Hantavirus is a genus of the Bunyaviridae family consisting following serotype groups: Hantaan, Seoul, Puumala, Prospect Hill, Thailand, Belgrade, Thotta palayam, Sin Nombre. Most of Hantavirus group have been associated with many clinically similar disease known collectively as hemorrhagic fever with renal syndrome (HFRS). Hantaan virus is the prototype of the genus hantavirus, originally isolated from Apodemus agrarius. Bat was found as a natural host for Hantaan virus in Lee's lab for the first time. Then, Hantaan-like virus was isolated Hantaan-like virus from bat. To identify hantaviruses that are present in Korea among bats, bats were collected from Jeong-Sun, Won-Joo, Chung-Ju and Hwa-Cheon area, RNA was isolated from lung and serum. RT-PCR was performed with a universal primer from M segment. Nested RT-PCR was carried out to differentiate Hantaan, Seoul and Puumala virus using serotype specific primers. As we expected, Hantaan viruses were detected in bats and Seoul virus was not detected. Interestingly, Puumala viruses were also detected in bats from Won-Ju, but not in other areas. Puumala virus is originally isolated from Clethrinomys glareolus, and cause light HFRS. Recently, Paradoxomis webbiana, a wild bird turn out to be a reservoir for Puumala virus in Korea. These data indicate that bat is a new natural reservoir of Puumala virus.
Field infectious bursal disease viruses (IBDVs) were isolated from IBDV-suspected commercial chickens. The variable region in VP2 gene of six Korean IBDV isolates (K-IBDVs) and IBD vaccines was examined using the reverse transcriptase / polymerase chain reaction-restriction fragment length polymorphism (RT/PCR-RFLP) assay. With all K-IBDVs and vaccine IBDVs, a 474-bp fragment of the VP2 gene was amplified and tested with various restriction enzymes. Restriction enzymes BstNI and StyI differentiated K-IBDV isolates and IBD vaccines into four groups. Restriction enzyme profiles of K-IBDV isolates were different from them of IBD vaccines. K-IBDV isolates except for 310 isolate had specific SspI and TaqI recognition sites, which were recognized in highly virulent IBDVs, but IBD vaccines had no those sites. This study showed that RT/PCR-RFLP assay was thought to be valuable tool for differentiation of IBDVs and identification of highly virulent IBDV.
For quarantine purpose, we selected five plant RNA viruses including Cucumber vein yellowing virus (CVYV), Cucurbit yellow stunting disorder virus (CYSDV), Potato aucuba mosaic virus (PAMV), Potato yellow dwarf virus (PYDV), and Tomato chlorosis virus (ToCV), which are not reported in Korea and cause serious economic losses to the family Cucurbitaceae or Solanaceae. To detect those viruses, we employed RT-PCR technique with specific oligonucleotide primer pairs and tested their detection efficiency for each virus. To design RT-PCR primers, coat protein was used for CVYV, CYSDV, and ToCV whereas RNA polymerase and nucleocapsid regions were used for PAMV and PYDV, respectively. The development of an RT-PCR based method proved a useful tool for rapid detection and identification of quarantine virus infections.
Apple, one of the most important fruit crops world-widely, is required for rapid, cost-effective and sensitive virus detection for its better productivity. RT-PCR is extensively employed for apple virus diagnosis, but the technique requires complete tissue homogenization which is time consuming and laborious. In this study, heating-based RNA extraction method was developed and proven to effectively work for stem tissues slightly better than for leaf tissues. In RT-PCR, almost identical results were generated from the use of RNA extracts from both tissues.
Severe acute respiratory syndrome coronavirus (SARS-CoV2) is a major coronavirus that infects humans with human Coronavirus (HuCoV)-229E, HCoV-OC43, HCoV-HKU1, HCoV-NL63, Severe acute respiratory syndrome coronavirus (SARS-CoV) and Middle east respiratory syndrome coronavirus (MERS-CoV). SARS-CoV2 is currently a global pandemic pathogen. In this study, we developed conventional RT-PCR based diagnostic system for the detection of SARS-CoV2 which is relatively inexpensive but has high stability and a wide range of users. Three conventional RT-PCR primer sets capable of forming specific band sizes by targeting the ORF1ab [232 nucleotide (nt)], E (200 nt) and N (288 nt) genes of SARS-CoV2 were developed, respectively, and it were confirmed to be about 10~100 times higher detection sensitivity than the previously reported methods. In addition, a standard positive control that can generate specific amplicons by reacting with the developed RT-PCR primers and verify the false-positiv from contamination of the laboratory was produced. Therefore, the diagnostic system that uses the RT-PCR method is expected to be used to detect SARS-CoV2.
