Shim, Junbo;Shim, Eunyoung;Kim, Gwang Hoon;Han, Jong Won;Zuccarello, Giuseppe C.
ALGAE
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v.31
no.2
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pp.167-174
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2016
Biological response of cells to variable conditions should affect the expression level of certain genes. Quantification of these changes in target genes needs stable internal controls. Real-time quantitative polymerase chain reaction (PCR) has traditionally used reference or ‘housekeeping’ genes, that are considered to maintain equal expression in different conditions, to evaluate changes in target genes between samples and experimental conditions. Recent studies showed that some housekeeping genes may vary considerably in certain biological samples. This has not been evaluated in red algae. In order to identify the optimal internal controls for real-time PCR, we studied the expression of eleven commonly used housekeeping genes; elongation factor 1-alpha, glyceraldehyde-3-phosphate dehydrogenase, β-actin, polyubiquitin, 30S ribosomal gene, 60S ribosomal gene, beta-tubulin, alpha-tubulin, translation initiation factor, ubiquitin-conjugating enzyme, and isocitrate dehydrogenase in different life-history stages of Bostrychia moritziana. Our results suggest that glyceraldehyde-3-phosphate dehydrogenase (GAPDH) and 30S ribosomal gene, have the most stable gene expression levels between the different life history stages (male, female, carposporophyte, and tetrasporophyte), while the other genes are not satisfactory as internal controls. These results suggest that the combinations of GAPDH and 30S would be useful as internal controls to assess expression level changes in genes that may control different physiological processes in this organism or that may change in different life history stages. These results may also be useful in other red algal systems.
Fusarium wilt caused by Fusarium oxysporum f. sp. niveum (Fon) is the most serious soil-borne disease in the world and has become the main limiting factor of watermelon production. Reliable and quick detection and quantification of Fon are essential in the early stages of infection for control of watermelon Fusarium wilt. Traditional detection and identification tests are laborious and cannot efficiently quantify Fon isolates. In this work, a real-time polymerase chain reaction (PCR) assay has been described to accurately identify and quantify Fon in watermelon plants and soil. The FONRT-18 specific primer set which was designed based on identified specific sequence amplified a specific 172 bp band from Fon and no amplification from the other formae speciales of Fusarium oxysporum tested. The detection limits with primers were 1.26 pg/µl genomic DNA of Fon, 0.2 pg/ng total plant DNA in inoculated plant, and 50 conidia/g soil. The PCR assay could also evaluate the relationships between the disease index and Fon DNA quantity in watermelon plants and soil. The assay was further used to estimate the Fon content in soil after disinfection with CaCN2. The real-time PCR method is rapid, accurate and reliable for monitoring and quantification analysis of Fon in watermelon plants and soil. It can be applied to the study of disease diagnosis, plant-pathogen interactions, and effective management.
The estrogen receptor-related receptors (ERRs) are a group of nuclear receptor superfamily of transcription factors. ERRs and estrogen receptors (ERs) have overlapping affinities for coactivators and DNA binding sites, but differ markedly in ligand binding and activation. The three mammalian ERR genes have been implicated in diverse physiological processes ranging from placental development to maintenance of bone density, whereas the molecular diversity, function, and regulation of ERRs in non-mammalian species are not well understood. In the present study, to investigate the involvement of ERR in transcription and embryogenesis in marine invertebrates, a cDNA encoding ERR (SnERR) was cloned from the gonad in Strongylocentrotus nudus, by polymerase chain reaction (PCR). The amino acid sequence of SnERR showed high homology with that of S. purpuratus (91%). A phylogenetic tree clearly showed that SnERR is a member of the ERR family and clustered in echinodermata group as supported by a high bootstrap value. We examined gene expression of SnERR during embryonic development of S. nudus using real-time PCR. During the embryonic development, the mRNA of ERR was significantly high levels in early development stages (4~64 cell) and larval stages. The SnERR slightly activated transcription through the classical estrogen response elements (EREs) in the presence of genistein. In addition, peroxisome proliferator-activated receptor $\gamma$ coactivator (PGC)-$1\alpha$ knwon as a coactivator of ERR enhanced the snERR-mediated transactivation, suggesting that the PGC-$1\alpha$ is a coactivator of SnERR.
