Objectives: It is reported that tumor-associated macrophages (TAMs) contribute to cancer progression by promoting tumor growth and metastasis. The purpose of this study is to investigate the effect of different fractions of Adenophora triphylla var. japonica (AT) on the polarization of macrophages into the M2 phenotype, a major phenotype of TAMs. Methods: We isolated hexane, ethyl acetate, and butanol fractions from crude ethanol extract of AT. The cytotoxicity of AT in RAW264.7 cells was examined by 3-(4,5-Dimethylthiazol-2-yl)-2,5-diphenyltetrazolium bromide (MTT) assay. RAW264.7 cells were polarized into the M2 phenotype by treatment with interleukin (IL)-4 and IL-13. The expression of M2 macrophage marker genes was detected by reverse transcription polymerase chain reaction (RT-PCR). The phosphorylation level of signal transducer and activator of transcription 6 (STAT6) was investigated by western blot analysis. The migration of Lewis lung carcinoma (LLC) cells was examined by transwell migration assay using conditioned media (CM) collected from RAW264.7 cells as a chemoattractant. Results: Among various fractions of AT, the ethyl acetate fraction of AT (EAT) showed the most significant suppressive effect on the mRNA expression of M2 macrophage markers, including arginase-1, interleukin (IL)-10 and mannose receptor C type 1 (MRC-1), up-regulated by treatment of IL-4 and IL-13. In addition, EAT suppressed the phosphorylation of STAT6, a critical regulator of IL-4 and IL-13-induced M2 macrophage polarization. Finally, the increased migration of Lewis lung carcinoma (LLC) cells by CM from M2-polarized RAW264.7 cells was reduced by CM from RAW264.7 cells co-treated with EAT and M2 polarization inducers. Conclusion: We demonstrated that EAT attenuated cancer cell migration through suppression of macrophage polarization toward the M2 phenotype. Additional preclinical or clinical researches are needed to evaluate its regulatory effects on macrophage polarization and anti-cancer activities.
This study was conducted to investigate of Mori Folium Water Extract (MF) on anti-inflammation activity. MF Water extracts after 24 houres cultivation were examined to ascertain the cell viability of mouse macrophage RAW 264.7 cells. The influence of the Water extracts in RAW 264.7 macrophage cells treated with LPS was investigated. nitric oxide (NO) production, nterleukin$(IL)-1{\alpha}$ IL-6 and IL-10 increased generation of cytokines. mouse macrophage RAW 264.7 cells cell viability changes were no decreas after MTT assay of MF Water extract. The MF water extracts inhibited NO generation caused by LPS in the macrophages over $25{\mu}g/mL$. The MF water extracts increased in the control group the $IL-1{\alpha}$ and IL-6 activation generated by LPS in the macrophages over $50{\mu}g/mL$. Accordingly, it was found that different MF water extract concentrations significantly influenced certain anti-inflammation activities in RAW 264.7 macrophage cells. The results of this study are expected to be highly applicable to health - friendly functional materials. Further studies are needed to confirm the signaling pathways associated with anti-inflammation of macrophages through continuous studies.
Objectives : The purpose of this study is to investigate the effect of Fermented Houttuyniae Herba Water Extract (HL) on production of proinflammatory mediators in mouse macrophage RAW 264.7 cells. Methods : Cell viabilities were measured by MTT assay. Effect of HL on nitric oxide (NO) production from RAW 264.7 cells was accessed by Griess reagent assay. Effect of HL on productions of inflammatory cytokines such as interleukine (IL)-17, Interferon $\gamma$-inducible protein (IP)-10, Eotaxin, IL-5, Monocyte Chemotactic Protein-3 (MCP-3), and IL-13 in LPS-induced RAW 264.7 cells was accessed by a multiplex bead array assay based on xMAP technology. Results : The results of the experiment are as follows. 1. Incubation with HL for 24 hours showed significant increase in cell viability of RAW 264.7 mouse macrophages (P < 0.05). 2. HL showed to inhibit NO production from RAW 264.7 cells at the concentrations of 25 and 50 ug/mL significantly (P < 0.05). 3. HL inhibited significantly NO production in LPS-induced RAW 264.7 cells at the concentrations of 25, 50, 100 and 200 ug/mL (P < 0.05). 4. HL inhibited significantly IL-17, IP-10 and Eotaxin in LPS-induced RAW 264.7 cells at the concentrations of 25, 50, 100 and 200 ug/mL (P < 0.05). Conclusions : These results suggest that HL has anti-inflammatory moiety related with its inhibition of NO, IL-17, IP-10, and Eotaxin in macrophages.
