The promoter regions from chromosomal DNA of Bacillus sp. SSA3 which is responsible for fermentation of Korean traditional soy sauce, were cloned for construction of expression vector of Bacills sp. SSA3. Recombinant plasmids were constructed by insertion of HindIIl-cleaved Bacillus sp. SSA3 chromosomal DNA fragments in front of the CAT gene of pGR71 plasmid and B-galactosidase gene of pUC18 plasmid. 6 recombinant plasmids were isolated from chloramphenicol resistant E. coli JM109 clones. All these plasmids were found to have promoter activity in Bacills sp. SSA3 and E. coli JM109. When these 6 clones of Bacills sp. SSA3 were cultivated in LB agar medium supplemented with 10% NaCI. fused CAT gene expression of 4 clones was significantly decreased in common. But the others were poorly inhibited.
Kim, Tae-Yun;Kang, Shin-Yong;Ahn, Il-Young;Cho, Seung-Yull;Hong, Sung-Jong
Parasites, Hosts and Diseases
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v.39
no.1
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pp.57-66
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2001
In the course of immunoscreening of Clonorchis sinensis cDNA library, a cDNA CsRP12 containing a tandem repeat was isolated. The cDNA CsRP 12 encodes two putative peptides of open reading frames (ORFs) 1 and 2 (CsRP12-1 and -2). The repetitive region is composed of 15 repeats of 10 amino acids. Of the two putative peptides, CsRP12-1 was proline-rich and found to have homologues in several organisms. Recombinant proteins of the putative peptides were bacterially produced and purified by an affinity chromatography Recombinant CsRP12-1 protein was recognized by sera of clonorchiasis patients and experimental rabbits, but recombinant CsRP 12-2 was not. One of the putative peptide, CsRP12-1, is designated CsPRA, proline-rich antigen of C. sinensis. Both the C-termini of CsRP12-1 and -2 were bacterially produced and analysed to show no antigenicity. Recombinant CsPRA protein showed high sensitivity and specificity. In experimental rabbits, IgG antibodies to CsPRA was produced between 4 and 8 weeks after the infection and decreased thereafter over one you. These results indicate that CsPRA is equivalent to a natural protein and a useful antigenic protein for serodiagnosis of human clonorchiasis.
To increase the production of glutathione by the expression of recombinant gsh plasmids, two genes responsible for the biosynthesis of glutathione were isolated and cloned. To clone a gshI gene, the GS903 mutant strain, which is deficient in $\gamma$-glutamylcysteine synthetase activity, has been raised. A gshI gene was cloned using pBR322 plasmid as a 3.6 Kb PstI DNA fragment isolated from E. coli K-12 chromosomal DNA. Also a gshIl gene was cloned using pUC13 plasmid as a 2.2 Kb PstI-BamHI DNA fragment. To study the effects of plasmid copy number and passenger DNA size on the expression levels of the gsh genes, various recombinant plasmids containing different sets of genes were constructed. The expression levels of the gsh genes were increased approximately twice higher in pUC series plasmids than that in pBR322 plasmid. But the sizes of the passenger DNA containing the gsh genes in the vector plasmid did not affect on the expression levels of the gsh genes.
To understand the comprehensive mechanisms of biological function for insulin-like growth factor-I (IGF-I) in vertebrates, we have investigated the cDNA sequence of this gene in the korean rockfish (Sebastes schlegeli). The mature form of korean rockfish IGF-I was found to be comprised of 67 amino acid residues, showing about a 7 kDa molecular weight. In this study, we used the polymerase chain reaction (PCR) to obtain a korean rockfish IGF-I (KR IGF-I) cDNA fragment, and methods of rapid amplification of cDNA ends (RACE) to obtain a full length of the KR IGF-I sequence. The KR IGF-I encoded for a predicted amino acid sequence showed identities of 93.6 %, 90.7 %, and 85.4 % in comparison with flounder, chinook salmon, and human IGF-I, respectively. To obtain recombinant biologically active polypeptides, korean rockfish B-C-A-D domains were amplified using the PCR, then the isolated cDNA was expressed in the E. coli BL21(DE3). The recombinant KR IGF-I protein biological function was measured by stimulation of [$^3H$] thymidine incorporation, suggesting the cDNA codes for the korean rockfish proIGF-I.
Leptin is a circulating non-glycosylated protein that is mainly produced in adipocytes. Leptin acts in the brain to regulate food intake and energy expenditure. Previously we reported our success in the isolation of a partial cDNA of the long form of the leptin receptor, OB-Rb, from rat spleen, and showed that leptin might also play a role in peripheral immune organs. In the present study, for the first time, the complete coding region of OB-Rb cDNA was cloned from rat splenocytes, and its nucleotide sequence was determined. The cDNA was then further expressed in E. coli and mammalian cells, thereby confirming the functional integrity of this receptor. Prokaryotically overexpressed OB-R protein was then used as an immunizing antigen in BALE/c mice to produce leptin receptor-specific antibodies. By using them, we confirmed the cell surface expression of OB-Rb in transfected CHO cells. It is our belief that the reagents, as produced in this study, will be of great use in further studies of the biological role of rat leptin.
