A 10-year-old male neutered Labrador Retriever presented with a history of acute-onset tachypnoea, lethargy and anorexia. The dog was pyrexic, tachypnoeic and dyspnoeic on examination. A rapid antigen test for severe acute respiratory syndrome coronavirus-2 (SARS-CoV-2) was performed on an oropharyngeal swab and yielded a positive result. SARS-CoV-2 infection was subsequently confirmed by reverse transcription polymerase chain reaction (RT-PCR) analysis. Both of the dog's owners had positive rapid antigen test and RT-PCR analysis results for SARS-CoV-2. Additional diagnostics included computed tomography. Resolution of the dog's clinical signs was achieved with symptomatic treatment.
Iris yellow spot virus (IYSV) is a plant pathogenic virus which has been reported to continuously occur in onion bulbs, allium field crops, seed crops, lisianthus, and irises. In South Korea, IYSV is a "controlled" virus that has not been reported, and inspection is performed when crops of the genus Iris are imported into South Korea. In this study, reverse-transcription polymerase chain reaction (RT-PCR) and nested PCR inspection methods, which can detect IYSV, from imported crops of the genus Iris at quarantine sites, were developed. In addition, a modified positive plasmid, which can be used as a positive control during inspection, was developed. This modified plasmid can facilitate a more accurate inspection by enabling the examination of a laboratory contamination in an inspection system. The inspection methods that were developed in this study are expected to contribute, through the prompt and accurate inspection of IYSV at quarantine sites to the plant quarantine in South Korea.
A PT-PCR (reverse transcription-polymerase chain reaction) diagnostic method for potato virus Y (PVY) was developed using primer pair derived from conserved region of coat protein genes of several PVY strains, A 764 bp PCR product was detected from several lines of potato cv. Atlantic. We could prove that the 764 bp DNA fragment was indeed the PVY gene by sequencing analysis. PVY detection method using RT-PCR technique was about tuber tissue.
Kim, Hye-Ryung;Park, Jonghyun;Han, Hyung-Soo;Kim, Yu-Kyung;Jeon, Hyo-Sung;Park, Seung-Chun;Park, Choi-Kyu
Korean Journal of Veterinary Service
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v.44
no.3
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pp.163-168
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2021
The rapid and reliable detection of severe acute respiratory syndrome coronavirus 2 (SARS-CoV-2) plays a key role in isolating infected patients and preventing further viral transmission. In this study, we evaluated the clinical diagnostic performances of a commercial real-time reverse transcription loop-mediated isothermal amplification (RRT-LAMP) assay (Isopollo® COVID-2 assay, M-monitor, Daegu, Korea) using eighty COVID-19 suspected clinical samples and compared these with the results of a commercial real-time reverse transcription polymerase chain reaction (RT-qPCR) assay (AllplexTM 2019-nCoV rRT-QPCR Assay, SeeGene, Seoul, Korea). The results of the RRT-LAMP assay targeting the N or RdRp gene of SARS-CoV-2 showed perfect agreement with the RT-qPCR assay results in terms of detection. Furthermore, the RRT-LAMP assay was completed in just within a 20-min reaction time, which is significantly faster than about the 2 h currently required for the RT-qPCR assay, thus enabling prompt decision making regarding the isolation of infected patients. The RRT-LAMP assay will be a valuable tool for rapid, sensitive, and specific detection of SARS-CoV-2 in human or unexpected animal clinical cases.
Kim, Young-Ok;Park, Eun-Mi;Nam, Bo-Hye;Kong, Hee-Jeong;Kim, Woo-Jin;Noh, Jae-Koo;Lee, Sang-Jun;Kim, Kyung-Kil
Animal cells and systems
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v.14
no.1
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pp.25-30
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2010
We employed a new and improved differential display reverse transcription-polymerase chain reaction (DDRT-PCR) method, which involves annealing control primers (ACPs), to identify the genes that are specifically or prominently expressed in olive flounder (Paralichthys olivaceus) juveniles (35 days post-hatch; dph) compared to larval-stage (dph 21) flounder. Using 60 ACPs, we identified eight differentially expressed genes (DEGs) and basic local alignment search tool (BLAST) searches revealed eight known genes. Gene expression levels were confirmed by RT-PCR. Phosphoglucose isomerase (PGI) was highly expressed at 21 dph, while nephrosin, myosin light chain (MLC), myosin heavy chain (MHC), carboxypeptidase A, chymotrypsin B, fish-egg protein, and matrix protein were expressed at 35 dph. PGI, MLC, and MHC expression was further analyzed by RT-PCR. The differentially expressed genes identified in this study may provide insights into the molecular basis of development in olive flounder.
