우리나라 주요 해산 어종인 쥐노래미 (Hexagrammos otakii)로부터 성장호르몬 유전자 CDNA를 클로닝하고 이의 염기서열과 발현 특성을 분석하였다. 뇌하수체 조직으로부터 CDNA library를 제작하였으며 membrane filter hybridization 및 expressed sequence tag기술을 이용하여 성장호르몬 CDNA transcript들을 대량 발굴하였다. 총 확보된 full-length clone 39개중 31개가 동일한 형태로 나타났으나 나머지 클론들에서는 5'쪽의 염기서열 변이, ORF내의 염기서열 삽입, 3'쪽의 여기서열의 변이 등이 검출되었다. RT-PCR과 RNA dot blot 분석을 수행한 결과 본 연구에서 얻어진 쥐노래미 성장호르몬 transcript들은 뇌하수체 특이적인 전형적인 어류 성장호르몬 발현 특성을 나타내었다.
Kim, Ki-Yong;Jang, Yo-Soon;Cha, Joon-Yung;Son, Daeyoung;Choi, Gi Jun;Seo, Sung;Lee, Sang Jin
Asian-Australasian Journal of Animal Sciences
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제21권5호
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pp.657-662
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2008
To develop transgenic orchardgrass (Dactylis glomerata L.) resistant to high temperature, the recombinant DgHSP17.2 gene was introduced into orchardgrass plants using the Agrobacterium-mediated transformation method and expressed constitutively under the control of the CaMV 35S promoter. The results of genomic DNA PCR and Southern analysis showed a DNA band and hybridization signal on agarose gel and X-ray film in transgenic orchardgrass plants harboring the recombinant DgHSP17.2 gene, but a DNA band and hybridization signal were not observed in the wild type and empty vector control plants. The same result was also obtained in RT-PCR and Southern blot analysis, and these transgenic orchardgrass plants did not show any morphological aberration both in the culture bottle and soil mixture. When leaf discs cut from transgenic orchardgrass plants with recombinant DgHsp17.2 gene were exposed to lethal temperature (heat treatment at $60^{\circ}C$ for 50 min), 60-80% of the leaf discs showed only damage symptoms, but non-transgenic leaf discs showed a lethal condition. These results indicate that the DgHsp17.2 gene may act as a protector from heat stress in plants.
Phosducin (PDC) is a photoreceptor cell-specific protein that is phosphorylated by cyclic nucleotide-dependent protein kinase. PDC and PDC-like proteins (PDCL, PDCL2, and PDCL3) are members of a conserved family of small thioredoxin-like proteins that modulate the ${\beta}$- and ${\gamma}$-subunits of G-proteins. In mammals, Pdc, Pdcl, and Pdcl3 genes show ubiquitous expression; however, Pdcl2 gene expression is limited to the testis and ovary. The aim of the present study was to examine the expression patterns of chicken Pdcl2 (cPdcl2) during testicular and ovarian development. Protein sequence comparisons performed using the CLUSTAL X program revealed that the amino acid sequences and potential phosphorylation sites of cPDCL2 and mammalian PDCL2 proteins were highly conserved. Quantitative real-time PCR analysis revealed that cPdcl2 was differentially expressed in the testis and ovary. Specifically, cPdcl2 expression was detected at low levels in the ovary at all time points. In the testis, cPdcl2 expression was detected at low levels until 5 weeks of age. At 8 weeks of age, however, cPdcl2 showed increased expression levels in the testis. Using in situ hybridization, we detected high levels of cPdcl2 expression in the testis, particularly in the spermatocytes and round spermatids. In summary, our data describe expression patterns of germ cell-specific Pdcl2 during testicular and ovarian development in chickens.