A bacteria strain producing extracellular $\beta$-mannanase was isolated from soil and was identified as Aeromonas sp. A genomic DNA library constructed from Aeromonas, sp that secrets a $\beta$-mannanase was screened for mannan hydrolytic acticity. Recombinant $\beta$-mannanase activity was detercted on the basis of the clear zones around Escherichia coli colonies grown on a LB medium supplemented locust bean gum, EcoRI restriction analysis of plasmid prepared from recombinant E. coli which showed a $\beta$-mannanase activity revealed 10 kb DNA insert, The optimum pH and temperature for the activity of reconmbinant $\beta$-mannanase were 6.0 and $50^{\circ}C$ respectively and were identical to those of the native enzyme.
A subtracted cDNA library specific to osmotic stress of Haloxylon ammodendron (Mey.) Bge seedlings was constructed by suppression subtractive hybridization (SSH) and T/A cloning. SSH was performed between two groups of H. ammodendron seedlings, one was cultivated in Hoagland (H) solution as a driver and the other group was treated with osmotic stress of the Hoagland solution by the addition of 400 mM mannitol (M), as a tester. The library consisted of about 400 recombinant clones, with the average size being of 500 bp, ranging from 300 bp to 1500 bp. Using a PCR-select differential screening kit, 100 recombinant clones were randomly chosen from the subtracted cDNA library and hybridized with forward,reverse subtracted and unsubtracted probes for two rounds. As a result, 21 positive clones specific to osmotic stress were obtained and some of them were verified by Northern blot analysis. The sequencing analysis of 6 positive clones and the following homology comparison to GenBank [blastx] non-redundant databases characterized that two sequences obtained in this experiment may contribute to novel drought-related genes.
The chromosomal DNA of Klebsiella penumoniae KNF1 was partially digested with HindIII. pBR322 was completely digested with same enzyme with additional alkaline phosphatase treatment. Both DNA samples were ligated and transformed into E. coli KO60. Single coloneis of the transformed cells were isolated on N0free agar media. These colonies were ampicillin-resistant and tetracycline-sensitive. When the plasmids in transformants were cured, nitrogen-fixing activities were lost. Therefore, these transformants harbored recombinant plasmid including nif genes of K. pneumoniae. Nitrogenase activity of transformant was higher than or the same as that of K. pneumoniae KNF1.
Sa, Young-Hee;Choi, hang-Shik;Lee, Ki Hwan;Hong, Seong-Karp
Proceedings of the Korean Institute of Information and Commucation Sciences Conference
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2018.05a
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pp.588-591
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2018
Baculovirus was originally isolated from the alfalfa looper and contains a 134-kbp genome with 154 open reading frames (ORF). The major capsid protein VP39 together with some minor proteins forms the nucleocapsid ($21nm{\times}260nm$) that encloses the DNA with p6.9 protein. They are double-stranded, circular, supercoiled DNA molecules in a rod-shaped capsid. Wild-type baculoviruses exhibit both lytic and occluded life cycles that develop independently throughout the three phases of virus replication. Recombinant baculoviruses can transfer their vectors and express their recombinant proteins in a wide range of mammalian cell types. Especially, inclusion of a dominant selectable marker in these baculoviral vectors can express diverse recombinant genes in many cells. Baculoviral vectors were reconstructed with cytomegalovirus (CMV) promoter,uroplakin II promoter, polyhedron promoter, vesicular stomatitis virus G (VSVG), enhanced green fluorescent protein (EGFP), protein transduction domain (PTD) gene and so on. These reconstructed vectors were infected into various cell and cell lines. We performed transfection and expression of these recombinant vectors comparison with other control vectors. From this study, we knew that transfection and expression of these recombinant vectors have higher efficacy than any control vector. This work was supported by a grant from Mid-Career Researcher Program(NRF-2016R1A2B4016552) through the National Research Foundation of Korea(NRF) funded by the Ministry of Science, ICT & Future Planning(MSIP).
A study for expression of Korean Mistletoe (KM) lectin gene (A,B) in Saccharomyces cerevisiae was done using transforming system of yeast. In order to overexpress the genes efficiently in yeast, two lectin genes (A,B) were re-cloned and modified including Kozak translation initiation sequence using PCR amplification. The constructed plasmids containing modified lectin A and B genes were transformed to S. cerevisea INVSc (MAT G, his3 $\Delta$1, leu2, trpl-289, ura3-52). The transformed cells were identified by DNA sequencing with ABI3700 system and induced with 2% of galactose for recombinant KM lectin (rKM lectin) protein. The rKM lectin A and B proteins were determinated about 29kDa size of protein by SOS-P AGE and western blotting analysis. The expressed recombinant lectin was determinated 1.24∼1.75 $\mu\textrm{g}$ per 1 mg of cytosolic soluble protein by sandwich ELISA method. Moreover the lectin genes were expressed as maximum level at 36 h after galactose induction and lectin A gene was were repressed after 48 h.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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