Objectives : The aim of this study was to investigate the effect of Baicalein (BA) on the production of hydrogen peroxide in lipoteichoic acid-stimulated RAW 264.7 mouse macrophages. Methods : Lipoteichoic acid-stressed RAW 264.7 mouse macrophages were incubated with baicalein at concentrations of 50 and 100 µM. Incubation time is 30 minutes, 2 h, 12 h, and 18 h. After incubation, The production of hydrogen peroxide in RAW 264.7 mouse macrophages was measured with dihydrorhodamine 123 assay. Streptococcus aureus lipoteichoic acid and Streptococcus pyogenes lipoteichoic acid were used as cell-stimulating lipoteichoic acid. Cell viabilities were measured with a modified MTT assay. Berberine, indomethacin, and gallic acid were incubated for the same time as the comparative materials. Results : BA at the concentration of 50 and 100 µM did not show cytotoxicity on RAW 264.7 mouse macrophages for 24 h incubation. For 30 minutes, 2 h, 12 h, and 18 h incubation, BA at the concentration of 50 and 100 µM significantly inhibited the production of hydrogen peroxide in RAW 264.7 mouse macrophages stimulated by Streptococcus aureus lipoteichoic acid (p < 0.05); also, BA at the concentration of 50 and 100 µM also inhibited the productions of hydrogen peroxide in RAW 264.7 mouse macrophages stimulated by Streptococcus pyogenes lipoteichoic acid significantly (p < 0.05). Conclusions : BA might have anti-bacterial activity related to its inhibition of hydrogen peroxide production in lipoteichoic acid-stimulated RAW 264.7 mouse macrophages.
Objectives : The aim of this study was to investigate the effect of water extract of Agastache rugosa (AR) on productions of inflammatory mediators in lipopolysaccharide (LPS)-stimulated RAW 264.7 mouse macrophages. Methods : Cell viabilities were measured with MTT assay. The production of nitric oxide (NO) from RAW 264.7 cells was measured with Griess reagent assay. The production of cytokines in RAW 264.7 cells was measured with multiplex cytokine assay. Results : AR showed no cytotoxicity on RAW 264.7 cells. AR at concentrations of 25, 50, 100, and 200 ㎍/mL significantly inhibited NO production in LPS-stimulated RAW 264.7 cells. AR at concentrations of 50, 100, and 200 ㎍/mL significantly inhibited productions of TNF-α and IL-1β in LPS-stimulated RAW 264.7 cells; AR at concentrations of 50 and 200 ㎍/mL significantly inhibited productions of RANTES (CCL5) in LPS-stimulated RAW 264.7 cells; AR at concentrations of 100 ㎍/mL significantly inhibited productions of macrophage inflammatory protein-1β in LPS-stimulated RAW 264.7 cells; AR at concentrations of 50, 100, and 200 ㎍/mL significantly increased productions of IP-10 (CXCL10) in LPS-stimulated RAW 264.7 cells; AR at concentrations of 100 and 200 ㎍/mL significantly increased MCP-1 (CCL-2) in LPS-stimulated RAW 264.7 cells; AR at concentrations of 50 and 100 ㎍/mL significantly increased productions of IL-10 in LPS-stimulated RAW 264.7 cells. Conclusions : AR might have immunomodulatory effects on productions of NO, cytokines, and chemokines in LPS-stimulated RAW 264.7 mouse macrophages.
Aqueous extracts were prepared from 21 medicinal herbs including Herba Pogostemi (Agastache rugosa) to examine their modulatory effects on NO production in mouse macrophage cell line RAW264.7 cells. While almost all medicinal herb extracts failed to show marked scavenging activities to NO produced by LPS stimulation, only Herba Pogostemi showed a rather strong induction of NO production in RAW264.7 cells without stimulation with LPS. When we treated the cell with $200{\mu}M\;of\;N^G-monomethyl-L-arginine\;(N^GMMA)$, a NOS2 inhibitor, a significant reduction in NO production could be observed. Moreover, a treatment of $100{\mu}M$ pyrrolidine dithiocarbamate (PDTC) led to about a 79% reduction of NO production. These results demonstrated that the aqueous extract of Herba Pogostemi might provide a second signal for the expression of NOS2 in RAW264.7 cells, and suggested that Herba Pogostemi induces NO production through L-argininedependent pathway.
Objective: In this study, the immunomodulatory activity of a mixture of wild Panax ginseng and red-mold rice extracts (MPR) on RAW 264.7 macrophage cells in the presence and absence of methotrexate (MTX), an anti-cancer drug, was investigated. Methods and Results: In the cell viability, MPR showed a significant cell proliferation and inhibited cell regression by red-mold rice (RMR) alone or MTX alone. MPR induced moderate increase in nitric oxide (NO) production. NO production and inducible nitric oxide synthase (iNOS) mRNA expression by LPS decreased after MPR treatment. In addition, MPR slightly induced COX-2 mRNA expression, but it did not affect the expression of COX-2 mRNA by LPS treatment. In RT-PCR analyses, MPR induced IL-$1{\alpha}$, IL-$1{\beta}$, IL-6, and TNF-$\alpha$ mRNA expression, but had no effect on IL-10 and TGF-$\beta$, regardless of MTX treatment. Furthermore, MPR did not interfere with the cytotoxicity of MTX against MCF-7 human breast carcinoma cells. Conclusions: MPR is efficacious in protecting against MTX-induced cell regression as a result of macrophage activation, resulting in induction of cytokine expression, implying that MPR could be considered an adjuvant in MTX-chemotherapy.