Noroviruses (noroV) are the major cause of nonbacterial gastroenteritis in humans worldwide. Since noroV cannot yet be cultured in vitro and their diagnosis by electron microscopy requires at least $10^6$ viral particles/g of stool a variety of molecular detection techniques represent an important step towards the detection of noroV. In the present study, we have applied real-time nucleic acid sequence-based amplification (real-time NASBA) for simultaneous detection of NoroV genogroup I (GI) and genogroup II (GII) using standard viral RNA. For real-time NASBA assay which can detected noroV GI and GII, a selective region of the genes encoding the capsid protein was used to design primers and genotype-specific molecular beacon probes. The specificity of the real-time NASBA using newly designed primers and probes were confirmed using standard viral RNA of noroV GI and GII. To determine the sensitivity of this assay, serial 10-fold dilutions of standard viral RNA of noroV GI and GII were used for reverse transcription polymerase chain reaction (RT-PCR) and real-time NASBA. The results showed that while agarose gel electrophoresis could detect RT-PCR products with 10 pg of standard viral RNA, the real-time NASBA assay could detect 100 fg of standard viral RNA. These results suggested that the real-time NASBA assay has much higher sensitivity than conventional RT-PCR assay. This assay was expected that might detect the viral RNA in the specimens which could have been false negative by RT-PCR. There were needed to perform real-time NASBA with clinical specimens for evaluating accurate sensitivity and specificity of this assay.
Journal of the Korean Society of Marine Environment & Safety
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v.26
no.6
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pp.674-680
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2020
Quantitative real-time polymerase chain reaction (qPCR) was applied for the early detection of red tides in the coastal areas of South Gyeongsang in 2019. Cochlodinium polykrikoides (Dinophyceae) was detected at very low cell densities (0.0015~0.0058 cells mL-1) in early June, but its cell density increased by up to 0.163 cells mL-1 in mid-August. Higher cell densities were detected mainly in Namhaedo using both qPCR and microscopy (maximum 24 cells mL-1) in late-August. Accordingly, a red tide alert was issued on September 2 (maximum 200 cells mL-1) on this island. C. polykrikoides cell density in Namhaedo peaked on September 11 (12,000 cells mL-1). Our results indicate that C. polykrikoides was detected at very low cell density in Namhaedo prior to bloom, which occurred in the same area. Therefore, qPCR is a useful tool to detect even at very low cell densities of C. polykrikoides for early warning of blooms.
The miniature pig is considered to be a better organ donor breed for xenotransplantation than other pig breeds because the size of the organs of the miniature pig is similar to that of humans. In this study, we aimed at identifying differentially expressed genes in the miniature pig ovary during pregnancy. For this, we used the miniature pig ovary model, annealing control primer-based reverse transcription polymerase chain reaction (PCR), quantitative real-time PCR (qRT-PCR), and northern blotting analysis. We identified 13 genes showing differential expression on the based of pregnancy status and validated 8 genes using qRT-PCR. We also sequenced the full-length cDNA of ephrin receptor A4 (EphA4), which had a significant difference in expression level, and validated it by northern blotting. These genes may provide a better understanding of the cellular and molecular mechanisms during pregnancy in miniature pig ovary.
Garlic can be infected by a variety of viruses, but mixed infections with leek yellow stripe virus, onion yellow dwarf virus, and allexiviruses are the most damaging, so an easy, inexpensive on-site method to simultaneously detect at least these three viruses with a certain degree of accuracy is needed to produce virus-free plants. The most common laboratory method for diagnosis is multiplex reverse transcription polymerase chain reaction (RT-PCR). However, allexiviruses are highly diverse even within the same species, making it difficult to design universal PCR primers for all garlic-growing regions in the world. To solve this problem, we developed an inexpensive on-site detection system for the three garlic viruses that uses a commercial mobile PCR device and a compact electrophoresis system with a blue light. In this system, virus-specific bands generated by electrophoresis can be identified by eye in real time because the PCR products are labeled with a fluorescent dye, FITC. Because the electrophoresis step might eventually be replaced with a lateral flow assay (LFA), we also demonstrated that a uniplex LFA can be used for virus detection; however, multiplexing and a significant cost reduction are needed before it can be used for on-site detection.