최근에 개발된 real time RT-PCR 방법은 소량의 시료에서 특정 유전자의 mRNA 발현 양상을 분석하는데 효율적으로 이용되고 있다. 특히, 난자 또는 배아와 같이 성숙과 발생단계에 따라 유전자의 발현 양상이 현저하게 변화되는 경우에는, 각각의 시료에서 발현 양상이 크게 변하지 않는 대조군으로 사용할 수 있는 유전자를 이용한 비교, 분석이 중요하다. 본 연구에서는 생쥐의 난자와 초기 배아를 이용한 real time RT-PCR에서 mRNA의 추출방법과 형광 probe의 사용 유무 그리고 대조군으로 사용되고 있는 유전자들에 대한 검증을 시행하였다. (중략)
The primary step for efficient control of viral diseases is the development of simple, rapid, and sensitive virus detection. Reverse transcription loop-mediated isothermal amplification (RT-LAMP) has been used to detect viral RNA molecules because of its simplicity and high sensitivity for a number of viruses. RT-LAMP for the detection of Potato virus X (PVX) was developed and compared with conventional reverse transcription polymerase chain reaction (RT-PCR) to demonstrate its advantages over RT-PCR. RT-LAMP reactions were conducted with or without a set of loop primers since one out of six primers showed PVX specificity. Based on real-time monitoring, RT-LAMP detected PVX around 30 min, compared to 120 min for RT-PCR. By adding a fluorescent reagent during the reaction, the extra step of visualization by gel electrophoresis was not necessary. RT-LAMP was conducted using simple inexpensive instruments and a regular incubator to evaluate whether RNA could be amplified at a constant temperature instead of using an expensive thermal cycler. This study shows the potential of RT-LAMP for the diagnosis of viral diseases and PVX epidemiology because of its simplicity and rapidness compared to RT-PCR.
Journal of the korean academy of Pediatric Dentistry
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v.32
no.1
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pp.75-88
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2005
Ameloblastoma is the most commonly occurring odontogenic tumor in oral cavity. Although most are benign epithelial neoplasm, they are generally considered to be locally aggressive and destructive, exhibiting a high rate of recurrence. The biological behavior of this neoplasm is a slowly growing, locally invasive tumor without metastasis, therefore malignant neoplasm, changed its histological appearance to carcinoma or showed distant metastasis, is only defined clinically. In this study, we identified the differentially expressed genes(DEGs) in stages under benign or malignant ameloblastoma compared with normal patient using ordered differential display(ODD) reverse transcription(RT)-PCR and $GeneFishing^{TM}$ technology. ODD RT-PCR is rather effective when the investigation of samples containing very small amounts of total RNA must be accomplished. ODD RT-PCR used the means of amplification with anchored T-primer and adaptor specific primer. bearing definite two bases at their 3' ends and so this method could display differential 3'-expressed sequence taqs(ESTs) patterns without using full-length cDNAs. Compared with standard differential display, ODD RT-PCR is more simple and have enough sensitivity to search for molecular markers by comparing gene expression profiles, However, this method required much effort and skill to perform. $GeneFishing^{TM}$ modified from DD-PCR is an improved method for detecting differentially expressed genes in two or more related samples. This two step RT-PCR method uses a constant reverse primer(anchor ACP-T) to prime the RT reaction and arbitrary primer pairs(annealing control primers, ACPs) during PCR. Because of high annealing specificity of ACPs than ODD RT-PCR, the application of $GeneFishing^{TM}$ to DEG discovery generates reproducible, authentic, and long(100bp to 2kb) PCR products that are detectable on agarose gels. Consequently, various DEGs observed differential expression levels on agarose gels were isolated from normal, benign, and malignant tissues using these methods. The expression patterns of the some isolated DEGs through ODD RT-PCR and $GeneFishing^{TM}$ were confirmed by Northern blot analysis and RT-PCR. The results showed that these identified DEGs were implicated in ameloblastoma neoplasm processes. Therefore, the identified DEGs will be further studied in order to be applied in candidate selection for marker as an early diagnosis during ameloblastoma neoplasm processes.
The purpose of this study was to develop species-specific real-time quantitative PCR (RT-qPCR) primers for use in the detection of Aggregatibacter actinomycetemcomitans. These primers were designed based on the nucleotide sequences of the RNA polymerase ${\beta}$-subunit gene (rpoB). We assessed the specificity of the primers against nine strains of A. actinomycetemcomitans, eight strains (three species) of the Haemophilus genus, and 40 strains of 40 other oral bacterial species. Primer sensitivity was determined by testing serial dilutions of the purified genomic DNAs of A. actinomycetemcomitans ATCC $33384^T$. Our data reveal that we had obtained species-specific amplicons for all of the tested A. actinomycetemcomitans strains, and that none of these amplicons occurred in any of the other species. Our PCR protocol proved able to detect as little as 2 fg of A. actinomycetemcomitans chromosomal DNA. Our findings suggest that these qRT-PCR primers are suitable for application in epidemiological studies.
Using the reverse transcription polymerase chain reaction (RT-PCR), a rapid and sensitive assay method for the detection and identification of barley yellow mosaic virus (BaYMV) and barley mild mosaic virus (BaMMV) was adapted. Two units of primers from each virus were selected and used for the determination of two different viruses. PCR fragments of BaYMV (ca. 0.9kb) and BaMMV (ca. 0.8kb) were obtained from the designed method for the assay of BaYMV and BaMMV coat protein. PT-PCR fragments were cloned using vector pT7 Blue and the sequences of the selected clones were analyzed. coat protein of BaYMV and that of BaMMV consisted of 297 amino acids (891 nucleotides) and 251 amino acids (753 nucleotides), respectively. The snalysis of coat protein genes from these two viruses showed that 45.6% of nucleotides sequence ad 34.9% of amino acid in BaYMV were homologous to those in BaMMV.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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