The enantiomers of higenamine were directly separated by high performance liquid chromatography using a chiral stationary phase and detected by UV. The R- and S-isomers of higenamine were eluted at the retention time of 22 min and 27 min, respectively. Higenamine was determined to be present as R-(+)-enantiomer not only in the embryo of Nelumbo nucifera, from which the separation of R-(+)-higenamine was reported, but also in various Aconite roots, from which higenamine was separated as optically inert racemic mixtures.
Polyester of linear homopolymer poly(ethylene terephthalate)(PET) was chemically modified through the formation of branched copolymer to improve the undesirable properties of fiber. Photo-induced graft copolymerization of the acrylic monomers acrylic acid (AA) and methyl acrylate (MA) in the liquid and vapor phase, respectively, onto N,N-dimetylformamide (DMF)-pretreated PET fibers was carried out. The effect of various synthesis conditions and DMF pretreatment of the PET on the graft yield was investigated. Grafting mechanism was analysed. The grafting was promoted by increasing DMF pretreatment temperature and amount of DMF retention in the fiber. The increasing biacetyl and monomer flow time, and irradiation time enhanced the grafting up to a certain amount and thereafter it decreased.
A rapid, selective and sensitive reversed-phase HPLC method for the determination of a major metabolite of terfenadine, fexofenadine, in human serum was developed, validated, and applied to the pharmacokinetic study of terfenadine. Fexofenadine and internal standard, haloperidol were extracted from human serum by liquid-liquid extraction with acetonitrile and analyzed on a $Symmetry^{TM}$ C8 column with the mobile phase of 1% triethylamine phosphate (pH 3.7)-acetonitrile (67:33, v/v, adjusted to pH 5.6 with triethylamine). Detection wavelength of 230 nm for excitation, 280 nm for emission and flow rate of 1.0 mL/min were fixed for the study. The assay robustness for the changes of mobile phase pH, organic solvent content, and flow rate was confirmed by $3^{3}$ factorial design using a fixed fexofenadine concentration (50 ng/mL) with respect to its peak area and retention time. In addition, the ruggedness of this method was investigated at three different laboratories using same quality control (QC) samples. This method showed linear response over the concentration range of 10-500 ng/mL with correlation coefficients greater than 0.999. The lower limit of quantification using 0.5 mL of serum was 10 ng/mL, which was sensitive enough for the pharmacokinetic studies of terfenadine. The overall accuracy of the quality control samples ranged from 95.70 to 114.58% for fexofenadine with overall precision (% C.V.) being 3.53-14.39%. The relative mean recovery of fexofenadine for human serum was 90.17%. Stability studies (freeze-thaw, short-term, extracted serum sample and stock solution) showed that fexofenadine was stable during storage, or during the assay procedure in human serum. However, the storage at $-70^{\circ}C$ for 4 weeks showed that fexofenadine was not stable. The peak area and retention time of fexofenadine were not significantly affected by the changes of mobile phase pH, organic solvent content, and flow rate under the conditions studied. This method showed good ruggedness (within 15% C.V.) and was successfully used for the analysis of fexofenadine in human serum samples for the pharmacokinetic studies of orally administered Tafedine tablet (60 mg as terfenadine) at three different laboratories, demonstrating the suitability of the method.
