IscR (iron-sulfur cluster regulator) has been reported to be a repressor of the iscRSUA operon, and in vitro transcription reactions have revealed that IscR has a repressive effect on the iscR promoter in the case of [$Fe_{2}S_{2}$] cluster loading. In the present study, the iscR gene from A. ferrooxidans ATCC 23270 was cloned and successfully expressed in Escherichia coli, and then purified by one-step affinity chromatography to homogeneity. The molecular mass of the IscR was 18 kDa by SDS-PAGE. The optical and EPR spectra results for the recombinant IscR confirmed that an iron-sulfur cluster was correctly inserted into the active site of the protein. However, no [$Fe_{2}S_{2}$] cluster was assembled in apoIscR with ferrous iron and sulfide in vitro. Therefore, the [$Fe_{2}S_{2}$] cluster assembly in IscR in vivo would appear to require scaffold proteins and follow the Isc "AUS" pathway.
Regulation of cell proliferation is a complex process involving the regulated expression and /or modification of discrete gene products. which control transition between different stages of the cycle. The purpose of this short review is to provide an overview of somatic cell cycle events and their controls. Cycline have appeared as major positive regulators in this network, because their association to the cyclin-dependent kinases(Cdks) allows the subsequent activation on the Cdk/cyclin complexes and their catalatic activity. In mammalian cells, early to mid G1 progression and late G1 progression leading to S phase entry are directed by D-type cyclins-Cdk4, 6 and cyclin E-Cdk 2 both of which can phosphorylate the retinoblastoma protein (pRB). pRB is a transcriptional repressor which, in its unphosphorylated state, binds to members of the E2F transcription factor family and blocks E2F-dependent transcription of genes controlling the G1 to S phase transition an subsequent DNA synthesis. Cyclin A is produced in late G1 and expressed during S and G2 phae, and expression of B-type cyclins is typically maximal during the G2 to M phase transition and it controls the passage through M phase. They primarily associate with the activate Cdk2, and Cdc2, respectively. On the other hand, the Cdk inhibitors negatively control the activity of C아/cyclin complex by coordinating internal and/or external signals and impending proliferation at several key checkpoints. These current and further findings will provide novel approaches to understanding and treating major diseases.
The circadian clock system enables organisms to anticipate the rhythmic environmental changes and to manifest behavior and physiology at advantageous times of the day. Transcriptional/translational feedback loop (TTFL) is the basic feature of the eukaryotic circadian clock and is based on the rhythmic association of circadian transcriptional activator and repressor. In Drosophila, repression of dCLOCK/CYCLE (dCLK/CYC) mediated transcription by PERIOD (PER) is critical for inducing circadian rhythms of gene expression. Pacemaker neurons in the brain control specific circadian behaviors upon environmental timing cues such as light and temperature cycle. We show that amino acids 657-707 of dCLK are important for the transcriptional activation and the association with PER both in vitro and in vivo. Flies expressing dCLK lacking AA657-707 in $Clk^{out}$ genetic background, homologous to the mouse Clock allele where exon 19 region is deleted, display pacemaker-neuron-dependent perturbation of the molecular clockwork. The molecular rhythms in light-cycle-sensitive pacemaker neurons such as ventral lateral neurons ($LN_vs$) were significantly disrupted, but those in temperature-cycle-sensitive pacemaker neurons such as dorsal neurons (DNs) were robust. Our results suggest that the dCLK-controlled TTFL diversify in a pacemaker-neuron-dependent manner which may contribute to specific functions such as different sensitivities to entraining cues.
Flavonoids have diverse biological functions in human health. All flavonoids contain a common 2-phenyl chromone structure (C6-C3-C6) as a scaffold. Hence, in using such a scaffold, plenty of high-value-added flavonoids can be synthesized by chemical or biological catalyzation approaches. (2S)-Naringenin is one of the most commonly used flavonoid scaffolds. However, biosynthesizing (2S)-naringenin has been restricted not only by low production but also by the expensive precursors and inducers that are used. Herein, we established an induction-free system to de novo biosynthesize (2S)-naringenin in Escherichia coli. The tyrosine synthesis pathway was enhanced by overexpressing feedback inhibition-resistant genes (aroGfbr and tyrAfbr) and knocking out a repressor gene (tyrR). After optimizing the fermentation medium and conditions, we found that glycerol, glucose, fatty acids, potassium acetate, temperature, and initial pH are important for producing (2S)-naringenin. Using the optimum fermentation medium and conditions, our best strain, Nar-17LM1, could produce 588 mg/l (2S)-naringenin from glucose in a 5-L bioreactor, the highest titer reported to date in E. coli.
We isolated a rice (Oryza sativa L.) WRKY gene which is highly upregulated in senescent leaves, denoted OsWRKY42. Analysis of OsWRKY42-GFP expression and its effects on transcriptional activation in maize protoplasts suggested that the OsWRKY42 protein functions as a nuclear transcriptional repressor. OsWRKY42-overexpressing (OsWR KY42OX) transgenic rice plants exhibited an early leaf senescence phenotype with accumulation of the reactive oxygen species (ROS) hydrogen peroxide and a reduced chlorophyll content. Expression analysis of ROS producing and scavenging genes revealed that the metallothionein genes clustered on chromosome 12, especially OsMT1d, were strongly repressed in OsWRKY42OX plants. An OsMT1d promoter:LUC construct was found to be repressed by OsWRKY42 overexpression in rice protoplasts. Finally, chromatin immunoprecipitation analysis demonstrated that OsWRKY42 binds to the W-box of the OsMT1d promoter. Our results thus suggest that OsWRKY42 represses OsMT1d-mediated ROS scavenging and thereby promotes leaf senescence in rice.