Lee, Bong-Choon;Bae, Ju-Young;Kim, Sang-Min;Ra, Ji-Eun;Choi, Nak Jung;Choi, Man Young;Park, Ki Do
Research in Plant Disease
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v.23
no.4
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pp.363-366
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2017
Barley mild mosaic virus (BaMMV), Barley yellow mosaic virus (BaYMV) and Barley yellow dwarf virus (BYDV) have been identified as an important causative agents for an economically important disease of winter barley in Korea. In this study, a multiplex reverse transcription polymerase chain reaction (mRT-PCR) method was used for the simultaneous detection. Three sets of virus-specific primers targeted to the capsid protein coding genes of BaMMV, BaYMV and BYDV were used to amplify fragments that were 594 bp, 461 bp, and 290 bp, respectively. Several sets of primers for each target virus were evaluated for their sensitivity and specificity by multiplex RT-PCR. The optimum primer concentrations and RT-PCR conditions were determined for the multiplex RT-PCR. The mRT-PCR assay was found to be a better and rapid virus diagnostic tool of specific barley diseases and potential for investigating the epidemiology of these viral diseases.
The coat protein (CP) gene of Apple mosaic virus (ApMV), a member of the genus Ilarvirus, was selected for the design of virus-specific primers for amplification and molecular detection of the virus in cultivated apple. A combined assay of reverse transcription and polymerase chain reaction (RT-PCR) was performed with a single pair of ApMV-specific primers and crude nucleic acid extracts from virus-infected apple for rapid detection of the virus. The PCR product was verified by restriction mapping analysis and by sequence determination. The lowest concentration of template viral RNA required for detection was 100 fg. This indicates that the RT-PCR for detection of the virus is a 10$^3$times more sensitive, reproducible and time-saving method than the enzyme-linked immunosorbent assay. The specificity of the primers was verified using other unrelated viral RNAs. No PCR product was observed when Cucumber mosaic virus (Cucumovirus) or a crude extract of healthy apple was used as a template in RT-PCR with the same primers. The PCR product (669 bp) of the CP gene of the virus was cloned into the plasmid vector and result-ant recombinant (pAPCP1) was selected for molecule of apple transformation to breed virus-resistant transgenic apple plants as the next step. This method can be useful for early stage screening of in vitro plantlet and genetic resources of resistant cultivar of apple plants.
Tobacco mosaic tobamovirus (TMV), cucumber mosaic cucumovirus (CMV), cucumber green mottle mosaic tobamovirus (CGMMV) and zucchini yellow mosaic potyvirus (ZYMV) from individual fruits and seeds of hot pepper and cucumber were detected by the reverse transcription-polymerase chain reaction (RT-PCR). The dilution end-points for RT-PCR in curde sap from TMV. and CMV - infected hot pepper leaves and CMV - and CGMMV-infected cucumber leaves were 10-5. However, the amount of PCR product obtained from preparation of ZYMV-infected cucumber leaf was 10-fold lower than those of CMV or CGMMV-infected cucumber leaves. In hot pepper, both TMV and CMV were detected in all parts of the fruit wall tissue, but the yields of PCR products in the fruit stalk and its surrounding tissues were higher than those of the end parts of the fruit. On the other hand, in cucumber fruit infected with CMV, CGMMV or ZYMV, the fruit wall tissue and seed located in both stalk and end parts showed higher yields of PCR products than those of intermediate parts. Of five viruses that were analysed, only TMV in hot pepper seed, and CGMMV and CMV in cucumber seed were detected in testa parts.
Soybean yellow mottle mosaic virus (SYMMV) is a new emerging plant virus detected in soybean (Glycine max) in Korea. Reverse transcription loop-mediated isothermal amplification (RT-LAMP) assay for rapid detection of SYMMV has been developed. In this study, we have designed primers (SYMM-F3/B3/FIP/BIP) specific to sequences from the coat protein gene of SYMMV genome. Sensitivity analysis showed that RT-LAMP was 10 to 100 times more sensitive than reverse transcription polymerase chain reaction (RT-PCR). The optimal reaction condition of RT-LAMP was determined at $65^{\circ}C$ for 50 minutes. The result indicates that RT-LAMP assay does not require special equipment and long time for SYMMV detection. Therefore, it can be an alternative detection method of RT-PCR in laboratory.
For the molecular detection of Sweet potaio feathery mottle virus (SPFMV) from diseased sweet potato plants, reverse transcription and polymerase chain reaction (RT-PCR) was performed with the use of a set of virus-specific primers to amplify an 816 bp product. The viral coat protein gene was selected for the design of the primers. No PCR product was amplified when Turnip mosaic virus, Potato vims Y or Cucumber mosaic virus were used as template in RT-PCR with the SPFMV-specific primers. The lowest concentration of template viral RNA required for detection was 10 fg. The vim was rapidly detected from total nucleic acids of leaves and roots from the virus-infected sweet potato plants as well as from the purified viral RNA by the RT-PCR. Twenty-four sweet potato samples were selected and analyzed by RT-PCR and restriction fragment length polymorphism (RFLP). RFLP analysis of the PCR products showed three restriction patterns, which resulted in some point mutations suggesting the existence of quasi-species for the vims in the infected sweet potato plants.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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