A rapid, selective and sensitive reversed-phase HPLC method for the determination of dipyridamole in human serum was developed, validated, and applied to the pharmacokinetic study of dipyridamole. Dipyridamole and internal standard, loxapine, were extracted from human serum by liquid-liquid extraction with diethyl ether and analyzed on a Nova Pak $C_{I8}$ column with the mobile phase of 40 mM ammonium acetate:methanol:acetonitrile (35:35:30)(v/v/v, pH 7.8). Detection wavelength of 280 nm and flow rate of 1.0 mL/min were fixed for the study. The assay robustness for the changes of mobile phase pH, organic solvent content, and flow rate was confirmed by $3^3$ factorial design using a fixed dipyridamole concentration (50 ng/mL) with respect to its peak area and retention time. And also, the ruggedness of this method was investigated at three different laboratories using same quality control (QC) samples. This method showed linear response over the concentration range of 2-2000 ng/mL with correlation coefficients greater than 0.999. The lower limit of quantification using 0.5 mL of serum was 2 ng/mL, which was sensitive enough for pharmacokinetic studies of dipyridamole. The overall accuracy of the quality control samples ranged from 103.94 to 105.86% for dipyridamole with overall precision (% C.V.) being 4.60-11.49%. The relative mean recovery of dipyridamole for human serum was 97.64%. Stability studies showed that dipyridamole was stable during storage, or during the assay procedure in human serum. The peak area and retention time of dipyridamole were not significantly affected by the changes of mobile phase pH, organic solvent content, and flow rate under the conditions studied. This method showed good ruggedness (within 15% C.V.) and was successfully used for the analysis of dipyridamole in human serum samples for the pharmacokinetic studies of orally administered Dimor tablet (75 mg as dipyridamole) at three different laboratories, demonstrating the suitability of the method.
A rapid, selective and sensitive reversed-phase HPLC method for the determination of promethazine in human serum was developed, validated, and applied to the pharmacokinetic study of promethazine. Promethazine and internal standard, chlorpromazine, were extracted from human serum by liquid-liquid extraction with n-hexane containing 0.8% isopropanol and analyzed on a Capcell Pak CN column with the mobile phase of acetonitrile-0.2 M potassium dihydrogen phosphate (42:58, v/v, adjusted to pH 6.0 with 1 M NaOH). Detection wavelength of 251 nm and flow rate of 0.9 mL/min were fixed for the study. The assay robustness for the changes of mobile phase pH, organic solvent content, and flow rate was confirmed by $3^{3}$ factorial design using a fixed promethazine concentration (10 ng/mL) with respect to its peak area and retention time. In addition, the ruggedness of this method was investigated at three different laboratories using same quality control (QC) samples. This method showed linear response over the concentration range of 1-40 ng/mL with correlation coefficients greater than 0.999. The lower limit of quantification using 1 mL of serum was 1 ng/mL, which was sensitive enough for pharmacokinetic studies. The overall accuracy of the quality control samples ranged from 96.15 to 105.40% for promethazine with overall precision (% C.V.) being 6.70-11.22%. The relative mean recovery of promethazine for human serum was 63.54%. Stability (freeze-thaw and short-term) studies showed that promethazine was stable during storage, or during the assay procedure in human serum. However, the storage at $-80^{\circ}C$ for 4 weeks showed that promethazine was not stable. Extracted serum sample and stock solution were not allowed to stand at ambient temperature for 12 hr prior to injection. The peak area and retention time of promethazine were not significantly affected by the changes of mobile phase pH, organic solvent content, and flow rate under the conditions studied. This method showed good ruggedness (within 15% C.V.) and was successfully used for the analysis of promethazine in human serum samples for the pharmacokinetic studies of orally administered Himazin tablet (25 mg as promethazine hydrochloride) at three different laboratories, demonstrating the suitability of the method.
A rapid, selective and sensitive reversed-phase HPLC method for the determination of etodolac in human serum was developed, validated, and applied to the pharmacokinetic study of etodolac. Etodolac and internal standard, ibuprofen were extracted from human serum by liquid-liquid extraction with hexane/isopropanol (95:5, v/v) and analyzed on a Luna C18(2) column with the mobile phase of 1% aqueous acetic acid-acetonitrile (4:6, v/v). Detection wavelength of 227 nm and flow rate of 1.0 mL/min were fixed for the study. The assay robustness for the changes of mobile phase pH, organic solvent content, and flow rate was confirmed by $3^3$ factorial design using a fixed etodolac concentration $(1\;{\mu}g/mL)$ with respect to its peak area and retention time. And also, the ruggedness of this method was investigated at three different laboratories using same quality control (QC) samples. This method showed linear response over the concentration range of $0.05-40\;{\mu}g/mL$ with correlation coefficients greater than 0.999. The lower limit of quantification using 0.5 mL of serum was 0.05 ${\mu}g/mL$, which was sensitive enough for pharmacokinetic studies. The overall accuracy of the quality control samples ranged from 92.00 to 110.00% for etodolac with overall precision (% C.V.) being 1.08-10.11%. The percent recovery for human serum was in the range of 76.73-115.30%. Stability studies showed that etodolac was stable during storage, or during the assay procedure in human serum. The peak area and retention time of etodolac were not significantly affected by the changes of mobile phase pH, organic solvent content, and flow rate under the conditions studied. This method showed good ruggedness (within 15% C.V.) and was successfully used for the analysis of etodolac in human serum samples for the pharmacokinetic studies of orally administered Lodin XL tablet (400 mg as etodolac) at three different laboratories, demonstrating the suitability of the method.