To examine the interrelationship between transgenic insertion patterns and transgene expression profiles in established transgenic fish lines, four stable transgenic marine medaka Oryzias dancena germlines harboring ${\beta}$-actin regulator-driven RFP reporter constructs were selected. The established transgenic strains were characterized with regard to their transgenic genotypes (insertion pattern, concatemer formation, and transgene copy number based on genomic Southern blot hybridization and qPCR assay) and expression characteristics at the mRNA (qRT-PCR), protein (western blot), and phenotypic (fluorescent appearance) levels. From comparative examinations, it was found that transgenic expression at both the transcription and translation levels could be significantly downregulated in transgenic strains, potentially through methylation-mediated transgene silencing that was particularly associated with the formation of a long tail-to-head tandem concatemer in the chromosomal integration site(s). When this occurred, an inverse relationship between the transgene copy number and fluorescence intensity was observed in the resultant transgenic fish. However, with the other transgenic genotype, transgenic individuals with an identical Southern blot hybridization pattern, containing a tandem concatemer(s), had very different expression levels (highly robust vs. low expression strengths), which was possibly related to the differential epigenetic modifications and/or degrees of methylation. The concatemer-dependent downregulation of transgene activity could be induced in transgenic fish, but the overall pattern was strain-specific. Our data suggest that neither a low (or single) transgene copy number nor tandem transgene concatemerization is indicative of strong or silenced transgene expression in transgenic fish carrying a ubiquitous transgene. Hence, a sufficient number of transgenic lineages, with different genotypes, should be considered to ensure the establishment of the best-performance transgenic line(s) for practical applications.
우리나라 주요 담수 어종인 미꾸라지를 ecotoxicogenomic 연구 모델 어류로 개발하기 위한 연구의 일환으로 본 어종이 고온 스트레스 자극에 노출되었을때 야기되는 산화성 스트레스를 검출하고자 항산화 효소(antioxidant enzyme; AOE) 유전자의 발현 양상을 분석하였다. 주요 항산화 효소인 superoxide dismutase (SOD), catalase (CAT), glutathione-S-transferase (GST) 및 glutathione peroxidases (GPXs)의 transcript들을 특이적으로 정량화할 수 있는 semi-quantitative RT-PCR, real-time PCR 또는 northern blot분석을 통해 $23^{\circ}C$에서 $32^{\circ}C$까지 설정된 실험어의 간 조직내 AOE유전자들의 mRNA level을 분석하였다. 고온에 노출되었을 때 본 어종의 AOE들은 일반적으로 증가된 유전자 발현 양상을 나타내었고, 특히 SOD (2배)와 plasma GPX (3배) 유전자가 가장 유의적인 mRNA 증가를 나타내었다. GST의 경우 상대적으로 적은 증가량을 나타내었고 CAT의 경우 고온자극에 반응하지 않았다. 본 어종은 $29^{\circ}C$ 이상에서 AOE 유전자의 발현 증가를 나타내었고 $32^{\circ}C$에 노출되었을 때 1일째부터 SOD와 plasma GPX mRNA의 증가가 관찰되었다.
Tobacco mosaic virus(TMV) 외피단백질 유전자를 연초(Nicotiana tabacm cv. NC82)에 형질전환하고 형질전환 식물체 후세대에서 TMV 저항성인 연초를 선발하여, 선발된 TMV 저항성 제5세대 형질전환 식물체의 도입된 유전자발현 및 고온에서의 특성 등을 조사하였다. TMV 저항성 식물체의 염색체 DNA에 TMV 외피 단백질 유전자가 안정되게 존재하고 있음을 genomic PCR을 수행하여 확인하였다. 또한 형질전환 식물체내에서 TMV 외피 단백질 발현은 Immunoblot hybridization 방법으로 확인하였다. TMV 저항성 형질전환 연초식물체에서 발현된 단백질의 양은 매우 적었으며 특히 본엽에는 병징이 나타나지 않았으나 수확기 마지막 액아에 TMV의 반점이 나타난 병징발현 지연형의 형질전환 식물체의 경우에도 발현된 단백질의 양은 정상 NC 82에 TMV가 감염되었을 때와 비교하여 현저히 적었다. TMV 저항성 형질전환 식물체 내에서 발현되는 TMV 외피단백질의 양은 총 단백질에 대비하여 0.01% 이하이였다. TMV 병징 발현 지연형인 형질전환 식물체에 TMV를 인공접종한 후 고온처리상태에서 외피 단백질 유전자의 전사 및 발현을 RT-PCR과 Immune blot hybridization 통하여 확인하였으며, 이때 TMV의 증식도 억제되었으므로 개량멀칭시 나타나는 고온조건하에서도 저항성이 안정적으로 발현될 수 있음을 알 수 있었다.