Cho, Seok Keun;Ryu, Moon Young;Shah, Pratik;Poulsen, Christian Peter;Yang, Seong Wook
Molecules and Cells
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v.39
no.8
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pp.581-586
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2016
Post-translational modifications (PTMs) of proteins are essential to increase the functional diversity of the proteome. By adding chemical groups to proteins, or degrading entire proteins by phosphorylation, glycosylation, ubiquitination, neddylation, acetylation, lipidation, and proteolysis, the complexity of the proteome increases, and this then influences most biological processes. Although small RNAs are crucial regulatory elements for gene expression in most eukaryotes, PTMs of small RNA microprocessor and RNA silencing components have not been extensively investigated in plants. To date, several studies have shown that the proteolytic regulation of AGOs is important for host-pathogen interactions. DRB4 is regulated by the ubiquitin-proteasome system, and the degradation of HYL1 is modulated by a de-etiolation repressor, COP1, and an unknown cytoplasmic protease. Here, we discuss current findings on the PTMs of microprocessor and RNA silencing components in plants.
Han, Arim;Chae, Yun-Cheol;Park, Jin Woo;Kim, Kee-Beom;Kim, Ji-Young;Seo, Sang-Beom
BMB Reports
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v.48
no.7
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pp.401-406
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2015
Here we report that the H3K9 demethylase KDM3B represses transcription of the angiogenesis regulatory gene, ANGPT1. Negative regulation of ANGPT1 by KDM3B is independent of its Jumonji (JmjC) domain-mediated H3K9 demethylase activity. We demonstrate that KDM3B downregulates ANGPT1 via interaction with SMRT, and suggest that the repressor complex is formed at the promoter area of ANGPT1. Using MTT and wound healing assays, depletion of KDM3B was found to increase cell proliferation and cell motility, indicating that KDM3B has a role in angiogenesis. [BMB Reports 2015; 48(7): 401-406]
The nucleotide sequence contains 2 open reading frames encoding a 45-amino-acid protein homologous to a transcriptional repressor protein CopG, and a 203-amino-acid protein homologous to a replication protein RepB. Putative countertranscribed RNA, a double-strand origin, and a single-strand origin were also identified. A shuttle vector, pUCL2.1, for various lactic acid bacteria (LAB) was constructed on the basis of the pCL2.1 replicon, into which an erythromycin-resistance gene as a marker and Escherichia coli ColE1 replication origin were inserted. pUCL2.1 was introduced into E. coli, Lc. lactis, Lactobacillus (Lb.) plantarum, Lb. paraplantarum, and Leuconostoc mesenteroides. The recombinant LAB maintained traits of transformed plasmid in the absence of selection pressure over 40 generations. Therefore, pUCL2.1 could be used as an E. coli/LAB shuttle vector, which is an essential to engineer recombinant LAB strains that are useful for food fermentations.
Bandi Srinivasulu;Kim Yoon-Jung;Chang Yong-Keun;Shang Guang-Dong;Yu Tin-Wein;Floss Heinz G.
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.16
no.9
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pp.1338-1346
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2006
Ansamitocin P-3 is a potent antitumor agent produced by A. pretiosum. A deletion mutant of A. pretiosum was constructed by deleting the asm2 gene, a putative transcriptional repressor. The deletion mutant showed a 9-fold enhanced ansamitocin P-3 productivity. The response surface method with central composite design was employed to further optimize the culture medium composition for ansamitocin P-3 production by the deletion mutant. The concentrations of four medium ingredients, dextrin, maltose, cotton seed flour, and yeast extract, which have been reported as major components for ansamitocin production, were optimized through a series of flask culture experiments. The optimum concentrations of the selected factors were found to be dextrin 6.0%; maltose 3.0%; cotton seed flour 0.53%; and yeast extract 0.45%. The maximum titer of ansamitocin P-3 was 78.3 mg/l with the optimized composition, about 15-folds higher than the unoptimized titer of 5.0 mg/l obtained with YMG medium.
Bacterial cell-to-cell communication, termed quorum sensing (QS), leads to coordinated group behavior in a cell-density-dependent fashion and controls a variety of physiological processes including virulence gene expression. The repressor of the lsr operon, LsrR, is the only known regulator of LuxS/AI-2-mediated QS in Salmonella. Although lack of lsrR did not result in noticeable differences in Salmonella survival, the down-regulation of QS as a result of lsrR overexpression decreased Salmonella survival within macrophages. We found that impaired growth of Salmonella overexpressing lsrR within macrophages was due largely to its hypersensitivity to NADPH-dependent oxidative stress. This, in turn, was a result of decreased expression of genes involved in the oxidative stress response, such as sodA, sodCI, and sodCII, when lsrR was overexpressed. These results suggest that down-regulation of QS by excess LsrR can lower Salmonella virulence by hampering Salmonella evasion from oxidative killing within macrophages.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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