A selective and sensitive reversed-phase HPLC method for the determination of fenoprofen in human serum was developed, validated, and applied to the pharmacokinetic study of fenoprofen calcium. Fenoprofen and internal standard, ketoprofen, were extracted from human serum by liquid-liquid extraction with diethyl ether and analyzed on a Luna C18(2) column with the mobile phase of acetonitrile-3 mM potassium dihydrogen phosphate (32:68, v/v, adjusted to pH 6.6 with phosphoric acid). Detection wavelength of 272 nm and flow rate of 0.25 mL/min were fixed for the study. The assay robustness for the changes of mobile phase pH, organic solvent content, and flow rate was confirmed by $3^{3}$ factorial design using a fixed fenoprofen concentration $(2\;{\mu}g/mL)$ with respect to its peak area and retention time. And also, the ruggedness of this method was investigated at three different laboratories using same quality control (QC) samples. This method showed linear response over the concentration range of $0.05-100\;{\mu}g/mL$ with correlation coefficients greater than 0.999. The lower limit of quantification using 1 mL of serum was $0.05\;{\mu}g/mL$, which was sensitive enough for pharmacokinetic studies. The overall accuracy of the quality control samples ranged from 92.27 to 109.20% for fenoprofen with overall precision (% C.V.) being 5.51-11.71 %. The relative mean recovery of fenoprofen for human serum was 81.7%. Stability (freeze-thaw, short and long-term) studies showed that fenoprofen was not stable during storage. But, extracted serum sample and stock solution were allowed to stand at ambient temperature for 12 hr prior to injection without affecting the quantification. The peak area and retention time of fenoprofen were not significantly affected by the changes of mobile phase pH, organic solvent content, and flow rate under the conditions studied. This method showed good ruggedness (within 15% C.V.) and was successfully used for the analysis of fenoprofen in human serum samples for the pharmacokinetic studies of orally administered Fenopron tablet (600 mg as fenoprofen) at three different laboratories, demonstrating the suitability of the method.
A rapid, selective and sensitive reversed-phase HPLC method for the determination of glipizide in human serum was validated and applied to the pharmacokinetic study of glipizide. Glipizide and internal standard, tolbutamide, were extracted from human serum by liquid-liquid extraction with benzene and analyzed on a Nova Pak $C_{18}\;60{\AA}$ column with the mobile phase of acetonitrile-potassium dihydrogen phosphate (10 mM, pH 3.5) (4:6, v/v). Detection wavelength of 275 nm and flow rate of 0.7 ml/min were fixed for the study. The assay robustness for the changes of mobile phase pH, organic solvent content, and flow rate was confirmed by $3^3$ factorial design using a fixed glipizide concentration (500 ng/ ml) with respect to its peak area and retention time. And also, the ruggedness of this method was investigated at three different laboratories using same quality control (QC) samples. This method showed linear response over the concentration range of 10-1000 ng/ml with correlation coefficient greater than 0.999. The lower limit of quantitation using 0.5 ml of serum was 10.0 ng/ml, which was sensitive enough for pharmacokinetic studies. The overall accuracy of the quality control samples ranged from 82.6 to 105.0% for glipizide with overall precision (% C.V.) being 1.13-13.20%. The percent recovery for human serum was in the range of 85.2 93.5%. Stability studies showed that glipizide was stable during storage, or during the assay procedure in human serum. The peak area and retention time of glipizide were not significantly affected by the changes of mobile phase pH, organic solvent content, and flow rate under the conditions studied. This method showed good ruggedness (within 15% C.V.) and was successfully used for the analysis of glipizide in human serum samples for the pharmacokinetic studies at three different laboratories, demonstrating the suitability of the method.