Recently, Rhei Rhizoma extracts (RRE) have begun to receive more attention as potential biological response modifiers. In the present study, we studied the antiproliferative effect of RRE on tumor cells and the effect of RRE on macrophage function. A variety of tumor cells and macrophages were treated with RRE at various concentrations. The effect of RRE on cell proliferation was measured by MTT assay and the effect of RRE on the production of nitric oxide (NO) was determined in the macrophage-like cell lines Raw264.7, C6 and peritoneal macrophages (pMQ). RRE inhibited the growth of tumor cells (e.g., B16, HOS). However, the effects of RRE on the production of NO varied with macrophage types. RRE had no effect on C6 cell growth and slightly increased the growth of Raw264.7 cells. In addition, treatment of normal pMQ with RRE enhanced NO production in a concentration-dependent manner, whereas RRE suppressed NO production at $50\;{\mu}g/mL$ in both Raw264.7 and C6 cells. However, RRE suppressed NO production in LPS/IFN-$\gamma$-stimulated C6 cells. Overall, these results suggest that RRE elicits an antiproliferative property and differentially modulates NO production in various macrophages, and have a potential for therapeutic application.
Objectives : The purpose of this study was to investigate the effects of Angelicae acutilobae Radix Water Extract (AA) on the production of cytokines in RAW 264.7 cell stimulated with lipopolysaccharide (LPS). Method : RAW 264.7 cells were cotreated with AA (50 and $100{\mu}g/mL$) and lipopolysaccharide (LPS; $1{\mu}g/mL$) for 24 hours. After 24 hours treatment, using bead-based multiplex cytokine assay, concentrations of various cytokines such as interleukin(IL)-6, tumor necrosis factor-alpha(TNF-${\alpha}$) granulocyte colony-stimulating factor(G-CSF), granulocyte macrophage colony-stimulating factor(GM-CSF), and macrophage inflammatory protein(MIP)-$1{\alpha}$ were measured. Result : AA significantly inhibited LPS-induced production of IL-6 and MIP-$1{\alpha}$ from LPS-stimulated RAW 264.7 cells at the concentration of $50{\mu}g/mL$. AA significantly inhibited LPS-induced production of TNF-${\alpha}$ from LPS-stimulated RAW 264.7 cells at the concentration of $100{\mu}g/mL$. AA significantly inhibited LPS-induced production of G-CSF and GM-CSF in RAW 264.7 cells at the concentrations of 50 and $100{\mu}g/mL$. Conclusion : These results suggest that AA has anti-inflammatory effect related with its inhibition of proinflammatory cytokines such as IL-6, TNF-${\alpha}$, G-CSF, GM-CSF, and MIP-$1{\alpha}$ in LPS-induced macrophages.
Objectives: Gallic acid (GA) is the major component of tannin which could be easily founded in various natural materials such as green tea, red tea, grape juice, and Corni Fructus. The purpose of this study is to investigate the effect of Gallic acid (GA) on production of interleukin (IL) in mouse macrophage Raw 264.7 cells stimulated by lipopolysaccharide (LPS). Methods: Productions of interleukins were measured by High-throughput Multiplex Bead based Assay with Bio-plex Suspension Array System based on $xMAP^{(R)}$ (multi-analyte profiling beads) technology. Firstly, cell culture supernatant was obtained after treatment with LPS and GA for 24 hour. Then, it was incubated with the antibody-conjugated beads for 30 minutes. And detection antibody was added and incubated for 30 minutes. And Strepavidin-conjugated Phycoerythrin (SAPE) was added. After incubation for 30 minutes, the level of SAPE fluorescence was analyzed on Bio-plex Suspension Array System and concentration of interleukin was determined. Results: The results of the experiment are as follows. 1. GA significantly inhibited the production of IL-3, IL-10, IL-12p40, and IL-17 in LPS-induced mouse macrophage RAW 264.7 cells at the concentration of 25, 50, 100, 200 uM (p<0.05). 2. GA significantly inhibited the production of IL-6 in LPS-induced mouse macrophage RAW 264.7 cells at the concentration of 50, 100, 200 uM (p<0.05). 3. GA diminished the production of some cytokine such as IL-4, IL-5, and IL-13 in LPS-induced mouse macrophage RAW 264.7 cells. 4. GA did not show the inhibitory effect on the production of IL-$1{\alpha}$ and IL-9 in LPS-induced mouse macrophage RAW 264.7 cells. Conclusions: These results suggest that GA has anti-inflammatory activity related with its inhibitory effects on the production of interleukins such as IL-3, IL-10, IL-12p40, IL-17, and IL-6 in LPS-induced macrophages.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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