Our results revealed that RL effectively reduced Cr (VI) to Cr (III), with RL yield increasing threefold, although with a slight delay in synthesis compared to control cells. Furthermore, Cr (VI) exposure induced the transcriptional expression of the targeted genes, leading to a significant increase in di-RL production. The findings confirm that Cr (VI) significantly impacts RL production, altering its structural compositions and enhancing the transcriptional expression of RL-encoded genes in P. aeruginosa RW9. This study represents a novel exploration of Cr (VI)'s influence on RL production, providing valuable insights into the biochemical pathways involved and supporting the potential of RL in Cr (VI) bioremediation.
Journal of the Korean Applied Science and Technology
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v.38
no.5
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pp.1219-1228
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2021
Rhamnolipids are recognized as eco-friendly biosurfactants and produced by the bio-process employing bacteria. Pseudomons aeruginosa is well-known to produce rhamnolipids in high yield during fermentation process. Rhamnose and 𝛽-hydroxylated fatty acid are main chemicals for rhamnolipids, which are produced in the form of congener mixtures. In this paper, the synthetic mechanism of rhamnolipids within bacteria cells was presented in part and foam control technologies were qualitatively described. Foam control during fermentation process was important to regulate a continuous process. During last decade, the technologies are developed enough to challenge to a commercial-scale production. In particular, rhamnolipids will be more valuable if these can be applicable to value-added chemicals, such as medicines.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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