사과 및 배 시표에서 농약 다성분의 gas chromatography를 이용한 잔류분석법 확립을 위하여 199가지의 농약을 선정하여 retention time 및 검출기에 따라 ECD 5 그룹 및 NPD 5 그룹의 10개 그룹으로 분류하였다. 시료의 종류에 따른 분석조건을 확립하기 위한 회수율 시험은 농약들의 log $P_{ow}$ 값과 화학적 분류에 따라 총 18개 (ECD 11개, NPD 7개)의 농약을 선정하였다. 예비 실험 후 확립된 분석방법에 따라 10개 그룹의 혼합 표준용액으로 사과 및 배에 대한 회수율시험을 행하였다. 그 결과, 총 196가지의 농약의 70%에 해당하는 사과에서 136개, 배에서 133개의 농약들에서 회수율 70에서 120%의 양호한 결과를 나타내었다. 그러나 사과에서 43개, 배에서 45개의 농약들이 70% 미만의 회수율을 보였고, fenvalerate는 120% 이상의 회수율을 나타내었으며, 사과에서 17개 및 배에서 18개의 농약들은 검출이 되지 않았다. 그러나 확립된 분석법은 SOP에 의한 신속하고 수월한 수행으로 농산물 중의 잔류농약을 검출 및 모니터링하는 목적에 적합하다고 사료된다.
This study was conducted to supplement limit of previous study, The objectives of this study were to select optimal conditions of high performance liquid chromatography(HPLC) operation for detecting urinary 2-thiothiazolicline-4-carboxylic acid(TTCA) and thiocarbamide simultaneously, and to evaluate recovery rates for various liquid-liquid extration method of these metabolites, The results are as follows : 1. The urinary TTCA and thiocarbamide were separate sharply when flow rate is $0.7m{\ell}/min$, using a series $C_8$ and $C_{18}$ column, 50 mM $KH_2PO_4$ : acetonitrile (93.5 : 6.5) and pH 3.5 as a mobile phase. The retention time was TTCA, $12.07{\pm}0.11$(mean${\pm}$SD, n=06), thiocarbamide, $7.85{\pm}0.01$ (mean${\pm}$SD, n=6), respectively. The calibration curve for TTCA and thiocarbamide was linear within the range 0.05 to $30{\mu}g/m{\ell}$. 2. By the liquid-liquid extration, butanol extration with $(NH_4)_2$ as a salting-out reagent was used as a simultaneous extration method for these metabolites in acid state, and recovery rates of this method are urinary TTCA, $49.6{\pm}17.7$ (mean${\pm}$SD, n=16), thiocarbamide, $43,9{\pm}5.50$ (mean${\pm}$SD, n=16), respectively 3. The precision(pooled coefficients of variation for 4 concentration) of the urinary thiocarbamide analysis was 0.03754 by butanol liquid-liquid extraction with $(NH_4)_2$ as a salting-out reagent, and TTCA was 0.04082 by ethyl acetate liquid-liquid extration with $(NH_4)_2$ as a salting out reagent The above results show that the butanol liquid-liquid extraction with $(NH_4)_2$ as a salting-out reagent in acid state, and using a series $C_8$ and $C_{18}$ column, 50 mM $KH_2PO_4$ : acetonitrile (93.5 : 6.5) and pH 3.5 as a mobile phase are suitable for the analysis of urinary TTCA and thiocarbamide simultaneously. The detection limit of TTCA and thiocarbamide was about $0.17{\mu}g/m{\ell}$, $0.07{\mu}g/m{\ell}$.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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