Conditions for lily pollen growth in vitro and transformation were optimized. Active pollen tube development was achieved effectively in a medium containing 7% sucrose with pH adjusted to 5.7 at the temperature of 27$^{\circ}C$ for about 16-24 hours. Pollen growth was little impaired by the presence of kanamycin at concentration up to 100 mg/L. Pollen rains near the beginning of germination stage were more reliable for Agrobacterium-mediated GUS DNA transformation via vacuum infiltration lasted for 20-40 minutes. GUS DNA integration and its expression in fully developed pollen tubes could be confirmed by Southern blot hybridization, RT-PCR and histochemical staining.
In order to keep the normal pregnancy, a number of gene products are required at the feto-matemal interface. We have isolated approximately 30 genes, involved in keeping the normal pregnancy, via subtractive hybridization and RT-PCR analyses of cDNAs from the chorionic villi of normal and RPL patients. Characterizing their functions will help us to understand the process of establishing and maintaining pregnancy. In addition, more detailed studies of their expression in normal and RPL patients are required to evaluate their clinical relevance. Further identification of genes aberrantly expressed in RPL patients will help the prognosis of the pregnancy, identifying pregnancies with a high risk of miscarriage and enabling management of those pregnancies.
Lmbr1 is regarded as a key gene that controls the digital model formation in early developmental stages of the chicken. However, there are few reports of lmbr1 expression levels and tendencies in 4-toe and 5-toe chicken species. Therefore, the objective of this study was to compare the lmbr1 expression in White Leghorn (4-toe) and Chinese Silky (5-toe). Firstly, total RNA was extracted from 14 different embryonic development stages (HH3 to HH31) in White Leghorn and Chinese Silky. Secondly, dramatic gene expression changes of lmbr1 were monitored by RT-PCR, which indicated a general up-down-up tendency with subtle differences between these two species. Moreover, Q-PCR reactions were performed to quantitate the expression level of lmbr1 in the 14 selected developmental stages. These data demonstrated a first lmbr1 expression peak of 18.68 and 15.32, a lmbr1 expression trough of 6.61 and 1.80, and a second lmbr1 expression peak of 22.33 and 12.48 in White Leghorn and Chinese Silky, respectively. Finally, embryonic in situ hybridization analysis identified that lmbr1 expressed in the ectoderm in HH21, HH23 and HH24 developmental stages in both species.
Alsaker, Keith V.;Paredes, Carlos J.;Papoutsakis, Eleftherios T.
Biotechnology and Bioprocess Engineering:BBE
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제10권5호
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pp.432-443
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2005
Microarray technology has contributed Significantly to the understanding of bacterial genetics and transcriptional regulation. One neglected aspect of this technology has been optimization of microarray-generated signals and quality of generated information. Full genome microarrays were developed for Clostridium acetobutylicum through spotting of PCR products that were designed with minimal homology with all other genes within the genome. Using statistical analyses it is demonstrated that Signal quality is significantly improved by increasing the hybridization volume. possibly increasing the effective number of transcripts available to bind to a given spot, while changes in labeled probe amounts were found to be less sensitive to improving signal quality. In addition to Q-RT-PCR, array validation was tested by examining the transcriptional program of a mutant (M5) strain lacking the pSOL1 178-gene megaplasmid relative to the wildtype (WT) strain. Under optimal conditions, it is demonstrated that the fraction of false positive genes is 1% when considering differentially expressed genes and 7% when considering all genes with signal above background. To enhance genomic-scale understanding of organismal physiology, using data from these microarrays we estimated that $40{\sim}55%$ of the C. acetobutylicum genome is expressed at any time during batch culture, similar to estimates made for Bacillus subtilis.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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