The ultimate goal of human assisted reproductive technology is to achieve a healthy pregnancy and birth, ideally from the selection and transfer of a single competent embryo. Recently, techniques for efficiently evaluating the state and quality of preimplantation embryos using time-lapse imaging systems have been applied. Artificial intelligence programs based on deep learning technology and big data analysis of time-lapse monitoring system during in vitro culture of preimplantation embryos have also been rapidly developed. In addition, several molecular markers of the secretome have been successfully analyzed in spent embryo culture media, which could easily be obtained during in vitro embryo culture. It is also possible to analyze small amounts of cell-free nucleic acids, mitochondrial nucleic acids, miRNA, and long non-coding RNA derived from embryos using real-time polymerase chain reaction (PCR) or digital PCR, as well as next-generation sequencing. Various efforts are being made to use non-invasive evaluation of embryo quality (NiEEQ) to select the embryo with the best developmental competence. However, each NiEEQ method has some limitations that should be evaluated case by case. Therefore, an integrated analysis strategy fusing several NiEEQ methods should be urgently developed and confirmed by proper clinical trials.
For the quantitative analysis of genetically modified (GM) maize in processed foods, primer sets and probes based on the 35S promoter (p35S), nopaline synthase terminator (tNOS), p35S-hsp70 intron, and zSSIIb gene encoding starch synthase II for intrinsic control were designed. Polymerase chain reaction (PCR) products (80~101 bp) were specifically amplified and the primer sets targeting the smaller regions (80 or 81 bp) were more sensitive than those targeting the larger regions (94 or 101 bp). Particularly, the primer set 35F1-R1 for p35S targeting 81 bp of sequence was even more sensitive than that targeting 101 bp of sequence by a 3-log scale. The target DNA fragments were also specifically amplified from all GM labeled food samples except for one item we tested when 35F1-R1 primer set was applied. A reference plasmid pGMmaize (3 kb) including the smaller PCR products for p35S, tNOS, p35S-hsp70 intron, and the zSSIIb gene was constructed for real-time PCR (RT-PCR). The linearity of standard curves was confirmed by using diluents ranging from $2{\times}10^1{\sim}10^5$ copies of pGMmaize and the $R^2$ values ranged from 0.999~1.000. In the RT-PCR, the detection limit using the novel primer/probe sets was 5 pg of genomic DNA from MON810 line indicating that the primer sets targeting the smaller regions (80 or 81 bp) could be used for highly sensitive detection of foreign DNA fragments from GM maize in processed foods.
Journal of Dental Rehabilitation and Applied Science
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v.34
no.3
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pp.186-195
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2018
Purpose: We performed quantitative and qualitative analysis of typical periodontal bacteria using real time PCR method to investigate the microbiological difference according to the severity of peri-implant disease in Koreans. Materials and Methods: Total of 60 implants were divided into three groups (healthy group, peri-implant mucositis group, peri-implantitis group) through periapical radiographs and clinical indices. The evaluated clinical parameters were pocket depth, plaque index, suppuration and bleeding on probing. Using a sterilized curette instrument, microbial samples were collected from the subgingival plaque and real-time PCR was performed on five periodontal bacteria. The relative expression levels of microorganisms were compared by comparative delta-CT method. Results: The relative expression levels of E. corrodens and T. denticola were significantly higher in the peri-implantitis group (P < 0.017). On the other hand, the relative expression level of F. nucleatum and P. gingivalis was relatively high in the healthy implant group regardless of the severity of disease. P. intermedia was significantly lower in the healthy implant group (P < 0.017). Conclusion: Periodontal bacteria were detected in Koreans with peri-implant diseases, but there was no microbiological distribution similar to periodontitis.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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